Name: Reazione a catena della polimerasi digitale per la variazione genetica in un paziente di poliposi adenomatosa familiare sporadica utilizzando il formato di Chip-in-a-tubo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-20T14:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 58 s
Description: Scopri la PCR digitale per rilevare varianti genetiche rare nel campione di un paziente con poliposi adenomatosa familiare sporadica. Questo metodo ad alta sensibilità supporta la medicina di precisione.

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Questo studio è stato sostenuto da una sovvenzione per Scientific Research (C) della Japan Society per la promozione della scienza (JSPS) (No. 15 K 08397) a Tomoaki Kahyo e da sovvenzioni dall'Agenzia per la ricerca medica e sviluppo (AMED) (No. 927960719), Giappone Sovvenzione per ricerca esplorativa (n. 16K 15256), spese per progetti associati di un bilancio di speciale incentivo per la promozione di una riforma nazionale Università di sovvenzioni di spese di gestione (No. 1019253) e la Fondazione di ricerca fumatori a Haruhiko Sugimura. Gli autori ringraziano il Dr. Iwaizumi e Dr. Kurachi per il loro supporto clinico. I finanziatori non avevano alcun ruolo nella preparazione del manoscritto. Figura 3, Figura 4e nella tabella 4 sono adattati e ristampato da un articolo di Kahyo et al. 10, con il permesso di Elsevier.

Il disegno dello studio è stato approvato da Institutional Review Boards di Hamamatsu University School of Medicine (G-260-4). Consenso informato è stato ottenuto dal paziente e i suoi genitori.
1. controllo di qualità di DNA Genomic
Nota: Il DNA di Genomic (gDNA) è stata estratta dal sangue periferico utilizzando il metodo di purificazione del DNA basati su silice-membrana ben consolidato. In anticipo rispetto le procedure, che seguono la concentrazione di gDNA è stata determinata utilizzando uno spettrofotometro.
<ol><li>Preparare il campione gDNA ad una concentrazione di 10-100 ng / µ l.</li>
	<li>Aggiungere 10 µ l di tampone del campione di DNA per una striscia di 8-tubo.</li>
	<li>Aggiungere 1 µ l di DNA ladder o gDNA ai tubi. Vortice la miscela per 1 min, utilizzando l'allegato di micropiastre.</li>
	<li>Il tubo di carico, i gel di dispositivo e puntali per pipette in elettroforesi dello strumento (Tabella materiali) e avviare l'esecuzione premendo il pulsante 'Start'. Nota: Il sistema di elettroforesi funzionerà automaticamente con un clic sul pulsante Start.</li>
	<li>Confermare che l'indicatore inferiore contenuta nel buffer del campione di DNA è assegnato correttamente sugli elettroferogrammi. Se è assegnato in modo non corretto, assegnare manualmente il marcatore in 'modalità di Electroherogram' del software. Nota: Il numero di integrità del DNA (DIN) viene calcolato automaticamente. Il valore DIN deriva dall'integrità del DNA. Alta e bassa DIN valori indicano gDNA altamente intatto e fortemente degradata, rispettivamente.</li>
	<li>Specificare l'area di dimensioni di gDNA (&gt; 200 bp) in 'modalità di regione' del software per calcolare automaticamente la concentrazione di gDNA (&gt; 200 bp).</li>
</ol>2. primer e Design della sonda
<ol><li>Calcolare i valori di temperatura (Tm) fusione utilizzando qualsiasi strumento di accesso aperto alle seguenti condizioni: 10 – 25 basi, 50mm Na+/k+, 0,80 mM dNTPs e 3 mM Mg2 + (Tabella materiali). Progettare il primer forward e reverse per amplificare la regione genomica contenente gli alleli di destinazione con il valore dim T intorno a 60 ° C e la lunghezza di amplicon a 100 – 300 bp. Nota: Fare riferimento alla tabella 1 per la concentrazione di oligonucleotidi.</li>
	<li>Disegno sonde di acido nucleico bloccato (LNA) per gli alleli di riferimento e la variante in base alle condizioni seguenti: (i): 1 – 6 LNA sono presenti in ogni sonda; (ii) un colorante fluorescente e un quencher sono presenti a 5'- e 3'-capolinea di ogni sonda, rispettivamente; (iii) la differenza tra i valori dim T delle sonde abbinati e non corrispondenti è &gt; 10 ° C; (iv) Tm i valori delle sonde abbinati e non corrispondenti sono più alti e più bassi di quelli dei primer, rispettivamente [ad es., forward primer: 60,8 ° C, reverse primer: 59,8 ° C, sonda di riferimento allele (abbinato/non corrispondenti): 62.6/45.3 ° C, variante sonda di allele (abbinato/non corrispondenti): 61.7/50.5 ° C]. I valori dim T sono stati calcolati utilizzando lo strumento di accesso aperto utilizzato anche per passaggio 2.1.</li>
	<li>Assicurarsi che il progettato primer e sonde non comprendono i polimorfismi a singolo nucleotide con una frequenza di &gt; 0.1% come determinato dalle basi di dati [ad esempio, il database di Single Nucleotide Polymorphism (dbSNP)].</li>
</ol>3. digital PCR
<ol><li>Preparare il primer e sonde gDNA soluzioni di riserva nelle concentrazioni indicate nella tabella 1 con un buffer di TE e conservarli a -20 – 4 ° C.</li>
	<li>
Mescolare i reagenti a temperatura ambiente in un volume totale di 15 µ l a una concentrazione finale come descritto nella tabella 1.
	<ol>
<li>Aggiungere 3 µ l di acqua distillata invece gDNA in un controllo di modello di no (NTC).</li>
		<li>Preparare 3,5 x la quantità della miscela PCR in triplice copia per tenere conto dell'errore di pipettaggio.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dispensare la miscela PCR su e giù per mescolarlo.</li>
	<li>Impostare la piattaforma di caricamento sul chip costruito nella striscia di 8-tubo e disporli sull'autoloader. Assicurarsi che vi sia un contatto tra il chip e il pianale di carico.</li>
	<li>Montare un dispositivo di scorrimento del carico sulla piattaforma e tenere premuto il cursore con il tappo fuori il caricatore.</li>
	<li>Pipettare 15 µ l della miscela PCR sulla piattaforma vicino alla punta del dispositivo di scorrimento (Figura 1A).</li>
	<li>Eseguire il loader premendo il pulsante del caricatore (per circa 1 min). Nota: Non è un problema se una piccola quantità di miscela PCR rimane sulla piattaforma. È possibile eseguire in modo sequenziale nuovamente il caricatore.</li>
	<li>Impostare il chip-in-a-tubo riempito di miscela PCR nello slot sul lato del rinforzatore di tenuta. Spingere il coperchio scorrevole e il bordo del coperchio superiore per non rompere il chip (Figura 1B).</li>
	<li>Eseguire il rinforzatore di tenuta (circa 2 min). In sequenza, eseguire nuovamente il rinforzatore di tenuta per 1 min se una pozza di liquido è ancora visibile, perché un sealing incompleto provoca una contaminazione incrociata dei segnali positivi (figure 1 e 1 D).</li>
	<li>Aggiungere 230 µ l di liquido, un reattivo a base di olio, ai tubi sigillante. Nota: I chip dovrebbero ora essere immersa nel liquido.</li>
	<li>Impostare i tubi nel termociclatore. Eseguire il termociclatore come descritto in tabella 2 (per circa 2 h). Ottimizzare la temperatura o la durata della PCR se c'è una distribuzione non uniforme delle partizioni positive (Figura 1E). Nota: Si consiglia di impostare la velocità di rampa a circa 1 ° C/s.</li>
	<li>Lasciare le provette nel termociclatore per almeno 15 min per ridurre il rumore della linea di base. Nota: I tubi possono essere lasciati durante la notte pure. Segnali di fluorescenza sono stati rilevati anche il giorno seguente.</li>
	<li>Impostare i tubi sull'asse di rilevamento e versare il jig 6 mL di acqua distillata. Se le bolle d'aria sono visibili all'interno e all'esterno dei tubi, eliminarle (figure 1F e 1 G).</li>
	<li>Caricare il jig nel rivelatore ed eseguirlo con un clic sul pulsante 'Esegui' del software dopo la selezione delle schede Fluorescene, esperimento e campione/NTC (Tabella materiali). Nota: Il rilevamento del doppio colore di otto campioni con un'intensità di default dura circa 4-5 min.</li>
	<li>Confermare la trama di posizione, istogramma e grafico a dispersione 2D. Nota: l'intensità della fluorescenza delle partizioni negative iIf è alta, regolare l'intensità con un clic sul pulsante impostazioni del software, in modo che cade all'interno della gamma di 30 – 70.</li>
	<li>Calcolare la frazione di allele variante (VAF) utilizzando la seguente formula: <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/58199/58199eq1.jpg"> Qui, Cv e Cr sono i numeri di copia della variante e l'allele di riferimento, rispettivamente. Nota: Sono calcolate automaticamente nel programma software basato su statistiche di Poisson.</li>
</ol>4. raccolta del prodotto di PCR
<ol><li>Rimuovere il liquido sigillante dal tubo.</li>
	<li>Aggiungere 100 µ l di buffer di TE al tubo. Vortexare vigorosamente per 30 s e brevemente Centrifugare la provetta.</li>
	<li>Trasferire la soluzione di TE in un'altra provetta e aggiungere 30 µ l di acetato di sodio 3 M e 200 µ l di etanolo.</li>
	<li>Raffreddare la soluzione a-20 ° C durante la notte.</li>
	<li>Centrifugare la soluzione a 16.000 x g per 30 minuti e rimuovere il surnatante.</li>
	<li>Aggiungere 300 µ l di etanolo di 80% per il tubo e il vortice.</li>
	<li>Centrifugare la soluzione per 15 min a 16.000 x g e rimuovere il surnatante. Consentire il precipitato asciugare all'aria per 5 min.</li>
	<li>Sciogliere il precipitato nel 1-5 µ l di tampone di TE dopo essiccazione all'aria.</li>
	<li>Se necessario, valutare la dimensione di prodotto utilizzando uno strumento di elettroforesi con riferimento al passaggio 1. Caricare 1 µ l della soluzione per il dispositivo di gel per un'elevata sensibilità (Tabella materiali).</li>
</ol>

<ol><li>Majumdar, N., Wessel, T., Marks, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+PCR+modeling+for+maximal+sensitivity%2C+dynamic+range+and+measurement+precision%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Digital PCR modeling for maximal sensitivity, dynamic range and measurement precision.</a> PLoS One. 10 (3), 0118833(2015).</li>
<li>Huggett, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+digital+MIQE+guidelines%3A+Minimum+Information+for+Publication+of+Quantitative+Digital+PCR+Experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">The digital MIQE guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Digital PCR Experiments.</a> Clinical Chemistry. 59 (6), 892-902 (2013).</li>
<li>Chen, L., Liu, P., Evans, T. C., Ettwiller, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+damage+is+a+pervasive+cause+of+sequencing+errors%2C+directly+confounding+variant+identification%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">DNA damage is a pervasive cause of sequencing errors, directly confounding variant identification.</a> Science. 355 (6326), 752-756 (2017).</li>
<li>Alix-Panabières, C., Pantel, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+Applications+of+Circulating+Tumor+Cells+and+Circulating+Tumor+DNA+as+Liquid+Biopsy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Discovery%22%5BJournal%5D)">Clinical Applications of Circulating Tumor Cells and Circulating Tumor DNA as Liquid Biopsy.</a> Cancer Discovery. 6 (5), 479-491 (2016).</li>
<li>Kiss, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+quantitative+polymerase+chain+reaction+in+picoliter+droplets%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">High-throughput quantitative polymerase chain reaction in picoliter droplets.</a> Analytical Chemistry. 80 (23), 8975-8981 (2008).</li>
<li>Hindson, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+droplet+digital+PCR+system+for+absolute+quantitation+of+DNA+copy+number%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">High-throughput droplet digital PCR system for absolute quantitation of DNA copy number.</a> Analytical Chemistry. 83 (22), 8604-8610 (2011).</li>
<li>Ottesen, E. A., Hong, J. W., Quake, S. R., Leadbetter, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+digital+PCR+enables+multigene+analysis+of+individual+environmental+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Microfluidic digital PCR enables multigene analysis of individual environmental bacteria.</a> Science. 314 (5804), 1464-1467 (2006).</li>
<li>Low, H., Chan, S. J., Soo, G. H., Ling, B., Tan, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clarity%E2%84%A2+digital+PCR+system%3A+a+novel+platform+for+absolute+quantification+of+nucleic+acids%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+and+Bioanalytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Clarity™ digital PCR system: a novel platform for absolute quantification of nucleic acids.</a> Analytical and Bioanalytical Chemistry. 409 (7), 1869-1875 (2017).</li>
<li>Iwaizumi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+APC+mosaicism+in+a+patient+with+familial+adenomatous+polyposis%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Genome+Variation%22%5BJournal%5D)">A novel APC mosaicism in a patient with familial adenomatous polyposis.</a> Human Genome Variation. 2, 15057(2015).</li>
<li>Kahyo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+digital+PCR+with+chip-in-a-tube+format+to+analyze+Adenomatous+polyposis+coli+%28APC%29+somatic+mosaicism%5BTitle%5D)+AND+%22Clinica+Chimica+Acta%22%5BJournal%5D)">Application of digital PCR with chip-in-a-tube format to analyze Adenomatous polyposis coli (APC) somatic mosaicism.</a> Clinica Chimica Acta. 475, 91-96 (2017).</li>
<li>Kanai, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Japanese+Society+of+Pathology+Guidelines+on+the+handling+of+pathological+tissue+samples+for+genomic+research%3A+Standard+operating+procedures+based+on+empirical+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Pathology+International%22%5BJournal%5D)">The Japanese Society of Pathology Guidelines on the handling of pathological tissue samples for genomic research: Standard operating procedures based on empirical analyses.</a> Pathology International. 68 (2), 63-90 (2018).</li>
<li>Lorenz, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymerase+chain+reaction%3A+basic+protocol+plus+troubleshooting+and+optimization+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies.</a> Journal of Visualized Experiments. (63), e3998(2012).</li>
<li>Cao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+digital+polymerase+chain+reaction+%28dPCR%29+and+its+emerging+biomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biosensors+and+Bioelectronics%22%5BJournal%5D)">Advances in digital polymerase chain reaction (dPCR) and its emerging biomedical applications.</a> Biosensors and Bioelectronics. 90, 459-474 (2017).</li>
<li>Bio-Rad Laboratories. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/Isr/literature/Bulletin_6311.pdf">https://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/Isr/literature/Bulletin_6311.pdf</a> (2018).</li>
<li>Thermo Fisher Scientific. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.garvan.org.au/research/capabilities/molecular-genetics/documents/qs-3d-user-guide.pdf">https://www.garvan.org.au/research/capabilities/molecular-genetics/documents/qs-3d-user-guide.pdf</a> (2013).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Il valore DIN viene spesso utilizzato per valutare il DNA danneggiato (per esempio, gDNA dal tessuto paraffina-incastonato formalina-fisso) prima di quantificazione o sequenziamento, perché può causare un degrado avanzato di gDNA bassa qualità dati. DIN valutazione è, diventando così, un passo importante nel controllo della qualità di umano gDNA11. Poiché il gDNA utilizzato nell'esperimento rappresentanza aveva conservato a 4 ° C per 4 – 11 anni dopo la sua estrazione dal sangue, i suoi valori DIN sono stati determinati per un controllo di qualità prima del saggio dPCR. Questo passaggio è particolarmente consigliato se i materiali sono sospettati di essere danneggiato. La concentrazione di gDNA inoltre è stata determinata tramite l'elettroforesi. Poiché la gamma dinamica di dPCR non è così ampia come per qPCR a causa delle limitazioni delle partizioni, una misurazione della concentrazione gDNA è un passo importante per l'analisi di un successo dPCR. Come la quantità di input DNA è stato correlato con il numero totale delle copie degli alleli variante e riferimento nell'analisi della dPCR (R-squared = 0.935; Tabella 4), l'elettroforesi è utile per misurare la concentrazione di gDNA prima del saggio dPCR.
Il caricamento e processi di tenuta sono passi importanti per risultati di successo. È fondamentale confermare il montaggio appropriato della miscela PCR sulla piattaforma e assicurare un contatto tra il chip e la piattaforma (Figura 1A). Protrusione della miscela PCR dal cursore può causare distribuzione non valido sul chip. Confermando la distribuzione delle partizioni positive e negative su un terreno di posizione è anche necessario per un'analisi precisa, perché si presume nelle statistiche di Poisson che modelli di DNA in modo casuale sono suddivise in camere1. Nei risultati della rappresentativi, partizioni positive sono state distribuite in tutto il chip (Figura 3). Questo risultato soddisfa il requisito per la statistica di Poisson e riflette che il caricamento e la chiusura delle procedure erano efficaci. Quando si impostano i tubi nel rinforzatore di tenuta, il chip potrebbe essere rotto, se la parte centrale del coperchio superiore viene spinto troppo fortemente (Figura 1B). Per evitare questo, spingere delicatamente il bordo del coperchio superiore. Se c'è un ammasso artificiale delle partizioni positive (Figura 1D), il numero di copia può essere sopravvalutato a causa di una contaminazione incrociata tra partizioni. La procedura di tenuta dovrebbe essere migliorata se una pozza di liquido è visibile sulla superficie (Figura 1C) (ad es., rieseguendo sequenzialmente il rinforzatore di tenuta per 1 min). Se c'è una distribuzione non uniforme delle partizioni positive (Figura 1E), il numero di copia può essere sottostimato a causa di insufficiente amplificazione o contaminazione del fluido e l'acqua tenuta. Le condizioni PCR devono essere regolate in questo caso [ad esempio, regolando la temperatura o la durata del PCR (passo 3.11 del protocollo), o facendo in modo che il sigillante liquido e acqua versata nel jig sono pulite]. Segnali di fluorescenza sono rilevati dalla striscia 8-tubo immersa in acqua distillata. Se le bolle d'aria aderire alla superficie del tubo, c'è la possibilità che potrebbero interferire con il rilevamento del segnale (Figura 1F). Pertanto, devono essere deselezionate bolle utilizzando uno strumento, come un puntale bene. Inoltre, le bolle d'aria possono formare all'interno dei tubi quando sono impostate nell'attrezzatura (Figura 1G). Se le bolle all'interno dei tubi sono abbastanza grandi per coprire il chip, essi dovrebbero anche essere cancellati. Le bolle possono cancellare se vengono lasciati per alcuni minuti a temperatura ambiente.
Alcune partizioni positivi potrebbero essere rilevati in NTC. Per evitare una contaminazione dei modelli di DNA, tenere il banco pulito e, se possibile, fare uno spazio pulito con un'unità di filtro del ventilatore. Se si sospetta una contaminazione dei modelli di DNA, accuratamente pulire lo spazio e/o smaltire i reagenti usati. Al contrario, se le partizioni positive dell'allele del riferimento non vengono rilevate in presenza di gDNA, riconfermare le concentrazioni del gDNA, primer e sonde. In particolare, i primer sono stati utilizzati ad una concentrazione più bassa nell'esperimento rappresentativo, rispetto al convenzionale PCR (tabella 1)12. È anche fondamentale confermare la velocità di rampa, che raramente è alterata in PCR convenzionale.
Ciò che rende unico dPCR con il formato di chip-in-a-tubo è il partizionamento della miscela PCR all'interno dell'universale 8-tubo striscia8,13. Un trasferimento delle sezioni partizionamento in una provetta PCR non è necessaria in questo sistema, riducendo così il rischio di contaminazione. C'è anche un vantaggio nel sistema dPCR con formato di chip-in-a-tubo; si impiegano < 4 h alla fine 96 saggi in quel sistema di dPCR, mentre ci vogliono almeno 5 h alla fine lo stesso numero di saggi basati su goccia dPCR14. Inoltre, la striscia di 8-tubo universale consente l'utilizzo di un termociclatore convenzionale, a differenza di altri basati su chip dPCR15, che richiede un termociclatore con un blocco piatto. Inoltre, le conoscenze accumulate e reagenti per la PCR convenzionale possono essere applicati al sistema dPCR. Questo sarà utile per ampliare le applicazioni di dPCR.
Si noti che dPCR presenta diverse limitazioni. In dPCR con il formato di chip-in-a-tubo, il numero di partizione del chip è relativamente basso rispetto a quelli in altre piattaforme dPCR. Ulteriore miglioramento al dispositivo chip sarà necessario aumentare la gamma dinamica, che dipende dal numero di partizioni. Perché lo spazio interno del tubo universale è limitato, un design rivoluzionario che il dispositivo di chip è necessaria per aumentare il numero di partizioni. L'automazione della procedura intera dPCR in futuro sarebbe notevolmente ridurre l'errore umano, con conseguente risultati ancora più affidabili. A causa della sua natura ad alta velocità e ad alta sensibilità, il dPCR con chip-in-a-tubo formato dovrebbe essere applicato per curare un numero di campioni per le biopsie liquide e ambientale del DNA.

PCR quantitativa (qPCR) viene spesso utilizzato per quantificare la variabilità genetica umana, comprese le varianti di singolo nucleotide (SNVs) e variazioni del numeri di copie del DNA (CNV). In qPCR, una reazione della polimerasi viene eseguita in ciascun tubo nello stesso modo come la PCR convenzionale punto finale e un segnale di amplificazione viene acquisito dal tubo dopo ogni ciclo termico. Al contrario, in dPCR, significato dPCR end-point in questo rapporto, la miscela PCR viene caricata in molte camere microscopiche, definito partizioni, dove modelli del DNA sono presenti o assenti a una diluizione limitante e ogni partizione contenente miscela PCR è valutato come negativo o positivo dopo la PCR completa. Mentre è facile stimare che non sono presenti modelli di DNA nelle partizioni negative, non è chiaro quante copie di modelli del DNA sono presenti nelle partizioni positive. Pertanto, il numero di modelli di DNA nelle partizioni positive è stimato sulla distribuzione di Poisson, utilizzando il conteggio dal negativo partizioni1base. dPCR è più costoso e ha una più piccola gamma dinamica rispetto al qPCR, ma questo metodo consente una quantificazione assoluta e offre una maggiore sensibilità e maggiore precisione2.
Una delle applicazioni principali di dPCR è la validazione delle varianti identificate mediante sequenziamento di nuova generazione (NGS). Soprattutto nel caso di varianti rare, le frazioni di variante bassa significato, la convalida è cruciale a causa di errori di sequenziamento che possono verificarsi in NGS3. Mentre Sanger qPCR e sequenziamento sono strumenti utili per la convalida di SNVs e CNVs, la loro sensibilità è bassa rispetto al dPCR. Quindi, la tecnologia dPCR è richiesta per gli studi genetici si occupano di varianti rare. Recentemente, la rilevazione di biopsia liquida di rare varianti legate alle caratteristiche del cancro, come farmaco-resistenza, è diventato un tema caldo nella diagnosi molecolare e terapia4. La tecnologia di dPCR sembra adatta per gli studi di biopsia liquida e dovrebbe avere applicazioni cliniche importanti nel prossimo futuro, anche se miglioramenti correlati alla gamma dinamica e costo sono ancora necessari per essere implementato.
Tecnologia dPCR disponibili in commercio possa essere suddivise approssimativamente in piattaforme basate su chip e gocciolina; la differenza è come i modelli di DNA sono partizionati5,6,7. In dPCR con formato di chip-in-a-tubo, la miscela PCR è distribuita dall'azione capillare in partizioni su un chip. I chip sono costruiti in tubo di otto strisce, che molti personale di laboratorio saranno già familiarità con, e, quindi, otto campioni possono essere trattati a un tempo8. Nella fase di lettura, ci vuole < 1h per trattare 96 campioni rilevando l'intera immagine del chip e non ogni partizione. Dal dPCR con il formato di chip-in-a-tubo ha un throughput elevato rispetto ad altri sistemi dPCR, usabilità e la produttività sono i vantaggi chiave per i suoi utenti.
In questo rapporto, mosaicism somatico del gene APC in un paziente con poliposi adenomatosa familiare sporadico è usato come un caso rappresentativo e vengono confrontati i risultati di dPCR e NGS. Lo scopo principale della presente relazione è quello di quantificare chiaramente una variante di singolo nucleotide con dPCR con il formato di chip-in-a-tubo. Ci auguriamo che questa relazione è utile per i ricercatori interessati ad adottare la piattaforma dPCR per il proprio lavoro.

<table><tbody><tr><td>QIAamp DNA Blood Maxi Kit</td><td>Qiagen</td><td>51194</td><td>Prima del Protocollo 1: Estrazione del DNA genomico</td></tr><tr><td>NanoDrop 1000</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>ND-8000</td><td>Prima del Protocollo 1: Spettrofotometro</td></tr> a <tr><td>8 strisce</td><td>Agilent Technologies</td><td>401428</td><td>Protocollo 1</td></tr><tr><td>Tampone per campioni di DNA genomico</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-5366</td><td>Protocollo 1: Un componente del test del nastro dello schermo del DNA genomico</td></tr><tr><td>Scala del DNA</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-5366</td><td>Protocollo 1: Un componente del test del nastro dello schermo del DNA genomico</td></tr><tr><td>MS3 Piccolo agitatore di base</td><td>IKA</td><td>3617000</td><td>Protocollo 1: Miscelatore a vortice</td></tr><tr><td>ScreenTape del DNA genomico</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-5365</td><td>Protocollo 1: Dispositivo gel</td></tr><tr><td>2200 Sistema</td> <td>TapeStationAgilent Technologies</td><td>G2965AA</td><td>Protocollo 1: Strumento per elettroforesi</td></tr><tr><td>Software di analisi TapeStation</td><td>Agilent Technologies</td><td>in bundle con G2965AA</td><td>Protocollo 1: Software di analisi</td></tr><tr><td>Primer di oligo DNA IDT</td><td>Ordine personalizzato</td><td>Protocollo 2</td><td></td></tr><tr><td>Sonde LNA</td><td>IDT</td><td>Protocollo di ordine personalizzato</td><td>2</td></tr><tr><td>Strumento software</td><td>IDT</td><td>Sito Web: http://biophysics.idtdna.com/</td> <td>Protocollo 2</td></tr><tr><td>database dbSNP Sito</td> web <td>dell'NCBI</td><td>: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP/</td> <td>Protocollo 2</td></tr><tr><td>Tampone TE</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>12090015</td><td>Protocollo 3</td></tr><tr><td>Acqua distillata priva di DNasi/RNasi</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>10977015</td><td>Protocollo 3 (Tabella 1)</td></tr><tr><td>Sonda per PCR digitale Clarity Mastermix</td><td>JN Medsys</td><td>12013</td><td>Protocollo 3 (Tabella 1): 2xPCR Master Mix Un componente di #10011</td></tr><tr><td>Clarity Sealing Fluid</td><td>JN Medsys</td><td>12005</td><td>Protocollo 3: Sealing fluid Un componente di #10011</td></tr><tr><td>Clarity JN Solution</td><td>JN Medsys</td><td>12006</td><td>Protocol 3 (Tabella 1): 20xdPCR solution Un componente di #10011</td></tr><tr><td>Clarity Tube-strip</td><td>JN Medsys</td><td>12007</td><td>Protocollo 3: Chip-in-a-tube Un componente del kit di caricamento del campione Clarity #10011</td></tr><tr><td></td><td>JN Medsys</td><td>12008</td><td>Protocollo 3: Piattaforma di caricamento e cursore Un componente del caricatore automatico #10011</td></tr><tr><td>Clarity JN</td><td>Medsys</td><td>11002</td><td>Protocollo 3: Caricatore automatico Un componente del Clarity Sealing Enhancer #10001</td></tr><tr><td></td><td>JN Medsys</td><td>11003</td><td>Protocollo 3: Sealing enhancer Un componente di #10001</td></tr><tr><td>Clarity Reader</td><td>JN Medsys</td><td>11004</td><td>Protocollo 3: Reader Un componente di #10001</td></tr><tr><td>Life Eco Thermal Cycler</td><td>Bioer Technology</td><td>TC-96GHbC</td><td>Protocollo 3: Thermal cycler</td></tr><tr><td>Clarity Software</td><td>JN Medsys</td><td>In bundle con #10001 Protocollo</td><td>3: Software di analisi</td></tr><tr><td>Nastro dello schermo D1000 ad alta sensibilità</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-5584</td><td>Protocollo 4: dispositivo in gel per un'elevata sensibilità</td></tr></tbody></table>

reazione a catena della polimerasi digitale per la variazione genetica in un paziente di poliposi adenomatosa familiare sporadica utilizzando il formato di chip-in-a-tubo

Digital Polymerase Chain Reaction Assay for the Genetic Variation in a Sporadic Familial Adenomatous Polyposis Patient Using the Chip-in-a-tube Format

L'analisi quantitativa della variabilità genetica umana è fondamentale per la comprensione delle caratteristiche molecolari di patologie gravi, come i tumori. Perché le reazioni a catena digitale della polimerasi (PCR) permettono la quantificazione precisa delle varianti numeri di copia del DNA, stanno diventando uno strumento essenziale per la rilevazione di variazioni genetiche rare, quali mutazioni farmaco-resistenti. Si prevede che le diagnosi molecolare mediante PCR digitale (dPCR) saranno disponibili nella pratica clinica nel prossimo futuro; così, come condurre in modo efficiente dPCR con materiale genetico umano è un tema caldo. Qui, presentiamo un metodo per rilevare il mosaicism somatico utilizzando dPCR con il formato di chip-in-a-tubo, che permette le reazioni essere condotte contemporaneamente otto-dPCR poliposi del colon (APC). Deve prestare attenzione quando il riempimento e la chiusura la miscela di reazione sui chip. Questo articolo viene illustrato come evitare la sovra - e sottovalutazione delle partizioni positive. Inoltre, vi presentiamo una semplice procedura per la raccolta del prodotto dPCR da partizioni sui chip, che quindi può essere utilizzato per confermare l'amplificazione specifica. Ci auguriamo che questa relazione metodi contribuirà a promuovere il dPCR con il metodo del chip-in-a-tubo nella ricerca genetica.

Abbiamo esaminato il mosaicism somatico del gene APC in un paziente con sporadici poliposi adenomatosa familiare secondo le modalità sopra descritte. In uno studio precedente, l'APC c.834 + 2T &gt; C mutazione è stata trovata nel paziente, ma non nei loro genitori, utilizzando Sanger sequenziamento e NGS9. I disegni del primer e sonde utilizzate nei risultati rappresentativi sono mostrati nella tabella 3. Il DNA genomico è stato estratto dal sangue del proband, i genitori e sei donatori sani. I valori DIN di nove campioni gDNA variati a 6.7 – 7,9 (Figura 2 e tabella 4). FAM e HEX sono stati utilizzati come i coloranti di fluorescenza per gli alleli C e T, rispettivamente. Le macchie di verde e gialle i posti di posizione rappresentano partizioni FAM-positivo e HEX-positivi, rispettivamente (Figura 3A). I punti blu rappresentano partizioni negative per FAM e HEX. Lo sfondo nero corrisponde a partizioni dove non è stato aggiunto alla miscela di reazione. Molte partizioni positive degli alleli C e T sono state rilevate nel proband, mentre alcune partizioni positive dell'allele C sono state rilevate in padre di proband o la NTC e nelle partizioni quest'ultime, positive della T allele non sono stati rilevati. La separazione del segnale tra gli alleli C e T era chiara sul scatterplot bidimensionale (2D), e i segnali più positivi del HEX e FAM erano esclusa l'altro (Figura 3B). Il VAF del proband pari al 13,2%, che è simile a quella determinata utilizzando NGS (12,7%) (Tabella 4). Il VAFs di proband genitori e donatori sani erano &lt; 0,1%. Il limite di rilevamento per l'APC c.834 + 2T &gt; mutazione di C è stato stimato a 0,3% utilizzando 3 volte la deviazione standard per le misurazioni ripetute con 10 – 11 ng del gDNA totale10.
La dimensione di amplicon nell'analisi della dPCR per APC c.834 + 2T &gt; C era stato previsto per essere 123 bp. Per confermare che il prodotto dPCR è stato amplificato come una singola banda, il prodotto dPCR è stato raccolto dal chip dosati. Usando l'elettroforesi, chiaramente è stata rilevata una singola banda, e il formato del prodotto era coerenza con la previsione (Figura 4).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58199/58199fig1.jpg"> Figura 1 : Punti di nota per il dosaggio di dPCR con chip-in-a-tubo formato. (A), questo pannello viene illustrato come impostare la striscia 8-tubo nell'autoloader. (B), questo pannello mostra chip rotto. (C), questo pannello Mostra come il chip superfici carico subito dopo (i) e (ii) tenuta. (iii) una pozza di liquido è visibile nel caso di una chiusura incompleta. (D), questo pannello mostra la trama di posizione nel caso di una contaminazione incrociata. (E), questo pannello mostra la trama di posizione nel caso di una distribuzione non uniforme. (F), questo pannello spettacoli come aria bolle sulla superficie del tubo immerso nell'acqua. (G), questo pannello mostra le bolle d'aria all'interno del tubo. Tutta la figura intera, bianche e nero frecce indicano pezzi rotti chip e aria bolle, rispettivamente. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58199/58199fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58199/58199fig2.jpg"> Figura 2 : Rappresentante elettroferogrammi di sangue gDNA. Elettroferogrammi di sangue gDNA con valori DIN di 6,7 e 7.9 sono mostrati nella superiore e inferiore del pannello, rispettivamente. L'asterisco indica un indicatore inferiore. DIN: Numero DNA integrità. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58199/58199fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58199/58199fig3.jpg"> Figura 3 : Risultati rappresentativi del mosaicism somatico APC utilizzando dPCR con il chip-in-a-tubo formato. (A) la posizione trame e scatterplot (B) il controllo del no-modello (NTC), il proband, e il padre sono mostrati qui. HEX e FAM corrispondono gli alleli di riferimento e variante, rispettivamente. Linee orizzontali e verticali indicano le soglie di intensità HEX e FAM, rispettivamente. Questa figura è stata modificata da Kahyo et al. 10. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58199/58199fig3large.jpg" target="_blank">per favore clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58199/58199fig4.jpg"> Figura 4 : Raccolta di prodotti dPCR dal chip dosati. I prodotti raccolti e concentrati dPCR sono stati sottoposti ad elettroforesi. Il formato di destinazione previsto era 123 bp. Questa figura è stata modificata da Kahyo et al. 10. NTC: no-modello di controllo. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58199/58199fig4large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<table fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td>Reagente</td>
			<td>Concentrazione della soluzione di riserva</td>
			<td>Volume (µ l)</td>
			<td>Concentrazione finale</td>
			<td>Consigliato concentrazione finale</td>
		</tr>
<tr>
<td>Privo di DNasi e RNasi acqua distillata</td>
			<td>-</td>
			<td>1.75</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>2 x PCR Master mix</td>
			<td>-</td>
			<td>7.5</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>Sonda LNA per allele principali</td>
			<td>2 ΜM</td>
			<td>0,5</td>
			<td>66,7 nM</td>
			<td>3.33 – 100 nM</td>
		</tr>
<tr>
<td>Sonda LNA per minori allele</td>
			<td>2 ΜM</td>
			<td>0,5</td>
			<td>66,7 nM</td>
			<td>3.33 – 100 nM</td>
		</tr>
<tr>
<td>Forward primer</td>
			<td>1 ΜM</td>
			<td>0,5</td>
			<td>33.3 nM</td>
			<td>3.33 – 50.0 nM</td>
		</tr>
<tr>
<td>Reverse primer</td>
			<td>1 ΜM</td>
			<td>0,5</td>
			<td>33.3 nM</td>
			<td>3.33 – 50.0 nM</td>
		</tr>
<tr>
<td>dPCR soluzione 20x</td>
			<td>-</td>
			<td>0,75</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>gDNA</td>
			<td>3,33 ng/μL</td>
			<td>3</td>
			<td>666 pg/μL</td>
			<td>20 pg/μL – 2.000 pg/μL1
</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 1: i reagenti utilizzati per il dosaggio di dPCR. 1 A seconda della sensibilità e precisione previsto.
<table fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td>Passo</td>
			<td>Temperatura</td>
			<td>Tempo</td>
			<td>Cicli</td>
		</tr>
<tr>
<td>Denaturazione iniziale</td>
			<td>95 ° C</td>
			<td>5 m</td>
			<td>1</td>
		</tr>
<tr>
<td>Denaturare Ricottura ed estensione</td>
			<td>95 ° C 58 ° C</td>
			<td>50 s 90 s</td>
			<td>42</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estensione finale</td>
			<td>70 ° C</td>
			<td>5 m</td>
			<td>1</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 2: Condizioni di termociclatore.
<table fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td>Nome</td>
			<td>Sequenza1</td>
			<td>Tm valore2</td>
		</tr>
<tr>
<td>Forward primer</td>
			<td>5'-GGTCAAGGAGTGGGAGAAATC-3 '</td>
			<td>60,8 ° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>Reverse primer</td>
			<td>5'-TCTTAGAACCATCTTGCTTCATACT-3 '</td>
			<td>59,8 ° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>Sonda LNA per l'allele T</td>
			<td>5'-HEX-ATTT [A] CCTGACCA-IBFQ-3'</td>
			<td>Abbinati: 62,6 ° C Non corrispondenti: 45,3 ° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>Sonda LNA per l'allele C</td>
			<td>5'-FAM-TTT [G] CCTGACC-IBFQ-3'</td>
			<td>Abbinati: 61,7 ° C Non corrispondenti: 50,5 ° C</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 3: progettazione del primer e sonde. 1 Le lettere sottolineate e racchiuso tra parentesi quadre sono il LNA e variante di destinazione, rispettivamente. 2 Calcolato secondo la fase 2 del protocollo.
<table fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>NGS3</td>
			<td colspan="4">dPCR4</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Esempio1</td>
			<td rowspan="2">Tessuto</td>
			<td rowspan="2">Ingresso del DNA (ng)</td>
			<td rowspan="2">DIN2</td>
			<td rowspan="2">VAF (%)</td>
			<td rowspan="2">Variante (copie)</td>
			<td rowspan="2">Riferimento (copie)</td>
			<td colspan="2">VAF (%)</td>
		</tr>
<tr>
<td>Significa</td>
			<td>RSD</td>
		</tr>
<tr>
<td>NTC</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>1.23</td>
			<td>0</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
		</tr>
<tr>
<td>Proband</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>11.3</td>
			<td>7.6</td>
			<td>12,7</td>
			<td>379</td>
			<td>2,48 x 103
</td>
			<td>13.2</td>
			<td>0.0353</td>
		</tr>
<tr>
<td>Padre</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>10.3</td>
			<td>7.7</td>
			<td>0.0167</td>
			<td>1.08</td>
			<td>3.42 x 103
</td>
			<td>0.0341</td>
			<td>0,439</td>
		</tr>
<tr>
<td>Madre</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>10,8</td>
			<td>7.6</td>
			<td>0.0136</td>
			<td>0.956</td>
			<td>3.04 x 103
</td>
			<td>0.0313</td>
			<td>0.637</td>
		</tr>
<tr>
<td>Donatore-1</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>11,7</td>
			<td>7.3</td>
			<td>-</td>
			<td>1.64</td>
			<td>3.01 x 103
</td>
			<td>0,0543</td>
			<td>0.414</td>
		</tr>
<tr>
<td>Donatore-2</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>10.5</td>
			<td>7.6</td>
			<td>-</td>
			<td>1.06</td>
			<td>2.90 x 103
</td>
			<td>0.0406</td>
			<td>0,539</td>
		</tr>
<tr>
<td>Donatore-3</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>17,6</td>
			<td>7.9</td>
			<td>-</td>
			<td>4,24</td>
			<td>5,65 x 103
</td>
			<td>0.0713</td>
			<td>0.783</td>
		</tr>
<tr>
<td>Donatore-4</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>12.3</td>
			<td>7.6</td>
			<td>-</td>
			<td>2,38</td>
			<td>4,16 x 103
</td>
			<td>0,0666</td>
			<td>0,557</td>
		</tr>
<tr>
<td>Donatore-5</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>19,2</td>
			<td>7</td>
			<td>-</td>
			<td>1,48</td>
			<td>6,79 x 103
</td>
			<td>0.0213</td>
			<td>0,571</td>
		</tr>
<tr>
<td>Donatore-6</td>
			<td>Sangue</td>
			<td>14,4</td>
			<td>6.7</td>
			<td>-</td>
			<td>3.44</td>
			<td>4,67 x 103
</td>
			<td>0.0728</td>
			<td>0,729</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 4: risultati del dPCR dosaggio per APC mosaicism somatico. 1 NTC: no-modello di controllo; Donatore: donatore sano. 2 DIN: Numero DNA integrità. 3 Iwaizumi et al. 9, hum genoma var. 2 15057 (2015). 4 Gli esperimenti sono stati eseguiti in triplice copia e in modo indipendente ripetuto x 3; i dati sono espressi come valore medio; RSD: deviazione standard relativa; N/a: non applicabile. La tabella è stata modificata da Kahyo et al. 10.

Digitale per la catena della polimerasi (PCR) è uno strumento utile per la rilevazione di alto-sensibilità di singolo nucleotide varianti e varianti numeri di copia del DNA. Qui, dimostriamo considerazioni chiave per varianti rare nel genoma umano usando la PCR digitale con il formato di chip-in-a-tubo di misurazione.

Reazione a catena della polimerasi digitale per la variazione genetica in un paziente di poliposi adenomatosa familiare sporadica utilizzando il formato di Chip-in-a-tubo

The quantitative analysis of human genetic variation is crucial for understanding the molecular characteristics of serious medical conditions, such as ...

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo dei test genetici, come il rilevamento del mosaicismo e i test genetici basati sulla biopsia liquida. Il vantaggio principale di questa tecnica è il rilevamento ad alto rendimento della frazione allelica a bassa variante. Le implicazioni di questa tecnica si estendono alla diagnosi dei tumori, perché rilevare mutazioni oncogene con un'elevata sensibilità può contribuire alla medicina di precisione.Inizia questo esperimento aggiungendo 10 L di tampone campione di DNA alle provette di una striscia da 8 provette. Quindi aggiungere 1 microlitro di scala di DNA alla prima provetta della striscia di 8 provette e un microlitro di campione di DNA genomico a ciascuna delle provette rimanenti. Utilizzare l'attacco della micropiastra per miscelare il contenuto della striscia da 8 provette agitando per un minuto.Posizionare la striscia, i puntali delle pipette e un dispositivo in gel in uno strumento per elettroforesi. Premere il pulsante di avvio per avviare la corsa. Al termine dell'esecuzione, controllare l'elettroferogramma sul display per verificare che il marcatore inferiore contenuto nel tampone del campione di DNA sia assegnato correttamente sull'elettroferogramma.In caso contrario, assegnare manualmente il marcatore nella modalità elettroferogramma del software. Quindi, nella modalità regione del software, specificare la regione dimensionale del DNA genomico per calcolare automaticamente la concentrazione di DNA. Aggiungete primer, sonde e DNA genomico progettati in precedenza a una nuova striscia di 8 provette per ottenere un volume totale di 15 L.Pipette su e giù per miscelare.Aggiungere la piattaforma di carico sui trucioli incorporati nella nuova striscia a 8 tubi, quindi posizionare la striscia di tubi nel caricatore automatico. Assicurarsi che ci sia un contatto tra i trucioli e la piattaforma di carico. Quindi, posiziona un cursore di caricamento nella piattaforma e usa un tappo per tenere il cursore fuori dal caricatore.Pipettare 15 L della miscela PCR vicino alla punta del cursore, quindi premere il pulsante del caricatore per far funzionare il caricatore per un minuto. Rimuovere la striscia di tubo dal caricatore dopo la corsa e posizionarla nel potenziatore di tenuta. Spingere con cautela il coperchio scorrevole e il bordo del coperchio superiore.Far funzionare il potenziatore di tenuta per circa due minuti. Se la sigillatura è incompleta, indicata da una pozza di liquido, ripetere la corsa per un altro minuto. Aggiungere 230 L di liquido sigillante ai tubi.Posizionare la striscia di provette nel termociclatore ed eseguire la PCR come descritto nel protocollo. Se c'è una distribuzione non uniforme delle partizioni positive, regolare la temperatura o la durata della PCR. Per rilevare e analizzare l'intensità della fluorescenza dei prodotti PCR, posizionare la striscia della provetta sulla maschera di rilevamento e aggiungere 6 ml di acqua distillata.Rimuovere eventuali bolle d'aria visibili utilizzando un puntale per pipetta. Caricare la maschera nel rilevatore. Nel software di rilevamento, selezionare Fluorescenza, Esperimento, quindi Campiona schede NTC, quindi fare clic sul pulsante ESEGUI per avviare l'esecuzione.Al termine dell'esecuzione, confermare il grafico di posizione, l'istogramma e il grafico a dispersione 2D. Per raccogliere il prodotto PCR, rimuovere il liquido sigillante dalla provetta. Aggiungere 100 L di tampone TE e agitare energicamente per 30 secondi.Centrifugare brevemente le provette in una centrifuga da tavolo e procedere come descritto nel protocollo di testo per completare la raccolta del prodotto PCR. I grafici di posizione creati dalla PCR digitale mostrano una fluorescenza HEX gialla sia nei campioni dei pazienti che in quelli del padre, indicando la presenza della variante T dell'allele APC, ma non nel controllo senza modello. Solo il DNA genomico dei pazienti contiene la variante C, come dimostrato da una fluorescenza verde di FAM.Come confermato ulteriormente dai grafici a dispersione, sia il paziente che il padre sono positivi per HEX, o variante T, mentre solo il paziente mostra la presenza della variante C. La frazione allelica variante del paziente, o VAF, calcolata dal DPCR, era del 13,2%, simile al 12,7% raggiunto dal sequenziamento di nuova generazione. D'altra parte, i VAF dei genitori dei pazienti e dei donatori sani erano inferiori allo 0,1%L'elettroferesi dei prodotti DPCR raccolti e concentrati conferma che la dimensione del frammento previsto è di 123 coppie di basi nel DNA dei pazienti e dei genitori. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordarsi di mantenere pulito il banco, ad esempio, utilizzando un gruppo filtro ventola.

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Un robusto teste basato sulla reazione alla catena di polimerasi per quantificare le ripetizioni di Trinucleotide della Citosina-guanina-guanina nel gene del retardation mentale Fragile X

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Reazione a catena della polimerasi digitale per la variazione genetica in un paziente di poliposi adenomatosa familiare sporadica utilizzando il formato di Chip-in-a-tubo (Video) | JoVE Journal

Reazione a catena della polimerasi digitale per la variazione genetica in un paziente di poliposi adenomatosa familiare sporadica utilizzando il formato di Chip-in-a-tubo

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