24 agosto 2018
Questo protocollo descrive un metodo per la coltivazione su larga scala di Caenorhabditis elegans su terreni solidi. Come alternativa alla coltura liquida, questo protocollo permette di ottenere parametri di diverse scale sotto la piastra-base di coltivazione. Questo aumenta la comparabilità dei risultati omettendo le differenze morfologiche e metaboliche tra cultura mediatica di liquidi e solidi.
Nel campo di C. elegans, questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave che richiedono la produzione di grandi popolazioni di nematodi e campioni utilizzando la coltura su piastra. I principali vantaggi di questo protocollo sono la sua facile istituzione e la sua facilità di descrizione, comprese le insidie e le applicazioni. Dopo aver ottenuto una popolazione sincronizzata di nematodi, aggiungere circa un millilitro di tampone M nine alle piastre e distribuire accuratamente il tampone facendo oscillare le piastre.
Successivamente, raccogli i nematodi in un tubo da 15 millilitri. Ora, capovolgi il tubo e usa un microscopio per valutare la densità dei nematodi. Regolare la densità della sospensione secondo necessità e continuare a valutarla al microscopio.
Applicare 150 microlitri di sospensione direttamente sulle piastre con puntali per pipette modificati. Per garantire una distribuzione uniforme dei nematodi tra le piastre, capovolgere il tubo di sospensione a intervalli regolari. Per prima cosa, lavare i nematodi utilizzando una punta di pipetta modificata con circa 500 microlitri di tampone M nine.
Utilizzando lo stesso tampone, continuare a staccare i nematodi fino a quando la maggior parte degli animali non viene raccolta in sospensione. Quindi, prelevare i nematodi con una punta di pipetta modificata e trasferirli su una piastra con OP50. Le punte delle pipette modificate riducono lo sforzo di taglio e i danni ai nematodi a causa di un diametro maggiore.
Quindi, lasciare asciugare la piastra. Prima di raccogliere i campioni, preparare l'azoto liquido per congelare i nematodi raccolti. Quindi, posizionare il tampone M nine sul ghiaccio.
Applicare un millilitro di tampone M nine su ciascuna piastra e agitare delicatamente per lavare ogni piastra. Quindi, prelevare il volume del tampone M nine e trasferirlo in nuove provette da 15 millilitri. Centrifugare brevemente la provetta a 800 volte g, prima di rimuovere la maggior parte del tampone M nine.
Successivamente, lavare i campioni tre volte con 10 millilitri di tampone M nine per rimuovere eventuali batteri. Utilizzando una pipetta di vetro, trasferire ogni pellet in una provetta vuota da 1,5 millilitri. Utilizzare la pipetta di vetro per prelevare un millilitro di tampone M nine dal secondo tubo da 1,5 millilitri, per sciacquare i nematodi dalla parete della pipetta.
Quindi, lavare i nematodi rimanenti dalle provette da 15 millilitri e trasferirli nelle provette del campione. Quindi, centrifugare le provette del campione a 19.000 volte g per un minuto e rimuovere quanto più surnatante possibile. Quindi, sigillare ogni provetta con un film di paraffina e congelarle immediatamente in azoto liquido.
Conservare i tubi a meno 80 gradi Celsius fino alla preparazione del lisato. Aggiungere gli stessi volumi di perle di ossido di zirconio da 0,5 millimetri e il doppio del volume di tampone lisato con cocktail di inibitori della proteinasi a ciascun campione congelato. Quindi, mettere i tubi in un omogeneizzatore per un minuto a velocità nove.
Centrifugare i campioni per 30 minuti a quattro gradi Celsius e 19.000 volte g. Infine, trasferisci il surnatante in un nuovo tubo su ghiaccio e conservalo a meno 80 gradi Celsius per esperimenti futuri. In questo protocollo, grandi quantità di C. elegans sono state coltivate per applicazioni nella ricerca sul diabete.
Il numero di nematodi raccolti era correlato alla resa proteica del lisato, dimostrando che l'isolamento quantitativo riproducibile delle proteine può essere ottenuto utilizzando questo protocollo. Qui sono mostrate le analisi spettrometriche di massa del metabolita reattivo metilgliossale e i prodotti finali della glicazione avanzata formati dall'esposizione al metilgliossale. Sono stati confrontati i nematodi trattati con glucosio e i controlli.
Il trasferimento dei nematodi tramite pipetta può creare stress da taglio, danneggiando potenzialmente i nematodi. I livelli di stress ossidativo nei nematodi pipettati e nei nematodi trasferiti con un filo metallico non differivano utilizzando questo protocollo. Seguendo questa procedura, possono essere eseguiti altri metodi come il western blot, al fine di rispondere a ulteriori domande in proteomica.
Questo protocollo facilita anche gli esperimenti che mettono in relazione più parametri con la stessa popolazione.
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Questo protocollo descrive un metodo per la coltivazione su larga scala di Caenorhabditis elegans su mezzi solidi. Questo approccio facilita la produzione di popolazioni e campioni di nematodi di grandi dimensioni, migliorando la comparabilità dei risultati.
La coltivazione su larga scala di C. elegans permette un isolamento riproducibile e quantitativo di proteine per la scoperta di biomarcatori legati al diabete, supportando la validazione di bersagli nelle complicanze neurodegenerative. Questo metodo fornisce un flusso di lavoro scalabile e con ridotto stress da taglio per l'analisi proteomica di AGEs e ROS, direttamente applicabile alla riduzione del rischio meccanicistico nella fase iniziale della scoperta di farmaci. Facilitando la preparazione sincronizzata di popolazioni in condizioni controllate, migliora l'affidabilità predittiva nei modelli preclinici di patologia diabetica.
Questo metodo si colloca all'interno del percorso di scoperta, che va dal test delle ipotesi all'identificazione dei composti promettenti fino alla validazione preclinica, supportando in particolare la ricerca sulla neurodegenerazione associata al diabete.