Completa e parziale occlusione aortica per il trattamento dello Shock emorragico nei suini

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della cura dei traumi, comprese le strategie per trattare l'emorragia tortuale non comprimibile. Il vantaggio principale di questa tecnica è che può aiutare a testare strategie di rianimazione endovascolare rilevanti in un modello animale di grandi dimensioni clinicamente realistico con una fisiologia che imita quella degli esseri umani. Le implicazioni di questa tecnica si estendono al trattamento dello shock emorragico, che è una delle principali cause di morte prevenibile per trauma.

In generale, le persone che non conoscono questo metodo avranno difficoltà, perché richiede esperienza chirurgica e conoscenza della fisiologia della terapia intensiva. Dopo aver confermato un livello appropriato di sedazione utilizzando un pizzico per gli arti posteriori, utilizzare un laringoscopio convenzionale dotato di una lama Miller illuminata da 12 pollici per far passare la punta della lama attraverso l'orofaringe del maiale anestetizzato. Facendo attenzione a non danneggiare la mucosa orale o i denti, far avanzare lentamente la punta della lama verso l'epiglottide, sollevando l'epiglottide con la lama e proseguendo oltre l'ingresso laringeo fino ad ottenere una visione chiara della laringe.

Posizionare un tubo endotracheale francese 6,5 o 7 con uno stiletto tra le corde vocali, nella trachea e gonfiare la cuffia del palloncino con 10-15 centimetri cubi di aria per evitare perdite intorno alla cuffia o l'aspirazione del contenuto gastrico. Quindi, collegare il tubo endotracheale al ventilatore meccanico attraverso un filtro respiratorio e fissare il tubo attorno alla mascella con del nastro di cotone. Per l'incannulamento dell'arteria femorale e delle vene, strofinare i siti operatori con un volume abbondante di iodio povidone per cinque minuti e posizionare gli asciugamani chirurgici sterili intorno ai siti operatori per preservare la sterilità dei campi chirurgici.

Utilizzando un bisturi dotato di lama chirurgica sterile numero 10, identificare la piega inguinale ed eseguire un'incisione verticale di otto centimetri nell'inguine destro, quattro centimetri sopra e quattro centimetri sotto la piega inguinale destra. Sezionare il tessuto sottocutaneo e posizionare due divaricatori Weitlaner nell'incisione. Utilizzando una pinza ad angolo retto Mixter e un elettrocauterizzazione, sezionare i tessuti connettivi e il muscolo fino a quando il fascio neurovascolare non è chiaramente esposto e sezionare con cautela l'arteria, facendo attenzione a preservare il nervo laterale.

Utilizzare un ago introduttore angolato calibro 20 per perforare l'arteria e far avanzare un filo guida a punta tonda da 0,35 pollici attraverso il lume dell'ago angolato. Quando il filo guida è in posizione, estrarre l'ago sul filo guida, esercitando una leggera pressione sull'arteriotomia per evitare il sanguinamento, e inserire una guaina di inserimento da 14 French sul filo guida. Quindi, incannulare l'arteria femorale sinistra e la vena come appena dimostrato.

Per l'incannulamento dell'arteria carotide e della vena giugulare esterna, utilizzare un bisturi a lama numero 10 per praticare un'incisione verticale di sei centimetri a circa due centimetri lateralmente alla linea mediana sul lato sinistro del collo. Utilizzare l'elettrocauterizzazione per sezionare il tessuto sottocutaneo fino a quando il muscolo sternocleidomastoideo non è esposto e sezionare lungo il bordo laterale del muscolo per esporre la vena giugulare esterna sinistra. Quindi, incannulare il vaso con un catetere da 8 French come appena dimostrato.

Per l'esposizione dell'arteria carotide comune sinistra, sezionare il bordo mediale del muscolo sternocleidomastoideo, fino a quando non si osserva il triangolo carotideo, che contiene l'arteria carotide, il nervo vago e la vena giugulare interna. Incannulare l'arteria carotide come precedentemente dimostrato, con un catetere a 5 francesi. Per la dissezione controlaterale, isolare la vena giugulare esterna destra e l'arteria carotide comune destra, come dimostrato per le loro controparti laterali.

Quindi, utilizzare una guaina introduttrice a 9 French per incannulare la vena giugulare esterna destra e posizionare una sonda di flusso dell'arteria carotide da quattro millimetri attorno all'arteria carotide comune destra. Quindi, inserire il catetere dell'arteria polmonare attraverso la guaina di inserimento a 9 French da 15 a 18 centimetri nella vena giugulare esterna destra. Una volta posizionato il catetere, gonfiare il palloncino con non più di 1,5 centimetri cubi d'aria.

Far avanzare il catetere e osservare il monitor per valutare il passaggio della pressione dall'atrio destro al ventricolo destro, all'arteria polmonare, alla pressione di incuneamento dell'arteria polmonare. Quindi, sgonfiare il palloncino e verificare che una traccia dell'arteria polmonare ritorni al monitor. Per il posizionamento del tubo per cistostomia, utilizzare un bisturi a lama numero 10 per praticare un'incisione addominale inferiore di cinque centimetri sulla linea mediana e realizzare extracorporeamente la vescica urinaria.

Utilizzando l'elettrocauterizzazione, praticare una piccola apertura nella vescica e aspirare l'urina, quindi utilizzare una sutura in polipropilene 4-0 per eseguire una chiusura temporanea del cordino della borsa. Posizionare un catetere di Foley francese da 18 all'interno del lume della vescica e utilizzare una siringa da 10 centimetri cubi per gonfiare il palloncino. Quindi, legare la sutura per fissare il catetere all'interno del lume della vescica.

Per l'inserimento del catetere a palloncino aortico, inserire un filo guida rigido Amplatz da 0,035 pollici e 260 centimetri attraverso la guaina di inserimento a 14 francesi. Confermare la sua posizione nell'aorta sopraceliaca utilizzando l'ecografia. Quindi, inserire il catetere per occlusione a palloncino sopra il filo guida, nell'aorta sopraceliaca.

Dopo aver calcolato il volume totale del sangue, utilizzare una pompa automatica per emorragizzare il 35% del volume totale del sangue in 20 minuti, in sacche standard per la raccolta del sangue per la conservazione a quattro gradi Celsius. Quando tutto il sangue è stato conservato, gonfiare il catetere per occlusione del palloncino aortico con 9-12 centimetri cubi di aria, o fino a quando non si nota un'ulteriore diminuzione della pressione arteriosa media distale a seguito di un ulteriore gonfiaggio del palloncino. Dopo 40 minuti di occlusione, utilizzare la pompa automatica per rianimare l'animale, con sangue intero pari in volume al 20% del volume totale di sangue attraverso il catetere della vena femorale sinistra nell'arco di 20 minuti.

Quindi, sgonfiare il palloncino in modo incrementale nell'arco di cinque minuti. Durante la fase di gonfiaggio con palloncino, gli animali nel gruppo con occlusione completa sperimentano una pressione arteriosa media prossimale più elevata, rispetto agli animali nel gruppo con occlusione parziale, mentre la pressione arteriosa media distale durante il gonfiaggio con palloncino è più alta nel gruppo con occlusione parziale rispetto al gruppo con occlusione completa, riflettendo il flusso aortico distale parziale. Dopo la rianimazione, la pressione arteriosa media prossimale e distale aumenta in entrambi i gruppi e ritorna al basale dopo lo sgonfiaggio del palloncino per il resto della fase di terapia intensiva.

Tutti gli animali sperimentano tachicardia riflessa subito dopo l'emorragia che subisce un aumento incrementale durante la fase di gonfiaggio del palloncino in entrambi i gruppi. Dopo l'emorragia, la pressione venosa centrale diminuisce in entrambi i gruppi, subendo un aumento in seguito allo sgonfiaggio del palloncino e tornando al basale dopo la rianimazione. Allo stesso modo, la gittata cardiaca diminuisce dopo l'emorragia, aumenta durante il gonfiaggio del palloncino e ritorna al basale dopo lo sgonfiaggio del palloncino in rianimazione in entrambi i gruppi.

Il flusso carotideo diminuisce in entrambi i gruppi immediatamente dopo l'emorragia, con il gruppo di occlusione completa che dimostra una velocità di flusso carotideo più elevata rispetto al gruppo di occlusione parziale. Dopo la rianimazione e lo sgonfiaggio del palloncino, la velocità del flusso carotideo si riprende verso il basale in entrambi i gruppi, ma a un livello inferiore nel gruppo di occlusione completa. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una comprensione molto migliore di come utilizzare modelli animali di grandi dimensioni per testare l'occlusione aortica utilizzando strategie endovascolari.

Inoltre, proprio come qualsiasi altra operazione chirurgica, è necessario fare attenzione nel maneggiare gli strumenti per poterlo fare in sicurezza.