Name: Un metodo di inoculazione efficace per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-09-16T12:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 58 s
Description: Scopri un metodo di inoculazione efficace per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero. Questa tecnica migliora l'affidabilità rispetto ai metodi tradizionali e fornisce un riferimento per l'inoculazione di piante legnose rampicanti.

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Questo lavoro è stato sostenuto finanziariamente dal National Key R&D Program of China (2020YFD1001200), dal China Agriculture Research System (CARS-11), dal fondo di ricerca specifico di The Innovation Platform for Academicians of Hainan Province (YSPTZX202154), dalla Natural Science Foundation of Hainan Province of China (321RC652) e dalla Natural Science Foundation of China (No. 31601626).

1. Preparazione di piante da taglio del pepe nero per l'infezione
<ol><li>Prendi un taglio a cinque nodi, lungo circa 40 cm con un diametro di 0,5 cm, da un ramo ortotropico sano e vigorosamente crescente di pepe nero usando un coltello da potatura disinfettato o secateurs. Potare i tre nodi inferiori dei rami plagiotropici, con i due nodi superiori rimasti con circa 10 foglie intatte.</li>
	<li>Preparare il substrato di radicazione contenente terreno e letame animale (sterco di mucca o sterco di pecora) con un rapporto di 1:1. Autoclave del substrato di radicazione a 121 °C per 20 min.</li>
	<li>Inserire le talee nel substrato di radicazione con un angolo di circa 50°, con il terzo nodo che tocca solo la superficie del substrato e la gemma ascellare su questo nodo sopra il substrato. NOTA: La borsa qui utilizzata ha le seguenti dimensioni: altezza di 40-60 cm, diametro di 25-30 cm.</li>
	<li>Versare 10-20 L di acqua sulle radici della pianta. Posizionare le talee in una serra con ombra al 90% a una temperatura di 25-30 ° C per il radicamento e la crescita.</li>
</ol>2. Propagazione di Phytophthora capsici (P. capsici)
NOTA: Una scorta di coltura di Phytophthora capsici è mantenuta nel laboratorio di protezione delle piante del Spice and Beverage Research Institute, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences7.
<ol><li>Spennellare e pulire i tuberi di patata sotto l'acqua corrente del rubinetto e quindi tagliare 200 g di patate a cubetti di 1 cm3. Mettere alcuni dei cubetti in un becher contenente 800 ml di acqua a doppio distillato (ddH2O) e far bollire per 20 minuti.</li>
	<li>Filtrare il brodo attraverso una doppia garza utilizzando la filtrazione a gravità. Preparare l'agar destrosio di patate (PDA) aggiungendo 20 g di destrosio e 15 g di agar al filtrato e completando il volume fino a 1 L con ddH2O. Autoclave la miscela a 121 °C per 20 min8.</li>
	<li>Versare 20 ml di PDA sterilizzato in forma liquida in una capsula di Petri rotonda di 9 cm di diametro all'interno di una cappa laminare a flusso d'aria. Lasciare le piastre PDA con i coperchi aperti all'interno della cappa a flusso d'aria laminare durante la notte come mezzo per prevenire la condensa.</li>
	<li>Utilizzare un ciclo di inoculazione per raccogliere i miceli dal brodo di Phytophthora capsici all'interno di una provetta. Posizionare l'inoculo con il lato miceliale a contatto con il PDA in una capsula di Petri.</li>
</ol>3. Infezione del pepe nero
<ol><li>Incubazione<ol>
<li>Identificare un'area a 5 cm sopra la superficie del substrato e vicino alle radici sul gambo per l'inoculazione.</li>
		<li>Estrarre un disco di micelio di 0,5 cm di diametro sul bordo crescente della coltura di Phytophthora capsici su PDA in una capsula di Petri utilizzando una piralide di stopper.</li>
		<li>Danneggiare lo stelo con un ago per siringa e praticare tre fori in un modello triangolare nell'area di inoculazione selezionata. Coprire ogni foro con un disco miceliale. Posizionare i fori l'uno vicino all'altro per garantire che l'area ferita sia completamente coperta con i dischi miceliali.</li>
		<li>Coprire i dischi miceliali con tamponi di cotone inumiditi sterilizzati come mezzo per prevenire l'essiccazione. Legare il tampone sullo stelo con una striscia di polietilene per mantenere la posizione dei dischi inoculanti. NOTA: A 8 ore dall'inoculazione, i fori inoculati sono diventati neri e la lesione si è estesa con il passare del tempo. Le foglie sono diventate gialle e sono cadute, e la pianta inoculata è morta 7-10 giorni dopo l'inoculazione. Nessuna lesione sviluppata negli impianti di controllo. La maggior parte dei geni si è espressa in modo diverso dopo l'inoculazione con Phytophthora capsici rispetto al gruppo di controllo. L'analisi istopatologica dei tessuti infetti ha dimostrato che Phytophthora capsici ha colonizzato nello xilema.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Campionare i materiali vegetali di interesse e conservarli a -80 °C in azoto liquido per l'uso in studi successivi. NOTA: azoto liquido, sacchetti di plastica, pennarelli, cesoie e altri materiali sono stati preparati prima degli esperimenti.</li>
	<li>Dopo che i materiali vegetali specifici sono stati campionati per l'uso, autoclave tutti i materiali vegetali rimanenti, la coltura e il terreno di coltura di Phytophthora capsici rimanenti e tutti gli strumenti e gli articoli da laboratorio utilizzati in questo lavoro di inoculazione.</li>
</ol>

<ol><li>Gordo, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+sequencing+of+black+pepper+root+transcriptome%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">High-throughput sequencing of black pepper root transcriptome.</a> BMC Plant Biology. 12 (1), (2012).</li>
<li>Leonian, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+and+fruit+blight+of+Peppers+caused+by+Phytophthora+capsici+sp.+Nov%5BTitle%5D)+AND+%22Phytopathology%22%5BJournal%5D)">Stem and fruit blight of Peppers caused by Phytophthora capsici sp. Nov.</a> Phytopathology. 12 (9), 401-408 (1922).</li>
<li>Ding, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Priming+maize+resistance+by+its+neighbors%3A+Activating+1%2C4-benzoxazine-3-ones+synthesis+and+defense+gene+expression+to+alleviate+leaf+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Priming maize resistance by its neighbors: Activating 1,4-benzoxazine-3-ones synthesis and defense gene expression to alleviate leaf disease.</a> Frontiers in Plant Science. 6, 830(2015).</li>
<li>Fonseca, C. E. L., Vianda, D. R., Hansen, J. L., Pell, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Associations+among+forage+quality+traits%2C+vigor%2C+and+disease+resistance+in+alfalfa%5BTitle%5D)+AND+%22Crop+Science%22%5BJournal%5D)">Associations among forage quality traits, vigor, and disease resistance in alfalfa.</a> Crop Science. 39 (5), 1271-1276 (1999).</li>
<li>Altier, N. A., Thies, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+resistance+to+Pythium+seedling+disease+in+Alfalfa+using+a+culture+plate+method%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Disease%22%5BJournal%5D)">Identification of resistance to Pythium seedling disease in Alfalfa using a culture plate method.</a> Plant Disease. 79 (4), 341-345 (1995).</li>
<li>Pratt, R. G., Rowe, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+simplified+leaf+inoculation+procedures+for+identification+of+quantitative+resistance+to+Sclerotinia+trifoliorum+in+Alfalfa+seedling%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Disease%22%5BJournal%5D)">Evaluation of simplified leaf inoculation procedures for identification of quantitative resistance to Sclerotinia trifoliorum in Alfalfa seedling.</a> Plant Disease. 82 (10), 1161-1164 (1998).</li>
<li>Hao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((De+novo+transcriptome+sequencing+of+black+pepper+%28Piper+nigrum+L.%29+and+an+analysis+of+genes+involved+in+phenylpropanoid+metabolism+in+response+to+Phytophthora+capsici%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genomics%22%5BJournal%5D)">De novo transcriptome sequencing of black pepper (Piper nigrum L.) and an analysis of genes involved in phenylpropanoid metabolism in response to Phytophthora capsici.</a> BMC Genomics. 17 (1), 1-14 (2016).</li>
<li>Dong, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Field+inoculation+and+classification+of+maize+ear+rot+caused+by+Fusarium+verticillioides%5BTitle%5D)+AND+%22Bio-protocol%22%5BJournal%5D)">Field inoculation and classification of maize ear rot caused by Fusarium verticillioides.</a> Bio-protocol. 8 (23), 3099(2018).</li>
<li>English, J. T., Laday, M., Bakonyi, J., Schoelz, J. E., Érsek, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+and+molecular+characterization+of+species+hybrids+derived+from+induced+fusion+of+zoospores+of+Phytophthora+capsica+and+Phytophthora+nicotianae%5BTitle%5D)+AND+%22Mycological+Research%22%5BJournal%5D)">Phenotypic and molecular characterization of species hybrids derived from induced fusion of zoospores of Phytophthora capsica and Phytophthora nicotianae.</a> Mycological Research. 103 (8), 1003-1008 (1999).</li>
<li>Chatterjee, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antioxidant+activity+of+some+phenolic+constituents+from+green+pepper+%28Piper+nigrum+L.%29+and+fresh+nutmeg+mace+%28Myristica+fragrans%29%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Antioxidant activity of some phenolic constituents from green pepper (Piper nigrum L.) and fresh nutmeg mace (Myristica fragrans).</a> Food Chemistry. 101 (2), 515-523 (2007).</li>
<li>Pfender, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+sporangia+and+release+of+zoospores+by+Phytophthora+megasperma+in+soil%5BTitle%5D)+AND+%22Phytopathology%22%5BJournal%5D)">Production of sporangia and release of zoospores by Phytophthora megasperma in soil.</a> Phytopathology. 67 (5), 657-663 (1977).</li>
<li>Nagila, A., Schutte, B. J., Sanogo, S., Idowu, O. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chile+pepper+sensitivity+to+mustard+seed+meal+applied+after+crop+emergence%5BTitle%5D)+AND+%22HortScience%22%5BJournal%5D)">Chile pepper sensitivity to mustard seed meal applied after crop emergence.</a> HortScience. 56 (2), 1-7 (2021).</li>
<li>Lamour, K. H., Stam, R., Jupe, J., Huitema, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+oomycete+broad-host-range+pathogen+Phytophthora+capsica%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Plant+Pathology%22%5BJournal%5D)">The oomycete broad-host-range pathogen Phytophthora capsica.</a> Molecular Plant Pathology. 13 (4), 329-337 (2012).</li>
<li>Hardham, A., Gubler, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polarity+of+attachment+of+zoospores+of+a+root+pathogen+and+pre-alignment+of+the+emerging+germ+tube%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biology+International+Reports%22%5BJournal%5D)">Polarity of attachment of zoospores of a root pathogen and pre-alignment of the emerging germ tube.</a> Cell Biology International Reports. 14 (11), 947-956 (1990).</li>
</ol>

In questo studio, la testa basale è stata punzonata per danneggiare e fornire un efficace sistema di inoculazione nella pianta del pepe nero. I pellet miceliali hanno quindi coperto i tre fori per trattenere l'umidità e consentire all'agente patogeno di infettare bene la pianta. Dopo l'inoculazione, le foglie sono diventate gialle e sono cadute e le piante inoculate sono morte. Nessuna lesione sviluppata negli impianti di controllo. La maggior parte dei geni si è espressa in modo diverso dopo l'inoculazione con Phyto...

Il pepe nero (Piper nigrum L.) è un rampicante legnoso e una delle più importanti colture di spezie. È conosciuto come il "Re delle spezie"1 ed è coltivato in oltre 40 paesi e regioni in Asia, Africa e America Latina. Il marciume radicale di Phytophthora è la malattia più devastante del pepe nero ed è causata dall'oomicete Phytophthora capsici. Questo agente patogeno infetta anche cucurbitacee, melanzane, peperoncini e pomodori 2,3. Con il pepe nero, un intero raccolto a volte può essere decimato da questa malattia. L'espansione delle aree di piantagione di pepe è limitata a causa dell'indisponibilità di varietà resistenti, che ha ostacolato in modo significativo lo sviluppo dell'industria cinese del pepe nero. Un'inoculazione efficace e un preciso sistema di campionamento per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero sono essenziali per studiare questa interazione pianta-patogeno.
L'identificazione e lo screening della resistenza nelle risorse del germoplasma è il requisito fondamentale per la ricerca della patogenicità dell'agente patogeno e l'allevamento e l'utilizzo di varietà resistenti. Un approccio ampiamente utilizzato consiste nell'utilizzare una varietà di metodi di identificazione basati su specie vegetali e gruppi patogeni. Gli attuali metodi di identificazione includono l'identificazione della popolazione, l'identificazione individuale, l'identificazione degli organi, l'identificazione dei tessuti, l'identificazione cellulare, l'identificazione biochimica e l'identificazione molecolare, che sono stati sviluppati negli ultimi anni 4,5. C'è stato successo in questi settori, ma ci sono anche molti problemi. Indipendentemente dal metodo scelto, i requisiti di base per l'identificazione della resistenza delle piante sono coerenti, inclusi obiettivi chiari, risultati affidabili e metodi semplici, rapidi e facili da standardizzare. Questo principio deve essere seguito anche nell'identificazione della resistenza al pepe nero.
In condizioni di campo naturale, l'identificazione della resistenza alle malattie può essere influenzata da molti fattori ambientali. Pertanto, è stato proposto di utilizzare in laboratorio foglie staccate e radici irrigate per identificare la resistenza alle malattie. Le foglie giovani di piante sane sono state inoculate in vitro in laboratorio e l'area delle foglie malate è stata misurata inoculando l'agente patogeno al fine di identificare la resistenza alle malattie delle piante6. Tuttavia, l'inoculazione fogliare in vitro può essere utilizzata solo per l'identificazione generale della resistenza e non per studi di interazione molecolare. Nonostante ciò, lo stato di resistenza alle malattie si presenta spesso nell'inoculazione della radice irrigata, causando incertezza nello studio di follow-up dell'allevamento molecolare per la resistenza alle malattie. Pertanto, i metodi di rilevamento interni rapidi e semplici sono essenziali. Questo studio mira a fornire un metodo per l'identificazione della resistenza in laboratorio.

<table><tbody><tr><td>Agar in polvere</td><td>Solarbio</td><td>A8190</td><td></td></tr><tr><td>Banco pulito</td><td>Haier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Destrosio</td><td>Xilong Scientific</td><td>15700501</td><td></td></tr><tr><td>Forno di sterilizzazione ad alta temperatura</td><td>Zaelway</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Petri piastre per piastre</td><td>Biosharp</td><td>BS-90-D</td><td></td></tr></tbody></table>

un metodo di inoculazione efficace per phytophthora capsici sulle piante di pepe nero

An Effective Inoculation Method for Phytophthora capsici on Black Pepper Plants

Piper nigrum L. (pepe nero) è una tipica vite legnosa che è una coltura di spezie economicamente importante in tutto il mondo. La produzione di pepe nero è significativamente influenzata dalla malattia del marciume radicale causata da Phytophthora capsici, che ha seriamente influenzato lo sviluppo del settore come problema del "punto di strozzatura". Tuttavia, il meccanismo genetico molecolare di resistenza nel pepe nero non è chiaro, portando a lenti progressi nello sviluppo di nuove varietà di pepe nero. Un'inoculazione efficace e un preciso sistema di campionamento per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero è essenziale per studiare questa interazione pianta-patogeno. Lo scopo principale di questo studio è quello di dimostrare una metodologia dettagliata in cui la testa basale di pepe nero viene inoculata con Phytophthora capsici, fornendo anche un riferimento per l'inoculazione di piante legnose di vite. La testa basale della pianta di pepe nero è stata punzonata per danneggiarla e i pellet miceliali coprivano i tre fori per trattenere l'umidità in modo che l'agente patogeno potesse infettare bene la pianta. Questo metodo fornisce un modo migliore per risolvere l'instabilità causata dai metodi di inoculazione tradizionali, tra cui l'inzuppamento del terreno o l'immersione delle radici. Fornisce anche un mezzo promettente per studiare la modalità d'azione tra le piante e altri patogeni vegetali trasmessi dal suolo nell'allevamento di precisione agricolo.

La Figura 1 mostra i sintomi delle foglie di pepe nero dopo l'inoculazione di P. capsici . La Figura 2 mostra i sintomi degli steli di pepe nero dopo l'inoculazione di P. capsici . L'agente patogeno ha infettato il pepe nero sul gambo basale; sintomi tra cui ingiallimento delle foglie, avvizzimento che appare, imbrunimento dello xilema e oscuramento dei vasi che appaiono gradualmente. La Figura 3 mostra la maggior ...

Pungere la testa basale della pianta di pepe nero è un metodo breve e che fa risparmiare tempo per danneggiarla. Qui, abbiamo fornito passaggi dettagliati con un video per infettare le piante di pepe nero.

Un metodo di inoculazione efficace per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero

Piper nigrum L. (black pepper) is a typical woody vine that is an economically important spice crop across the world. Black pepper production is ...

Il seguente esperimento introduce un'efficace inoculazione e un metodo di campionamento preciso per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero. Il pepe nero, che è una tipica vite legnosa, è una coltura di spezie economicamente importante. La produzione di pepe nero è principalmente influenzata dalla malattia del marciume radicale causata da Phytophthora capsici e ha seriamente influenzato lo sviluppo industriale.Un'inoculazione efficace e un preciso sistema di campionamento per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero sono importanti per lo studio dell'interazione pianta-patogeno. L'obiettivo principale di questo studio è quello di dimostrare una metodologia dettagliata in cui la testa basale di pepe nero è stata inoculata con Phytophthora capsici, e anche fornire un riferimento per l'inoculazione di piante legnose di vite. Questo metodo fornisce un modo migliore per risolvere l'instabilità portata dal metodo di inoculazione tradizionale, come l'inzuppamento del terreno o l'immersione delle radici.Procedure sperimentali. Le talee di peperoni neri vengono piantate in ambiente controllato per due mesi. Sottocultura la Phytophthora capsici e incuba per cinque giorni sotto i 25 gradi Celsius.Il giorno dell'infezione, i blocchi di agar sono coperti sui tre fori attaccati dall'ago. E infine, caratterizzare i sintomi della malattia. Preparazione di piante da taglio al pepe nero per l'infezione.Tagliare rami ortotropici in lunghezze di 40 centimetri e 0,5 centimetri di diametro e rimuovere rami plagiotropici nei nodi inferiori con coltello sterile e secateur. Il ramo tagliato dovrebbe contenere due nodi e cinque foglie nella parte superiore per ridurre la perdita d'acqua. Tagliate la parte superiore con un taglio piatto e la parte inferiore con un taglio obliquo.Il substrato radicante del taglio del pepe nero è stato preparato in una miscela, contenente terra e letame animale, come sterco di mucca, sterco di pecora, eccetera, in un rapporto di uno a uno. Il terreno è stato autoclavato a circa 121 gradi Celsius per 20 minuti. Utilizzare i sacchetti di riproduzione di 30 centimetri di diametro e 50 centimetri di altezza per posizionare i substrati di radicazione.Preparare una pendenza di 50 gradi per riempire i substrati. Le talee sono state posizionate con un angolo di 50 gradi, con più di tre nodi sotto il substrato. Erano coperti con il mezzo di radicazione e la parte ausiliaria doveva essere attaccata al mezzo.Infine, le talee sono state completamente infiltrate. Il taglio dritto è stato adottato per inserire il taglio. Preparazione di colture di Phytophthora capsici.Scegli patate senza malattie. Pulire le patate e tagliarle a quadratini. Mettere 200 grammi di patate in 800 millilitri di acqua doppia distillata e far bollire per 20 minuti.Quindi filtrare la miscela. Aggiungere 20 grammi di destrosio. Riempire la miscela a un litro con acqua doppia distillata.Aggiungere 15 grammi di polvere di agar nel filtrato. Erogare il mezzo in palloni e sigillare usando Parafilm. Autoclave il mezzo a 121 gradi Celsius per 20 minuti.Il mezzo calcolato di agar di patate è stato erogato nelle piastre della capsula di Petri e raffreddato sul banco sterile per la solidificazione. L'ago per l'inoculazione è stato disinfettato riscaldando con lampada a combustione di alcol e raffreddando per diversi secondi. Prelevare piccoli pezzi di campioni di funghi utilizzando l'inoculazione sterile e posizionarli sul PDA.Il micelio copre circa tre quarti della piastra. Le culture sono pronte per ulteriori esperimenti. Infezione di peperoni neri.La posizione di cinque centimetri di distanza dalla superficie del substrato è stata considerata come il punto di incubazione. Il luogo di incubazione non deve essere lontano dalla radice, con l'obiettivo di evitare di prolungare il tempo infettivo. I passaggi dettagliati della puntura di spillo sono i seguenti.Un pellet di micelio di Phytophthora capsici è stato raccolto utilizzando una piralide di stopper. In particolare, i pellet di micelio di nuova concezione sul bordo della piastra sono stati selezionati preferenzialmente a causa delle loro attività infettive più elevate. Sterilizzare uno stelo con etanolo al 75% e prendere tre pori triangolari in posizione sterilizzata usando l'ago per inoculazione.Tre pori triangolari nel luogo di inoculazione sono stati bloccati usando l'ago di inoculazione e le palline miceliali sono state coperte sui tre pori. Dopo otto ore, i pori sono diventati neri in generale. La dilatazione è stata ampliata con il prolungamento dell'incubazione.Dopo sette-dieci giorni, le foglie sono diventate gialle e cadono, fino a quando il pepe nero è morto. I risultati presentativi sono i seguenti. Dopo l'infezione, i sintomi compaiono sulle piante di pepe nero, tra cui l'ingiallimento e l'avvizzimento delle foglie, l'imbrunimento dello xilema e l'annerimento dei vasi.La maggior parte dei geni espressi in modo diverso dopo l'inoculazione con Phytophthora capsici, rispetto al gruppo di controllo. L'analisi istopatologica dei tessuti infetti ha dimostrato phytophthora capsici colonizzata nello xilema. Conclusione. In questo studio, la puntura di spillo della testa basale è stata utilizzata per renderla danneggiata per fornire un'inoculazione efficace e il sistema di raddoppio in pepe nero.Nel frattempo, questo protocollo rappresenta anche un modo più efficiente per fornire un riferimento per l'incubazione con-Il nostro metodo può dare più tempo e operare più brevemente. Questo protocollo fornisce risultati migliori, che consentono una forte interazione tra una pianta e l'agente patogeno trasmesso dal suolo. Che è visibile e conveniente per rilevare il processo dinamico tra le piante e i loro agenti patogeni.Nel nostro metodo che iniziamo a pungere la testa basale della pianta di pepe nero per farle danneggiare. Quindi, l'area danneggiata viene coperta direttamente con i phytophthora capsici e mantiene l'umidità. In modo che l'agente patogeno potesse infettare la pianta.Forniamo anche un modo promettente per lo studio della modalità d'azione tra le piante e altri patogeni vegetali trasmessi dal suolo nell'allevamento di precisione agricolo.

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È stato stabilito un protocollo di biodosaggio a foglia staccata per l'allevamento di massa dei tripidi del peperoncino utilizzando un metodo modificato a foglia staccata in contenitori di vetro contenenti agar, garantendo un'elevata sopravvivenza e uno sviluppo sincronizzato. Questo sistema consente uno screening efficiente della virulenza dei funghi entomopatogeni contro le larve di 2° stadio e fornisce un'alimentazione affidabile di tripidi per valutazioni di laboratorio, in serra e sul...

Istituzione di un sistema di allevamento per il controllo della virulenza dei funghi entomopatogeni (Scirtothrips dorsalis hood)

Scopri un metodo di inoculazione efficace per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero. Questa tecnica migliora l'affidabilità rispetto ai metodi tradizionali e fornisce un riferimento per l'inoculazione di piante legnose rampicanti.

Un metodo di inoculazione efficace per Phytophthora capsici sulle piante di pepe nero

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