Name: Preparazione di RNA lunghi citoplasmatici e nucleari da cellule primarie e in coltura (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-04-07T13:20:00.000+00:00
Duration: 6 min 29 s
Description: Impara a isolare RNA citoplasmatico e nucleare da cellule in coltura con questo protocollo efficiente e conveniente. La separazione delle frazioni cellulari viene validata mediante qPCR per studiare le interazioni intracellulari.

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Sostenuto da sovvenzioni dell'American Society of Hematology, della Robert Wood Johnson Foundation, della Doris Duke Charitable Foundation, della Edward P. Evans Foundation e del National Cancer Institute (1K08CA230319).

Le cellule K562 sono utilizzate per il presente studio. Questo protocollo è stato ottimizzato per funzionare per 1 x 10 6-5 x 106 milioni di celle. Tuttavia, la procedura può essere scalata per quantità di celle maggiori aumentando i volumi in modo appropriato.
1. Preparazione del tampone di lisi 0,25x
<ol><li>Preparare un tampone di lisi 0,25x miscelando i seguenti componenti forniti nella Tabella 1A. NOTA: I campioni richiedono circa 300 μL di tampone di lisi 0,25x. Volume consigliato = numero di campioni x 300 μL.</li>
</ol>2. Separazione delle frazioni nucleari e citoplasmatiche
<ol><li>Pellettare le celle utilizzando tubi da 1,5 ml tramite centrifugazione per 5 minuti a 2000 x g (temperatura ambiente). Eliminare il surnatante utilizzando una pipetta aspirante. NOTA: durante questo protocollo sono state utilizzate cellule K562. Tuttavia, il protocollo può essere adattato a varie linee cellulari.</li>
	<li>Risospendere il pellet in 300 μL di tampone di lisi 0,25x ghiacciato. NOTA: Tenere in ghiaccio per 2 minuti e ruotare il tubo ogni 45 s per garantire una corretta lisi delle cellule.</li>
	<li>Ruotare i tubi alla massima velocità (12.000 x g) a 4 °C per 2 minuti.</li>
	<li>Dopo la centrifugazione, rimuovere con cautela il surnatante e metterlo in un nuovo tubo da 1,5 ml. Questa sarà la frazione citoplasmatica. Saranno raggiunti circa 300 μL della frazione citoplasmatica.</li>
	<li>Il pellet rimanente sarà la frazione nucleare. Aggiungere 500 μL di PBS ghiacciato al pellet e centrifugare a 2.000 x g per 5 minuti a temperatura ambiente. NOTA: Durante questa fase, il DNA in eccesso viene rimosso.</li>
</ol>3. Pulizia dell'RNA utilizzando un kit di purificazione dell'RNA
NOTA: Questo protocollo è stato realizzato utilizzando un kit di purificazione dell'RNA disponibile in commercio (vedi Tabella dei materiali).
<ol><li>Separare i campioni di RNA citoplasmatico e i campioni citoplasmatici nucleari (poiché le fasi di frazionamento variano tra di loro).<ol><li>Per separare la frazione citoplasmatica, aggiungere 1.050 μL di tampone di lisi RLT 3,5x (vedere la tabella dei materiali) e vortice brevemente. Quindi, aggiungere 750 μL di etanolo al 90% e caricarlo sulla colonna dal kit di pulizia dell'RNA. NOTA: la soluzione deve essere ben miscelata prima di caricarla sulla colonna.</li>
		<li>Per separare la frazione nucleare, aggiungere 600 μL di tampone di lisi 3,5x e vortice. Quindi, aggiungere 600 μL di etanolo al 70%.</li>
	</ol></li>
	<li>Caricare sia le frazioni citoplasmatiche che quelle nucleari su colonne di RNA (vedi Tabella dei materiali). NOTA: Per il resto della fase 3, sia i campioni citoplasmatici che quelli nucleari seguono la stessa procedura. Tuttavia, assicurarsi che questi campioni rimangano indipendenti l'uno dall'altro.<ol><li>Caricare sia le frazioni citoplasmatiche che nucleari su colonne di RNA e ruotare per 30 s a 8.000 x g a temperatura ambiente. Scartare il flusso in eccesso attraverso.</li>
		<li>Aggiungere 350 μL di tampone di lavaggio da un kit di purificazione disponibile in commercio (tampone RW1, vedere la tabella dei materiali), centrifugare di nuovo ed eliminare il flusso attraverso.</li>
		<li>Aggiungere la soluzione di DNAse (1U/uL) per 15 minuti a temperatura ambiente. Quindi, aggiungere 350 μL di tampone di lavaggio, girare di nuovo e scartare il flusso attraverso.</li>
		<li>Aggiungere 500 μL di tampone di lavaggio delicato (RPE; vedere la tabella dei materiali), centrifugare di nuovo ed eliminare il flusso attraverso. Aggiungere 500 μL di tampone di lavaggio delicato, centrifugare di nuovo, ma solo per 2 minuti.</li>
		<li>Spostare la colonna in una nuova provetta da microcentrifuga da 1,5 ml e aggiungere 30 μL di acqua alla colonna di rotazione. Lasciare riposare la colonna per 1 minuto prima di girare.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Validazione della separazione nucleare-citoplasmatica
<ol><li>Eseguire la sintesi del cDNA<ol><li>Una volta estratti e purificati i compartimenti subcellulari di RNA, confermare la separazione dei compartimenti mediante qPCR. Per fare ciò, in primo luogo, convertire l'RNA in cDNA utilizzando un kit disponibile in commercio seguendo le istruzioni del produttore (vedi Tabella dei materiali).</li>
		<li>Preparare il mastermix di trascrittasi inversa. Aggiungi modello di RNA. Incubare le reazioni in un termociclatore. NOTA: per gli esameri casuali, i parametri ciclici utilizzati sono riportati nella tabella 2A. Usare immediatamente la reazione della trascrittasi inversa o conservare a -20 °C (Tabella 1B).</li>
	</ol></li>
	<li>Eseguire la reazione a catena della polimerasi quantitativa (qPCR) e l'analisi.<ol><li>Diluire la sintesi del cDNA con acqua DEPC (vedere Tabella dei Materiali) per ottenere una concentrazione finale di 20 ng/mL.</li>
		<li>Utilizzando una miscela master PCR, preparare la reazione per ciascun campione utilizzando le istruzioni manuali elencate di seguito.</li>
		<li>Acquisire sonde commerciali necessarie per rilevare il frazionamento citoplasmatico e nucleare. Utilizzare MALAT1 come marcatore nucleare e TUG1 come marcatore citoplasmatico (vedere Tabella dei materiali). NOTA: le sequenze per MALAT1 e TUG1 sono fornite nella Tabella 3.</li>
		<li>Calcolare il volume di ciascun componente moltiplicando ciascun componente per 3 per ciascuna delle repliche tecniche per il singolo campione.</li>
		<li>Per ciascun campione nucleare e citoplasmatico, acquisire le seguenti miscele per ciascuno: (a) frazione nucleare con MALAT1, (b) frazione citoplasmatica con MALAT1, (c) frazione nucleare con TUG1 e (d) frazione citoplasmatica con TUG1 (tabella 1C).</li>
		<li>Vortice per miscelare brevemente le soluzioni e trasferire 20 μL della miscela in ciascun pozzetto di una piastra di reazione ottica (vedi tabella dei materiali).</li>
		<li>Coprire la piastra con una pellicola adesiva trasparente utilizzata per qPCR (vedere Tabella dei materiali) e centrifugare brevemente la piastra per eliminare le bolle d'aria, quindi ruotare il campione a 300 x g per 5 minuti a temperatura ambiente.</li>
		<li>Utilizzando un software di progettazione e analisi (vedi Tabella dei materiali), selezionare la curva standard per i parametri ciclici (Tabella 2B).</li>
		<li>Utilizzando il software qPCR, selezionare Imposta esecuzione (Figura supplementare 1).</li>
		<li>Nella pagina Proprietà file di dati selezionare Metodo e parametri del ciclo di input dalla tabella 2B (figura supplementare 2).</li>
		<li>Dopo aver inserito i parametri del ciclo, selezionare la scheda Piastra e immettere i campioni da eseguire (Figura 3 supplementare). Seleziona Avvia esecuzione. NOTA: I passaggi descritti sono stati eseguiti in una macchina qPCR utilizzando un master mix disponibile in commercio (vedere Tabella dei materiali).</li>
	</ol></li>
	<li>Eseguire l'analisi dei dati<ol><li>Al termine dell'esecuzione, creare un foglio di calcolo dei dati con il nome dell'esempio, il nome della destinazione e il ciclo di quantificazione (Cq) (tabella supplementare 1).</li>
		<li>Inizia con i campioni MALAT1 per calcolare la frazione nucleare. Sottrarre la frazione citoplasmatica MALAT1 dalla frazione nucleare MALAT1 (Tabella 4).</li>
		<li>Quindi, calcolare il ΔCq (2^(-valore)) (Tabella 5).</li>
		<li>Continuare con i campioni MALAT1 per calcolare la frazione citoplasmatica, sottrarre la frazione nucleare MALAT1 dalla frazione citoplasmatica MALAT1 e quindi calcolare il ΔCq (2^(-valore)) (Tabella 6). NOTA: Osservando il ΔCq, si osserva che la frazione nucleare MALAT1 (evidenziazione verde) ha un marcatore MALAT1 maggiore rispetto al citoplasma (evidenziazione rossa), ma ora è necessaria la conferma per garantire che la frazione citoplasmatica sia prevalentemente citoplasma e che la frazione nucleare non contenga contaminazione citoplasmatica.</li>
		<li>Con i campioni TUG1, eseguire lo stesso calcolo di cui sopra (passaggi 4.3.2-4.3.4) (Tabella 7). NOTA: Osservando il ΔCq, si osserva che la frazione citoplasmatica TUG1 (evidenziazione verde) ha un marcatore TUG1 maggiore rispetto alla frazione nucleare (evidenziazione rossa), confermando così una buona separazione delle frazioni citoplasmatiche e nucleari (Tabella 8, Figura 1).</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Conrad, T., Orom, U. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+fractionation+and+isolation+of+chromatin-associated+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Cellular fractionation and isolation of chromatin-associated RNA.</a> Methods in Molecular Biology. 1468, 1-9 (2017).</li>
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<li>El-Tanani, M., Dakir el, H., Raynor, B., Morgan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+nuclear+export+in+cancer+and+resistance+to+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of nuclear export in cancer and resistance to chemotherapy.</a> Cancers (Basel). 8 (3), 35(2016).</li>
<li>Turner, J. G., Dawson, J., Sullivan, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+export+of+proteins+and+drug+resistance+in+cancer%29%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Nuclear export of proteins and drug resistance in cancer).</a> Biochemical Pharmacology. 83 (8), 1021-1032 (2012).</li>
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<li>Taylor, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+nuclear+export+signal+recognition+as+a+driver+of+oncogenesis+altered+nuclear+export+signal+recognition+drives+oncogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Discovery%22%5BJournal%5D)">Altered nuclear export signal recognition as a driver of oncogenesis altered nuclear export signal recognition drives oncogenesis.</a> Cancer Discovery. 9 (10), 1452-1467 (2019).</li>
<li>Ayupe, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+analysis+of+biogenesis%2C+stability+and+sub-cellular+localization+of+lncRNAs+mapping+to+intragenic+regions+of+the+human+genome%5BTitle%5D)+AND+%22RNA+Biology%22%5BJournal%5D)">Global analysis of biogenesis, stability and sub-cellular localization of lncRNAs mapping to intragenic regions of the human genome.</a> RNA Biology. 12 (8), 877-892 (2015).</li>
<li>Ghuysen, J. -M., Hakenbeck, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGhuysen%2C+J-M+%22Bacterial+Cell+Wall%22">Bacterial Cell Wall</a>. , Elsevier. (1994).</li>
<li>Fersht, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFersht%2C+A+%22Enzyme+Structure+and+Mechanism%22">Enzyme Structure and Mechanism</a>. , (1985).</li>
<li>Green, M. R., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreen%2C+MR+%22How+to+win+the+battle+with+RNase%22">How to win the battle with RNase</a>. 2019 (2), Cold Spring Harbor Protocols. (2019).</li>
<li>Blumberg, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creating+a+ribonuclease-free+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Creating a ribonuclease-free environment.</a> Methods in Enzymology. 152, 20-24 (1987).</li>
<li>Abmayr, S. M., Yao, T., Parmely, T., Workman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+nuclear+and+cytoplasmic+extracts+from+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Preparation of nuclear and cytoplasmic extracts from mammalian cells.</a> Current Protocols in Molecular Biology. , Chapter 12, Unit 12.1 (2006).</li>
<li>Taylor, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selinexor%2C+a+first-in-class+XPO1+inhibitor%2C+is+efficacious+and+tolerable+in+patients+with+myelodysplastic+syndromes+refractory+to+hypomethylating+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Selinexor, a first-in-class XPO1 inhibitor, is efficacious and tolerable in patients with myelodysplastic syndromes refractory to hypomethylating agents.</a> Blood. 132, Supplement 1 233(2018).</li>
</ol>

Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.

Durante tutto il protocollo, sono stati presi alcuni passaggi per ottimizzare gli elementi per essere più efficaci per la linea cellulare di interesse. Mentre i passaggi all'interno del protocollo sono relativamente semplici, possono essere necessarie analisi e piccoli aggiustamenti durante gli aspetti critici del protocollo. Il passo più critico nel protocollo è modificare la concentrazione del tampone di lisi in una concentrazione appropriata basata sulla linea cellulare di interesse e sul bersaglio cellulare. Poiché l...

Il frazionamento cellulare in componenti subcellulari consente l'isolamento e lo studio di domini biochimici definiti e aiuta a determinare la localizzazione di specifici processi cellulari e come questo può influire sulla loro funzione1. L'isolamento dell'RNA da diverse posizioni intracellulari può consentire una migliore accuratezza dell'analisi genetica e biochimica degli eventi a livello di trascrizione e di altre interazioni tra il nucleo e il citoplasma, che funge da scopo primario dell'attuale protocollo2. Questo protocollo è stato sviluppato per garantire l'isolamento degli RNA citoplasmatici e nucleari per determinare i loro rispettivi ruoli nell'esportazione nucleare e per capire come la localizzazione subcellulare degli RNA nel nucleo e nel citoplasma possa influire sulla loro funzione nei processi cellulari. Utilizzando materiali provenienti da un tipico ambiente di laboratorio, è stato possibile ottenere il frazionamento nucleare e citoplasmatico in modo più efficace e meno costoso rispetto ai protocolli precedentemente stabiliti senza compromettere la qualità dei risultati3.
Inoltre, lo scambio di molecole tra il citoplasma e il nucleo può essere studiato direttamente separando queste regioni. Più specificamente, la comprensione del trascrittoma è essenziale per comprendere lo sviluppo e la malattia. Tuttavia, gli RNA possono essere a diversi livelli di maturazione in un dato momento e possono complicare l'analisi a valle. Questo protocollo consente la capacità di isolare l'RNA da frazioni subcellulari nucleari e citoplasmatiche, che possono aiutare negli studi dell'RNA e consentire una migliore comprensione di un particolare RNA di interesse, come la localizzazione di RNA non codificanti o l'analisi delle giunzioni di giunzione all'interno del nucleo.
Questo protocollo è stato ottimizzato per isolare RNA lunghi citoplasmatici e nucleari, inclusi mRNA, rRNA e RNA lunghi non codificanti (lncRNA), a causa della selettività dimensionale della colonna di purificazione dell'RNA utilizzata, che può essere modificata per isolare altri RNA di interesse. In precedenza, la funzione degli RNA lunghi, come mRNA e lncRNA, dipendeva fortemente dalla loro rispettiva localizzazione all'interno della cellula 4,5. Pertanto, lo studio dell'esportazione dal nucleo ai domini subcellulari è diventato più mirato verso la comprensione del ruolo che l'esportazione di RNA o altri componenti cellulari può avere sulla cellula. Gli lncRNA servono come primo esempio di questo, poiché la loro traduzione e i successivi effetti si basano in gran parte sulla vicinanza e sulle interazioni con altre forme di RNA6. Inoltre, lo scambio di elementi cellulari tra regioni nucleari e citoplasmatiche è legato a meccanismi di resistenza a vari trattamenti antitumorali7. L'isolamento dei compartimenti intracellulari ha permesso lo sviluppo di inibitori nucleari dell'esportazione, che ha ridotto gli effetti dei meccanismi di resistenza a diverse terapie8.
Dopo aver separato l'RNA nucleare e citoplasmatico, vengono eseguiti passaggi per purificare l'RNA di interesse. Poiché i kit di purificazione dell'RNA si trovano comunemente all'interno dei laboratori e funzionano per purificare e isolare gli RNA lunghi, servono bene allo scopo di questo protocollo. Per la purificazione dell'RNA, generare rapporti 260:280 superiori a 1,8 è fondamentale per garantire la qualità dei campioni per il sequenziamento dell'RNA o altre procedure simili che richiedono alti livelli di purezza e isolamento. Valori irregolari di 260:280 indicano contaminazione da fenolo, dimostrando uno scarso isolamento e producendo risultati imprecisi9.
Una volta completata la purificazione dell'RNA e confermati valori 260:280 al di sopra di un intervallo accettabile, la qPCR è stata utilizzata per convalidare i risultati di isolamento delle frazioni nucleari e citoplasmatiche. In tal modo, sono stati utilizzati primer specifici per la regione di interesse per dimostrare i livelli di frazionamento nucleare e citoplasmatico. In questo protocollo, MALAT1 e TUG1 sono stati utilizzati come marcatori nucleari e citoplasmatici, rispettivamente10. Insieme, consentono la dimostrazione di alti livelli di frazionamento nucleare con MALAT1, mentre il frazionamento citoplasmatico dovrebbe essere basso. Al contrario, quando viene utilizzato TUG1, i livelli di frazionamento citoplasmatico dovrebbero essere superiori ai livelli di frazionamento nucleare.
Utilizzando questo protocollo, è stato possibile isolare gli RNA in base alla loro posizione di azione all'interno della cellula. A causa dell'ampio accesso a molti materiali e dell'utilizzo del solo tampone di lisi e delle tecniche di centrifugazione basate sulla densità durante questo esperimento, l'applicabilità ad altri tipi di RNA e ad altri componenti cellulari è diffusa. Questo può fornire informazioni importanti facendo luce su eventi di espressione specifici della posizione che altrimenti sarebbero indistinguibili senza separazione.

<table><tbody><tr><td>Agilent Tapestation</td><td>Agilent</td><td>G2991BA</td><td>Il sistema Agilent TapeStation è una soluzione automatizzata di elettroforesi per il controllo della qualità dei campioni di DNA e RNA.</td></tr><tr><td>0,5% Nonidet P-40</td><td>Thermo-Fischer</td><td>28324</td><td>Utilizzato nella produzione di tampone di lisi</td></tr><tr><td>50 mM Tris-Cl pH 8,0</td><td>Thermo-Fischer</td><td>15568025</td><td>Utilizzato nella produzione di tampone di lisi</td></tr><tr><td>MALAT1 GE Assay</td><td>Thermo-Fischer</td><td>Hs00273907_s1</td><td>Utilizzato per la conferma della frazione nucleare.</td></tr><tr><td>Piastra di reazione ottica a 96 pozzetti MicroAmp con codice a barre</td><td>Thermo-Fischer</td><td>4326659</td><td>La piastra di reazione ottica a 96 pozzetti MicroAmp di Applied Biosystems con codice a barre è ottimizzata per fornire un'accuratezza e un'uniformità della temperatura senza pari per un'amplificazione PCR rapida ed efficiente. Questa piastra, costruita da un unico pezzo rigido di polipropilene in un formato a 96 pozzetti, è compatibile con i sistemi di PCR in tempo reale a 96 pozzetti e con i termociclatori di Applied Biosystems.</td></tr><tr><td>Pellicola adesiva ottica MicroAmp</td><td>Thermo-Fischer</td><td>4311971</td><td>La pellicola adesiva ottica MicroAmp di Applied Biosystems riduce la possibilità di contaminazione da pozzetto a pozzetto e di evaporazione del campione quando viene applicata a una micropiastra durante la qPCR</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>20012-023</td><td>La soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) è una soluzione salina bilanciata che viene utilizzata per una varietà di applicazioni di coltura cellulare, come il lavaggio delle cellule prima della dissociazione, Trasporto di cellule o campioni di tessuto, diluizione delle cellule per il conteggio e preparazione dei reagenti.</td></tr><tr><td>Kit di pulizia dell'RNA Qiagen-Mini kit Rneasy I</td> kit di pulizia dell'RNA <td>Qiagen</td><td>74106</td><td>consentono un'efficiente pulizia dell'RNA delle reazioni enzimatiche e la pulizia dell'RNA purificato con metodi diversi. Include i buffer RW1, RLT, RW1 menzionati in tutto il protocollo.</td></tr><tr><td>Software qPCR QuantStudio 6</td><td>Thermo-Fischer</td><td>A43180</td><td>utilizzato durante il protocollo. Include software di progettazione e analisi per l'analisi dei campioni di frazionamento</td></tr><tr><td>Tampone RLT</td><td>Qiagen</td><td>79216</td><td>Tampone di lisi dal kit di pulizia dell'RNA</td></tr><tr><td>Tampone RPE Tampone</td><td>Qiagen</td><td>1018013</td><td>Wash Buffer dal kit di pulizia dell'RNA</td></tr><tr><td>Tampone RW1 Tampone</td><td>Qiagen</td><td>1053394</td><td>Wash dal kit di pulizia dell'RNA</td></tr><tr><td>Saggi di espressione genica Taqman</td><td>Thermo-Fischer</td><td>4331182</td><td>I saggi di espressione genica TaqMan di Applied Biosystems rappresentano la più grande raccolta di saggi pre-progettati del settore, con oltre 2,8 milioni di saggi su 32 specie eucariotiche e numerosi microbi. I saggi di espressione genica TaqMan consentono di ottenere risultati rapidamente, senza perdite di tempo nell'ottimizzazione dei primer SYBR Green e senza perdere tempo aggiuntivo per l'esecuzione e l'analisi delle curve di fusione.</td></tr><tr><td>TaqMan Universal PCR Master Mix</td><td>Thermo-Fischer</td><td>4305719</td><td>TaqMan Universal PCR Master Mix è la soluzione di reagenti ideale quando si ha bisogno di una master mix per applicazioni multiple di DNA nucleasi 5'. I reagenti di Applied Biosystems sono stati convalidati con i saggi TaqMan e i sistemi in tempo reale di Applied Biosystems per garantire sempre prestazioni sensibili, accurate e affidabili.</td></tr><tr><td>TUG1 GE Assay</td><td>Thermo-Fischer</td><td>Hs00215501_m1</td><td>utilizzato per la conferma della frazione citoplasmatica.</td></tr><tr><td>Acqua trattata con DEPC UltraPure</td><td>Thermo-Fischer</td><td>750024 L'acqua</td><td>trattata con DEPC UltraPure è adatta per l'uso con RNA. Viene preparato mediante incubazione con dietilpirocarbonato (DEPC) allo 0,1% e quindi sterilizzato in autoclave per rimuovere il DEPC. Filtrato sterile.</td></tr></tbody></table>

preparazione di rna lunghi citoplasmatici e nucleari da cellule primarie e in coltura

Preparation of Cytoplasmic and Nuclear Long RNAs from Primary and Cultured Cells

La separazione dei componenti intracellulari è stata uno strumento chiave nella biologia cellulare per molti anni ed è stata in grado di fornire informazioni utili su come la loro posizione può influire sulla loro funzione. In particolare, la separazione dell'RNA nucleare e citoplasmatico è diventata importante nel contesto delle cellule tumorali e nella ricerca di nuovi bersagli per i farmaci. L'acquisto di kit per l'estrazione dell'RNA nucleare-citoplasmatico può essere costoso quando molti dei materiali richiesti possono essere trovati all'interno di un tipico ambiente di laboratorio. Utilizzando il metodo attuale, che può sostituire kit più costosi o altri processi che richiedono tempo, sono necessari solo un tampone di lisi fatto in casa, una centrifuga da banco e colonne di purificazione dell'isolamento dell'RNA per isolare l'RNA nucleare e citoplasmatico. Il tampone di lisi viene utilizzato per lisare delicatamente la membrana esterna della cellula senza compromettere l'integrità dell'involucro nucleare, consentendo il rilascio dei suoi componenti intracellulari. Quindi, i nuclei possono essere isolati con una semplice fase di centrifugazione poiché possiedono una densità maggiore rispetto alla soluzione di lisi. La centrifugazione viene utilizzata per separare queste aree in base alle loro differenze di densità per isolare gli elementi subcellulari nel nucleo da quelli nel citoplasma. Una volta che la centrifugazione ha isolato i diversi componenti, viene utilizzato un kit di pulizia dell'RNA per purificare il contenuto di RNA e viene eseguita la qPCR per convalidare la qualità della separazione, quantificata dalla quantità di RNA nucleare e citoplasmatico nelle diverse frazioni. Sono stati raggiunti livelli di separazione statisticamente significativi, che illustrano l'efficacia del protocollo. Inoltre, questo sistema può essere adattato per l'isolamento di diversi tipi di RNA (RNA totale, piccolo, ecc.), Il che consente uno studio mirato delle interazioni citoplasma-nucleo e aiuta a comprendere le differenze nella funzione dell'RNA che risiedono nel nucleo e nel citoplasma.

Per garantire che l'isolamento nucleare e citoplasmatico fosse stato raggiunto, è stata eseguita una qPCR per convalidare i risultati. In tal modo, sono stati utilizzati primer specifici per la regione di interesse per dimostrare i livelli di frazionamento nucleare e citoplasmatico. In questo studio, MALAT1 e TUG1 sono stati utilizzati rispettivamente come primer nucleari e citoplasmatici. Insieme, consentono la dimostrazione di alti livelli di frazionamento nucleare con MALAT1 come controllo positivo per gli elementi nu...

Il presente protocollo offre un metodo efficiente e flessibile per isolare l'RNA da frazioni nucleari e citoplasmatiche utilizzando cellule in coltura e quindi convalidare utilizzando qPCR. Questo serve efficacemente come sostituto per altri kit di preparazione dell'RNA.

Preparazione di RNA lunghi citoplasmatici e nucleari da cellule primarie e in coltura

The separation of intracellular components has been a key tool in cellular biology for many years now and has been able to provide useful insight into how ...

Questo protocollo è necessario per valutare i diversi ruoli di elementi biochimici definiti nel nucleo e nel citoplasma e per analizzare le interazioni intracellulari tra questi domini all'interno di varie linee cellulari. Questa tecnica utilizza apparecchiature di laboratorio e reagenti comuni per separare in modo più efficiente le frazioni citoplasmatiche e nucleari. Questo protocollo può farlo in modo meno costoso e più veloce rispetto ad altri protocolli.Man mano che gli studi sulle interazioni citoplasmatiche e nucleari diventano più diffusi, l'impatto della localizzazione sugli eventi intracellulari può essere meglio compreso. Lo scambio tra il citoplasma e il nucleo può essere analizzato, indicando se alcune molecole durante questi scambi possono portare allo sviluppo del cancro, come hanno indicato studi sulle proteine nucleari. Il passo più critico nel protocollo è modificare la concentrazione del tampone di lisi a una concentrazione adeguata.Poiché l'uso del tampone di lisi dipende in gran parte dalla rottura delle membrane cellulari e ci sono varianti naturali nell'efficacia del tampone di lisi su diverse linee cellulari. Per iniziare, pellettare le celle, utilizzando tubi da 1,5 millilitri tramite centrifugazione per cinque minuti a 2000 G.Scartare il surnatante usando una pipetta aspirante. Risospendere il pellet in 300 microlitri di tampone di lisi ghiacciato.Quindi, ruotare i tubi ad una velocità di circa 12.000 G a quattro gradi Celsius per due minuti. Rimuovere con attenzione il surnatante e posizionarlo in un nuovo tubo da 1,5 millilitri. Il pellet rimanente sarà la frazione nucleare.Quindi, aggiungere 500 microlitri di PBS ghiacciato al pellet e centrifugare a 2000 G per cinque minuti a temperatura ambiente. Per confermare la separazione dei compartimenti usando qPCR, in primo luogo, convertire l'RNA in DNA complementare utilizzando un kit disponibile in commercio. Preparare la master mix di trascrittasi inversa.Aggiungi modello di RNA. Incubare le reazioni in un termociclatore. Procedere per l'esecuzione della reazione a catena quantitativa della polimerasi e dell'analisi.Inizia diluendo la sintesi del cDNA con acqua DEPC per avere una concentrazione finale di 20 nanogrammi per millilitro. Utilizzando una miscela master PCR, preparare la reazione per ciascun campione utilizzando istruzioni manuali. Acquisire sonde commerciali necessarie per rilevare il frazionamento citoplasmatico e nucleare.Utilizzare MALAT1 come marcatore nucleare e TUG1 come marcatore citoplasmatico. Calcolare il volume di ciascun componente moltiplicando ogni componente per tre per ciascuna delle repliche tecniche per il singolo campione. Per ogni campione nucleare e citoplasmatico, acquisire la frazione nucleare miscelata con MALAT1, la frazione citoplasmatica con MALAT1, la frazione nucleare con TUG1 e la frazione citoplasmatica con TUG1.Vortice brevemente per mescolare le soluzioni e trasferire 20 microlitri della miscela in ciascun pozzetto di una piastra di reazione ottica. Coprire la piastra con una pellicola adesiva trasparente utilizzata per la qPCR e centrifugare brevemente la piastra per eliminare le bolle d'aria, quindi ruotare il campione a 300 volte G per cinque minuti a temperatura ambiente. Utilizzando un software di progettazione e analisi, selezionare la curva standard per i parametri ciclici.Utilizzando il software qPCR, selezionare l'esecuzione del programma di installazione. Nella pagina delle proprietà del file di dati selezionare i parametri del metodo e del ciclo di input. Dopo aver inserito i parametri del ciclo, selezionare la scheda della piastra e immettere i campioni da eseguire.Seleziona avvia esecuzione. Al termine dell'esecuzione, creare un foglio di calcolo dei dati con il nome dell'esempio, il nome della destinazione e il ciclo di quantificazione. Inizia con i campioni MALAT1 per calcolare la frazione nucleare.Sottrarre la frazione citoplasmatica MALAT1 dalla frazione nucleare MALAT1. Continuare con i campioni MALAT1 per calcolare la frazione citoplasmatica. Sottrarre la frazione nucleare MALAT1 dalla frazione citoplasmatica MALAT1 e quindi calcolare i due elevati a delta CQ negativo. Eseguire i calcoli con campioni TUG1.Quando TUG1 è presente come controllo positivo per gli elementi citoplasmatici, i livelli di frazionamento citoplasmatico dovrebbero essere superiori ai livelli di frazionamento nucleare. Un risultato negativo quando si osservano livelli di frazionamento citoplasmatico nel campione con MALAT1. Ciò indica la contaminazione dell'RNA isolato dalla frazione nucleare, potenzialmente dovuta a concentrazioni di lisi troppo basse o troppo alte.MALAT1 e TUG1 hanno mostrato la più alta correlazione con la separazione nucleare e citoplasmatica, come confermato attraverso un Western blot e l'elettroforesi dell'RNA, che ha confermato la purezza e la qualità dei campioni. Inoltre, la purezza degli estratti nucleari e citoplasmatici può essere dimostrata da un Western blot che utilizza la lamina come marker per la frazione nucleare e l'alfa-tubulina come marker positivo per la frazione citoplasmatica. Nessun picco è stato osservato nell'elettroforesi dell'RNA citoplasmatico, dimostrando alta qualità e poca o nessuna contaminazione nel campione di RNA citoplasmatico.L'utilizzo del tampone di lisi è fondamentale per il corretto frazionamento e l'ottimizzazione della concentrazione del tampone di lisi alla linea cellulare di interesse desiderata è essenziale. Questa tecnica consente lo studio mirato dell'interazione nucleare e citoplasmatica, che è ampiamente applicabile a una varietà di argomenti di ricerca e consente una migliore comprensione di come la localizzazione di specifici elementi biologici può essere correlata alla loro funzione.

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