25 settembre 2017
Questo protocollo descrive come stimolare le cellule con peptidi derivati mitocondriale e valutare la cascata di segnalazione e localizzazione di fosfo-proteine.
L'obiettivo generale di questo esperimento è identificare la cascata di segnalazione a valle coinvolta nelle cellule stimolate con peptidi di derivazione mitocondriale. Questo metodo può rispondere a domande chiave nel campo dei peptidi di derivazione mitocondriale, come ad esempio quali vie di segnalazione sono coinvolte e dove ciò si verifica. Il vantaggio principale di questa tecnica è che è semplice e relativamente facile da eseguire.
Abbiamo avuto l'idea di questo metodo quando abbiamo esaminato la segnalazione ERK mediata dall'uomo, che ci ha fornito informazioni limitate sui fatti a valle. Il metodo Kersher Subscale ci ha dato un'idea migliore del ruolo della segnalazione mediata dall'uomo. Il terzo giorno dopo la placcatura e il lavaggio due volte dieci al sesto, le celle SH-SY5Y o HEK293 secondo il protocollo di testo.
Sciogliere i peptidi umanini S14G in acqua distillata filtrata da due micron a punto zero. E ricostituirli come una soluzione madre di un millimolare. Aliquotare il terreno preriscaldato contenente siero o privo di siero in una provetta conica da 15 millilitri e aggiungere la soluzione madre di peptide humanin a temperatura ambiente per ottenere una concentrazione di lavoro.
Sostituire immediatamente il terreno nelle cellule con sei millilitri di soluzione peptidica. E incubare le cellule per il tempo appropriato. Utilizzare 10 millilitri di PBS ghiacciato per lavare le celle due volte.
Quindi raschiare le cellule dalla piastra in cinque millilitri di PBS ghiacciato. E trasferire la sospensione cellulare in un tubo conico da 15 millilitri. Centrifugare le celle a 500 volte G e quattro gradi Celsius per cinque minuti.
Risospendere il pellet in 200 microlitri di tampone di frazionamento ghiacciato e incubare su ghiaccio per 15 minuti. Centrifugare la provetta a 250 volte G e quattro gradi Celsius per cinque minuti. Quindi raccogliere il surnatante come frazione citoplasmatica e conservare il pellet per la frazione nucleare.
Centrifugare il surnatante per rimuovere i detriti cellulari e altri contaminanti a 18000 volte G e quattro gradi Celsius per dieci minuti. E poi trasferire il surnatante in una nuova provetta per microcentrifuga. Questa è la frazione di citisolo.
Risospendere il pellet in 200 microlitri di tampone di lavaggio ghiacciato e centrifugare la soluzione a 250 volte G e quattro gradi Celsius per cinque minuti. Rimuovere il surnatante e utilizzare 100 microlitri di tampone di estrazione nucleare ghiacciato per risospendere il pellet. Quindi sonicare il campione sul ghiaccio 10 volte.
Centrifugare nuovamente il campione. Quindi trasferire il surnatante in una nuova provetta da microcentrifuga. Per isolare la frazione mitocondriale grezza, utilizzare 10 millilitri di PBS ghiacciato per lavare le cellule in ogni piatto da 10 centimetri.
Quindi aggiungere cinque millilitri di PBS ghiacciato e utilizzare un raschietto per cellule per staccare le cellule. Trasferire le sospensioni cellulari in un unico tubo conico da 15 millilitri. Quindi centrifugare le celle a 600 volte G e quattro gradi Celsius per 10 minuti.
Aspirare il PBS e utilizzare un millilitro di tampone di isolamento mitocondriale ghiacciato per risospendere il pellet. Quindi, con un pestello rivestito di politetrafluoroetilene sul ghiaccio, omogeneizzare le cellule con 25 colpi di un omogeneizzatore da due millilitri. Trasferire l'omogeneizzato in una provetta da microcentrifuga e centrifugare il campione a 600 volte G e quattro gradi Celsius per 10 minuti per rimuovere i nuclei e le cellule integre.
Quindi raccogliere il surnatante, trasferirlo in una nuova provetta per microcentrifuga e centrifugare la soluzione a 7000 volte G e quattro gradi Celsius per 10 minuti. Dopo aver rimosso il surnatante, risospendere il pellet con 200 microlitri di tampone di isolamento dei mitocondri ghiacciato e trasferire la soluzione in una nuova provetta per microcentrifuga. Centrifugare la provetta a 7000 volte G e quattro gradi Celsius per 10 minuti.
Dopo aver ripetuto il lavaggio, utilizzare 15 microlitri di tampone RIPA per risospendere il pellet e incubare la sospensione su ghiaccio per 10 minuti. Quindi centrifugare il campione a 16000 volte G e quattro gradi Celsius per 15 minuti. Trasferire il surnatante, che è la frazione mitocondriale, in una nuova provetta.
Quantificare ed eseguire il western blotting secondo il protocollo di testo. Utilizzando la procedura illustrata in questo video, le cellule HEK293 e SH-SY5Y si sono ritirate con uno e 100 micromolari S14 G humanin, un potente analogo dell'humanin. E sono state analizzate la forma totale e fosforilata di ERK12 a teanina 202, tirosina 204 da estratti proteici totali.
Come si vede qui, il trattamento con S14G humanin ha mostrato un aumento della fosforilazione di ERK12 e del suo sito regolatorio teanina-202, tirosina-204. Per comprendere il bersaglio dell'attivazione di ERK12 mediata da S14G humanin, è stata analizzata la localizzazione subcellulare di ERK12 totale e fosforilata in seguito al trattamento con S14G humanin. Come mostrato in questi western blot, nelle cellule HEK293, l'ERK fosforilato aumenta sia nel citoplasma che nel nucleo, ma non nei mitocondri.
Nelle cellule SH-SY5Y, tuttavia, l'ERK fosforilata è diminuita nel nucleo del citoplasma e nei mitocondri. Ciò suggerisce che la fosforilazione di ERK mediata dall'uomo S14G può svolgere un ruolo diverso in diversi tipi di cellule e in diverse condizioni. Una volta padroneggiato, il frazionamento nucleare cellulare può essere effettuato in un'ora e il frazionamento mitocondriale può essere eseguito in un'ora e 30 minuti, se eseguito correttamente.
Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordarsi di tenere tutti i campioni sul ghiaccio. Seguendo questa procedura, è possibile eseguire altri metodi, tra cui la precipitazione co-immunitaria e la spettrometria di massa, al fine di comprendere i bersagli a valle delle molecole di segnalazione.
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Questo protocollo descrive come stimolare le cellule con peptidi derivati dai mitocondri e valutare la cascata di segnalazione e la localizzazione delle fosfoproteine. L'obiettivo generale è identificare la cascata di segnalazione a valle coinvolta nelle cellule stimolate con questi peptidi.
Questo metodo consente ai team di ricerca e sviluppo biofarmaceutici di valutare quantitativamente l'attivazione della ERK e la sua localizzazione subcellulare in risposta a peptidi derivati dai mitocondri, supportando la validazione del bersaglio e la riduzione dei rischi meccanicistici nella fase iniziale della scoperta. Fornendo un protocollo di frazionamento semplice e compatibile con l'analisi mediante western blot, facilita la verifica di ipotesi relative a cascate di segnalazione mediate da peptidi, rilevanti per indicazioni legate alla neuroprotezione e alle malattie metaboliche. L'approccio aumenta la fiducia predittiva nell'analisi dei percorsi prima degli sforzi di identificazione del capostazione.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla valutazione dell'interazione con il bersaglio alla chiarificazione del percorso, consentendo di passare da risultati fenotipici a una comprensione meccanicistica prima dell'ottimizzazione del capostazione.