Name: Istituzione di una coltura primaria di Sarcoma dei tessuti molli paziente-derivato (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: Impara a stabilire una coltura primaria di sarcoma dei tessuti molli derivata da paziente. Questo modello preclinico umano consente di studiare la patofisiologia tumorale e testare risposte terapeutiche in vitro.

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Gli autori vorrei ringraziare Gráinne Tierney per assistenza editoriale.

Cellule di STS sono isolate da un tumore massa chirurgicamente asportato dai pazienti con STS. Il protocollo è stato approvato dal comitato etico locale e viene eseguito secondo le linee guida di buona pratica clinica e la dichiarazione di Helsinki. Tutti i pazienti hanno dato consenso informato scritto a partecipare allo studio. Esemplari chirurgici sono analizzati da un patologo esperto sarcoma e trattati entro 3 ore dalla chirurgia.
1. tumore del prelievo e trattamento:
<ol><li>Raccogliere campioni di tumore con l'aiuto di un patologo di sarcoma in un contenitore di urina sterile 100 mL con 50 mL di mezzo di glucosio basso DMEM sigillato con una pellicola di paraffina.</li>
	<li>Conservare i campioni a 4 ° C per un massimo di 3 h dopo resezione del tumore.</li>
	<li>Eseguire tutti i passaggi seguenti sotto una cappa di sterili per coltura.<ol>
<li>Sterilizzare il cofano con etanolo al 70% e indossare guanti sterili.</li>
		<li>Sterilizzare pinzette in acciaio inox con etanolo al 70% (utilizzare una garza sterile).</li>
		<li>Rimuovere la pellicola di paraffina dal contenitore di urina e scartare.</li>
		<li>Lavaggio esterno del contenitore dell'urina con etanolo al 70%.</li>
		<li>Aprire una capsula di Petri quadrato.</li>
		<li>Aprire il contenitore di urina e trasferire i campioni di tumore nella Piazza di Petri con le pinzette sterili in acciaio inox.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lavare due volte i campioni di tumore con PBS.</li>
	<li>Aprire un bisturi chirurgico sterile.<ol>
<li>Tagliuzzare finemente i campioni di tumore in 1-2 mm3 pezzi.</li>
		<li>Raccogliere un quarto del totale campione in una provetta 2 mL.</li>
		<li>Aggiungere 1 mL di reagente trizol (acquistato) al tubo e immediatamente congelato a-80 ° C (il campione verrà utilizzato nell'analisi a valle per la valutazione dell'espressione di gene STS).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Raccogliere il resto del materiale finemente triturati tumore in una provetta da 15 mL.<ol>
<li>Aggiungere 4 mL di collagenasi di tipo I (tipo collagenosi viene disciolto in PBS, ad una concentrazione di 4 µ g/mL) di soluzione.</li>
		<li>Diluire la collagenasi tipo I soluzione con 4 mL di DMEM alta cultura media (concentrazione finale di collagenasi tipo io è di 2 µ g/mL).</li>
		<li>Chiudere il tubo 15 mL e sigillare con la pellicola di paraffina.</li>
		<li>Inserire il tubo 15 mL in uno shaker rotolamento in un incubatore a 37 ° C in condizioni di agitazione per 15 min attivare la digestione.</li>
		<li>Dopo 15 min conservare la provetta nello shaker rotolamento sotto agitazione Condizioni a temperatura ambiente durante la notte.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Il giorno seguente metta il tubo 15 mL sotto il cappuccio sterile.</li>
	<li>Delicatamente e filtrare la sospensione cellulare attraverso un filtro sterile 100 µm, fissato alla parte superiore di un tubo da 50 mL.</li>
	<li>Lavare il filtro con DMEM di alta coltura completato con 10% siero bovino fetale, la glutamina 1% e 1% di penicillina/streptomicina.</li>
	<li>Gettare il filtro sterile di 100 µm, chiudere il tubo da 50 mL e centrifugare a 225 x g per 5 minuti a temperatura ambiente.</li>
	<li>Scartare il surnatante capovolgendo la provetta.</li>
	<li>Risospendere le cellule con 1-2 mL DMEM alta cultura media completato con 10% siero bovino fetale, la glutamina 1% e 1% di penicillina/streptomicina. Nota: Il volume dipende dalla quantità di campione del tumore trattato.</li>
	<li>Contare le celle con una camera di Neubauer.<ol>
<li>Diluire il campione 1:2 in blu di trypan e utilizzare 10 µ l della diluizione per contare le celle.</li>
		<li>Contare almeno due volte e calcolare la media dei replicati per conoscere il numero totale medio di cellule raccolte.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Cellule di piastra in una cultura dello strato monomolecolare standard ad una densità di 80.000 cellule/cm2. Nota: Includere sempre controlli negli esperimenti. Eseguire almeno 3 replicati tecnici per ogni condizione. Eseguire almeno 2 repliche biologiche. Per farmacologia preclinica, espressione genica e analisi dell'espressione proteica, esperimenti dovrebbero essere effettuati con un basso numero di passaggi di cultura entro 30-45 giorni di cella semina per evitare di perdere cancro fenotipi cellulari.</li>
	<li>Preparazione del campione citologico.<ol>
<li>Raccogliere 100.000 cellule in 200 µ l di alta coltura DMEM completato con 10% siero bovino fetale, la glutamina 1% e 1% di penicillina/streptomicina.</li>
		<li>Pipetta la soluzione (pipetta 200 µ l) in un imbuto monouso dotato di filtro e montato con una lastra di vetro.</li>
		<li>Aprire la citocentrifuga e inserire i campioni.</li>
		<li>Eseguire la citocentrifuga a 18,6 x g per 20 min.</li>
		<li>Scartare l'imbuto equipaggiato con il filtro.</li>
		<li>Difficoltà le diapositive in acetone per 10 min seguita da cloroformio per 5 min.</li>
		<li>Archiviare le diapositive a-20 ° C. Nota: Scongelare e idratare i campioni prima della colorazione ed eseguire la colorazione seguendo le istruzioni del produttore. Preparare almeno 3 replicati tecnici.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. colture di cellule di m.:
<ol><li>Modifica supporto una volta a settimana (DMEM alta cultura media completato con 10% siero bovino fetale, glutamina 1% e 1% di penicillina/streptomicina).<ol>
<li>Scartare il terreno di coltura utilizzando una pipetta di 200-1.000 µ l.</li>
		<li>Aggiungere nuovo mezzo fresco utilizzando una pipetta di 200-1.000 µ l.</li>
		<li>Passaggio delle cellule:<ol>
<li>Staccare le cellule quando la confluenza è circa 90%: Nota: STS cella cultura amplificazione dovrebbe essere effettuata una volta a settimana sulla base delle condizioni di coltura.</li>
			<li>Eliminare terreno, lavate con PBS e aggiungere 2-3 mL di tripsina 1 x in PBS Nota: Il volume della tripsina utilizzato dipende dalla quantità di cellule coltivate ottenute.</li>
			<li>Incubare le cellule per 3-5 min a 37 ° C.</li>
			<li>Raccogliere le cellule distaccate dalla piastra usando una pipetta di 200-1.000 µ l.</li>
			<li>Le cellule indipendente di pipettare in una provetta da 15 mL e aggiungere 4 mL di alta coltura DMEM completato con 10% siero bovino fetale, la glutamina 1% e 1% di penicillina/streptomicina per fermare la reazione enzimatica.</li>
			<li>Centrifugare a 225 x g per 5 min a temperatura ambiente.</li>
			<li>Scartare il surnatante.</li>
			<li>Risospendere il pellet cellulare aggiungendo 1 mL di alta coltura DMEM completato con 10% siero bovino fetale, la glutamina 1% e 1% di penicillina/streptomicina.</li>
			<li>Le celle in una nuova piastra di coltura o una boccetta con un volume finale secondo le istruzioni del produttore del seme. Nota: Non dividere celle più di 1:3.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. a valle analisi:
Nota: Una varietà di esperimenti differenti può essere effettuata utilizzando questo modello (Vedi sotto). È, pertanto, fondamentale per decidere in fase di progettazione dello studio che analizza deve essere eseguita in modo che un numero sufficiente di campioni e replicati possa essere preparato.
<ol><li>Analisi di proliferazione come il bromuro di 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium di MTT</li>
	<li>Analisi apoptotiche quali transferasi terminale di deoxynucleotidyl (TdT) nick end labeling analisi (TUNEL)</li>
	<li>Analisi di Immunohistochemical</li>
	<li>Analisi dell'espressione genica</li>
	<li>Analisi Western blot</li>
	<li>Analisi di ELISA</li>
	<li>Fluorescenza-attivato delle cellule ordinamento analisi (FACS)</li>
	<li>
In vivo modello dello xenotrapianto</li>
</ol>

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<li>De Vita, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+classification%2C+treatment+options%2C+and+new+perspectives+in+the+management+of+adipocytic+sarcomas%5BTitle%5D)+AND+%22Onco+Targets+Ther%22%5BJournal%5D)">Current classification, treatment options, and new perspectives in the management of adipocytic sarcomas.</a> Onco Targets Ther. 9 (12), 6233-6246 (2016).</li>
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<li>Ducimetière, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidence+of+sarcoma+histotypes+and+molecular+subtypes+in+a+prospective+epidemiological+study+with+central+pathology+review+and+molecular+testing%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Incidence of sarcoma histotypes and molecular subtypes in a prospective epidemiological study with central pathology review and molecular testing.</a> PLoS One. 6 (8), 20294(2011).</li>
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</ol>

Gli autori non hanno conflitti di interesse a divulgare.

Ben definiti modelli preclinici sono necessari delucidare la priorità bassa molecolare dei tumori, predire la prognosi e sviluppare nuove strategie terapeutiche per i pazienti oncologici. Ciò è particolarmente importante per i tumori rari ad esempio STS cui alta eterogeneità in termini di morfologia, comportamento aggressivo di potenziale e clinico sfida la nostra comprensione della biologia di STS e gestione del paziente21. Inoltre, le poche righe di cellule di sarcoma commerciale disponibile lim...

Sarcomi dei tessuti molli (STS) includono una gamma di lesioni eterogenee della contabilità di origine mesenchimale per 1% di tutti i tumori solidi1,2, e la nuova classificazione dell'organizzazione mondiale della sanità riconosce la presenza di più di 50 diversi sottotipi3. Tra questi, gli istotipi più comuni sono del adipocyte sarcoma o liposarcoma e leiomiosarcoma, pari al 15% e 11% di tutte le m adulte, rispettivamente4,5. Anche se STS può svilupparsi in diverse parti del corpo, le estremità e il retroperitoneum sono i siti più comuni, che si verificano nel 60% e il 20% dei casi, rispettivamente6.
La pietra angolare della terapia per la malattia localizzata è la resezione chirurgica larga, considerando che i benefici della chemioterapia adiuvante e neoadiuvante sono ancora poco chiari e vengono considerati solo in casi selezionati7. In metastatica, la chemioterapia è lo standard di cura ma Mostra risultati limitati8. Una migliore comprensione della biologia molecolare di STS contribuirebbe a migliorare la diagnosi differenziale corrente, ottimizzare i trattamenti disponibili e identificare nuovi bersagli per la terapia.
In questo contesto, la ricerca sul cancro è stata eseguita per molti anni di utilizzo di linee cellulari immortalizzate9. Questi modelli sperimentali sono normalmente coltivati in monostrato standard supporta o impiantati nei roditori immunodeficienti per stabilire modelli in vivo dello xenotrapianto10. Linee cellulari immortalizzate rappresentano un materiale maneggevole e facile-a-store, con la quale un ampio numero di esperimenti di ricerca può essere eseguito. Sono, infatti, il meno costoso e più ampiamente usato strumento in studi preclinici11.
Tuttavia, modelli di base di cellula del cancro hanno anche alcune limitazioni, ad es. prolungata cultura in un sistema monostrato insieme a un numero crescente di passaggi induce fenotipica e deriva genetica, facendo le cellule meno probabile di ricapitolare chiave tumore caratteristiche. Inoltre, colture cellulari linea non riescono a riprodurre l'interazione cellula--cellula e la segnalazione area interattiva di molecola che imitano il comportamento biologico dei tumori e caratterizzano il microambiente tumorale. Questi problemi costituiscono la base del divario esistente tra risultati preclinici e clinici12.
Dato quanto sopra, l'interesse in colture primarie di paziente-derivato è aumentato13. Infatti, l'asportazione del tessuto maligno e normale riduce il rischio di perdere il fenotipo delle cellule di cancro ed eterogeneità, offrendo così il materiale di partenza che è più rappresentativo del microambiente tumorale. Inoltre, l'uso di campioni tumorali freschi raccolti da pazienti sottoposti a resezione chirurgica permette di indagare i singoli tumori e per confrontare diverse lesioni dalla stessa parte del corpo di un paziente14. Per i motivi suesposti, colture di cellule tessuto-derivate forniscono un materiale prezioso per studiare il tumore fisiopatologia e farmacologia15,16,17, soprattutto nella m. a quali linee di cellule di sarcoma commercialmente disponibili sono limitato18. Abbiamo così ottimizzato un metodo per stabilire una cultura cellula primaria STS paziente-derivati a partire da tumore chirurgicamente asportato tessuto13,19,20. Il nostro metodo consiste di disgregare l'esemplare del tumore in piccoli frammenti di tessuto seguiti da una notte dissociazione enzimatica del tessuto per ottenere una sospensione di singola cellula. Il giorno seguente, la digestione enzimatica viene arrestata con l'aggiunta di terreni di coltura fresco e la sospensione ottenuta viene filtrata per rimuovere frammenti di tessuto, aggregati cellulari e materiale in eccesso matrice o detriti. Infine, una frazione di cellule isolate del tumore è cytospinned su vetrini, fissato e memorizzati per analisi a valle puntato su confermando l'istituzione di colture primarie di STS da cytomorphological, immunohistochemical e valutazione citogenetica molecolare (ad es. analisi dei pesci di amplificazione MDM2 rappresenta la diagnosi differenziale standard per un liposarcoma bene-differenziato e il liposarcoma dedifferentiated) 4. le cellule restanti sono seminate in una cultura standard monostrato per studi farmacologici e profilatura di espressione genica. Tutti gli esperimenti sono effettuati utilizzando basso passaggio colture primarie per evitare la selezione di cancro specifico subcloni e analizzati da un patologo esperto sarcoma. Così abbiamo creato un pienamente umano m ex vivo modello13,19,20. Questo altamente versatile, facile da maniglia modello potrebbe rappresentare uno strumento utile per diversi tipi di ricerca preclinica, ad esempio per identificare nuovi marcatori molecolari per la diagnosi e la prognosi o per acquisire una più profonda comprensione dell'attività e meccanismi di azione di standard e nuovi farmaci utilizzati nella gestione delle m.

<table><tbody><tr><td>DMEM Alto glucosio</td><td>EuroClone</td><td>ECB7501L</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale bovino</td><td>EuroClone</td><td>ECS0180D</td><td></td></tr><tr><td>Glutammina</td><td>Gibco</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldeide 4% soluzione acquosa,</td><td>Microscopia elettronica</td> di grado EM <td>Scienze 157-4-100</td><td></td></tr><tr><td>Penicillina streptomicina</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Reagente Triazol</td><td>Ambion Life-Technologies</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>EuroClone</td><td>ECB3052D</td><td></td></tr></tbody></table>

istituzione di una coltura primaria di sarcoma dei tessuti molli paziente-derivato

Establishment of a Primary Culture of Patient-derived Soft Tissue Sarcoma

Sarcomi dei tessuti molli (STS) rappresentano uno spettro di neoplasie eterogenei con un difficile diagnosi, classificazione e gestione. Ad oggi, sono state identificate più di 50 sottotipi istologici di questi rari tumori solidi. Così, grazie alla loro straordinaria diversità e bassa incidenza, la nostra comprensione della biologia di questi tumori è ancora limitato. Paziente-derivato culture rappresentano la piattaforma ideale per studiare la farmacologia e la patofisiologia di STS. Così abbiamo sviluppato un modello preclinico umano di m. a partire da esemplari del tumore raccolti da pazienti sottoposti a resezione chirurgica. Paziente-derivato di colture cellulari STS sono sono ottenuti da esemplari chirurgici di digestione della collagenosi e isolati mediante filtrazione. Cellule sono stati contati, seminate e lasciate per 14 giorni in colture monostrato standard e poi elaborate da analisi a valle. Prima di eseguire l'analisi molecolare o farmaceutici, l'istituzione di colture primarie di STS è stata confermata attraverso la valutazione delle caratteristiche citomorfologiche e, quando disponibili, gli indicatori immunohistochemical. Questo metodo rappresenta un utile strumento 1) per studiare la storia naturale di queste neoplasie scarsamente esplorate e 2) per testare gli effetti di diversi farmaci nel tentativo di saperne di più su loro meccanismi di azione.

Abbiamo progettato un metodo semplice per ottenere l'istituzione di una coltura primaria di sarcoma dei tessuti molli paziente-derivato e riferire qui un esempio di risultati ottenuti su uno specifico STS histotype13. Il protocollo è stato utilizzato per la creazione di colture primarie di diversi istotipi m compreso il liposarcoma ben differenziato, dedifferenziate liposarcoma, liposarcoma myxoid, liposarcoma pleomorphic, mixofibrosarcoma, indifferenziato fibromat...

Il seguente protocollo si concentra sulla creazione di una coltura primaria di sarcoma dei tessuti molli paziente-derivato (STS). Questo modello potrebbe aiutarci a comprendere meglio le priorità bassa molecolare e il profilo farmacologico di queste malignità rare e potrebbe rappresentare un punto di partenza per ulteriori ricerche finalizzate a migliorare la gestione di STS.

Istituzione di una coltura primaria di Sarcoma dei tessuti molli paziente-derivato

Soft tissue sarcomas (STS) represent a spectrum of heterogeneous malignancies with a difficult diagnosis, classification, and management. To date, more ...

L'obiettivo generale di questo modello preclinico umano derivato da tessuto tumorale resecato chirurgicamente è quello di ottenere la creazione di una coltura primaria di sarcoma dei tessuti molli derivato da paziente. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave sulla fisiopatologia del sarcoma dei tessuti molli e rappresenta un importante strumento preclinico per prevedere la risposta alla terapia. Il vantaggio principale di questa tecnica è che si tratta di un modello preclinico completamente umano.Le implicazioni di questa tecnica si estendono alla terapia del sarcoma dei tessuti molli perché questo modello preclinico può essere testato con farmaci innovativi convenzionali per studiarne l'attività e il meccanismo d'azione. Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sul sarcoma dei tessuti molli, può anche essere applicato allo studio dell'interazione tra cellule tumorali e cellule dei tessuti molli. Gli individui nuovi a questo metodo avranno difficoltà a causa dell'eterogeneità dei tessuti tumorali e nell'isolamento delle cellule tumorali.La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale, poiché la selezione iniziale delle cellule del sarcoma dei tessuti

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In questo articolo si descrive la preparazione di tessuti melanoma appena ottenuto in colture cellulari primarie, e come rimuovere le contaminazioni di eritrociti e fibroblasti dalle cellule tumorali. Infine, si descrive come...

Paziente coltura cellulare derivato e isolamento di CD133<sup&gt; +</sup&gt; Putativi staminali alle cellule tumorali di melanoma

Sono descritti metodi per creare tessuti tumorali 3D umani come sistemi di test. Queste tecnologie si basano su un decellularized biologica vascolarizzato impalcatura (BioVaSc), cellule umane primarie e una linea di cellule tumorali, che possono essere coltivate in condizioni statiche e in condizioni dinamiche in un bioreattore flusso.

Ingegneria dei tessuti di un Umano 3D<em&gt; In vitro</em&gt; Sistema Tumore test

Viene descritto un protocollo per estrarre cellule umane primarie dal tumore chirurgico del colon e dai tessuti normali. Le cellule isolate vengono poi coltivate su substrati elastici morbidi (idrogel di poliacrilammide) funzionalizzati da una proteina della matrice extracellulare e incorporati con microsfere fluorescenti. La citometria di trazione viene eseguita per valutare le sollecitazioni contrattili cellulari.

Isolamento di primarie cellule del colon tumorali umane dai tessuti chirurgici e Coltura direttamente su più elastica e flessibile substrati per trazione citometria

La presenza di cellule staminali tumorali (CSC) in sarcomi ossei è stato recentemente collegato a loro patogenesi. In questo articolo, vi presentiamo l'isolamento di CSC da colture cellulari primarie ottenute da biopsie umane di osteosarcoma convenzionale (OS) con la capacità di CSC di crescere in condizioni non aderenti.

Istituzione di Cancer Stem colture cellulari da umana convenzionale osteosarcoma

I tumori cutanei vengono spesso scartati dopo la chirurgia microscopica di Mohs. Qui viene descritto un protocollo che consente al personale di supporto clinico di elaborare e memorizzare in modo efficace campioni tumorali cutanei ( ad esempio, carcinoma delle cellule squamose, carcinoma delle cellule basali e melanoma) per applicazioni di laboratorio a valle senza interferire con le operazioni cliniche.

Istituzione di un Bioreposito di base clinico

Descriviamo un protocollo dettagliato per l'isolamento delle cellule che hanno invitato il tumore dalle cellule tumorali che hanno avuto l'ecosmia torace dal paziente xenografti derivati dal paziente mediante smistamento cellulare attivato dalla fluorescenza, usando l'antigene leucocito umano-1 (HLA-1) come marcatore negativo, e per l'ulteriore convalida e caratterizzazione di queste cellule tumorali hLA-1-negative.

Isolamento e caratterizzazione delle cellule che invitano il tumore dalle cellule che hanno invitato il tumore da Sarcoma Xenotrapianto derivato dal paziente

Forniamo un metodo per la generazione, la coltivazione e l'analisi sistematica delle fette organotipiche derivate da tumori del polmone murino. Inoltre descriviamo come ottimizzare per spessore della fetta e come selezionare le concentrazioni di farmaco per il trattamento di fette di tumore.

Valutazioni e analisi di tumore fetta espianti come prerequisito per la prova diagnostica

Il presente protocollo descrive la generazione di modelli di coltura tumorale 3D da cellule tumorali primarie e la valutazione della loro sensibilità ai farmaci utilizzando saggi di vitalità cellulare ed esami microscopici.

Stabilire sferoidi 3-dimensionali da campioni tumorali derivati dal paziente e valutare la loro sensibilità ai farmaci

Qui viene fornito un protocollo dettagliato per stabilire organoidi mammari umani da resezioni di tumore al seno derivate da pazienti o tessuto mammario normale. Il protocollo fornisce istruzioni dettagliate complete per la coltivazione, il congelamento e lo scongelamento degli organoidi mammari derivati dal paziente umano.

Istituzione e coltura di organoidi mammari derivati da pazienti

Gli organoidi tumorali hanno rivoluzionato la ricerca sul cancro e l'approccio alla medicina personalizzata. Rappresentano un modello tumorale clinicamente rilevante che consente ai ricercatori di stare un passo avanti rispetto al tumore in clinica. Questo protocollo stabilisce organoidi tumorali da campioni di tessuto tumorale pancreatico fresco e xenotrapianti derivati da pazienti di origine adenocarcinoma pancreatica.

Costituzione di organoidi e fibroblasti tumorali derivati dal cancro del pancreas da tessuto fresco

Il protocollo descrive un metodo per la creazione di un modello di organoide di cancro colorettale (CRC) derivato da pazienti co-coltivato con linfociti infiltranti il tumore (TIL) per studiarne le interazioni e il potenziale terapeutico. Questo modello fornisce una piattaforma preclinica per esplorare le risposte immunitarie nel microambiente tumorale e per prevedere l'efficacia della terapia basata su TIL per il trattamento personalizzato del CRC.

Istituzione di un sistema di co-coltura di organoidi tumorali colorettali derivati da pazienti e linfociti infiltranti il tumore (TIL)

Impara a stabilire una coltura primaria di sarcoma dei tessuti molli derivata da paziente. Questo modello preclinico umano consente di studiare la patofisiologia tumorale e testare risposte terapeutiche in vitro.

Istituzione di una coltura primaria di Sarcoma dei tessuti molli paziente-derivato

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