Name: Bypass duodeno-ileale a singola anastomosi con modello di gastrectomia a manica nei topi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-02-10T14:05:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Scopri il bypass duodeno-ileale a singola anastomosi nei topi per studiare gli effetti metabolici della chirurgia bariatrica. Questo modello permette di analizzare i meccanismi cellulari e molecolari in modo controllato.

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Ringraziamo Ethicon (Johnson and Johnson surgical technologies) per aver gentilmente fornito il cordone di sutura e le clip chirurgiche. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni del NExT Talent Project, Université de Nantes, CHU de Nantes.

Questo protocollo è stato approvato dal locale comitato etico francese per la sperimentazione animale (Comité d'éthique en expérimentation animale; riferimento CEEA-PdL n 06).
1. Preparazione preoperatoria
<ol><li>Aggiungere il cibo dietetico gel alla dieta normale 3 giorni prima dell'intervento. Velocizzare i topi 6 ore prima dell'intervento.</li>
	<li>Indurre l'anestesia con isoflurano al 5% (1 L/min) in una camera dedicata con ossigeno (1 L/min). Iniettare i topi per via sottocutanea con buprenorfina (0,1 mg/kg), amoxicillina (15 mg/kg), metoclopramide (1 mg/kg), meloxicam (1 mg/kg) e ferro (0,5 mg/kg).</li>
	<li>Rasare le prime 2/3 parti dell'addome del topo iniziando dal processo xifoideo utilizzando un rasoio elettrico. Disinfettare l'addome del topo in due passaggi utilizzando una soluzione di polividone di iodio.</li>
	<li>Posizionare il mouse supino su un termoforo dedicato coperto da un sottoscocca pulito. Mantenere l'anestesia utilizzando un cono nasale con isoflurano al 2% -2,5% (0,4 L / min) con ossigeno (0,4 L / min). Utilizzare un test di pizzicamento del piede per confermare la profondità dell'anestetizzazione.</li>
	<li>Coprire il mouse in un involucro di plastica sterilizzato. Per applicare l'iperestensione sull'addome del topo, fissare la zampa inferiore e utilizzare una siringa da 1 mL o equivalente posizionata dietro la schiena del mouse. Tagliare un'apertura in un impacco sterile con le dimensioni dell'incisione futura e usarlo come campo operativo per coprire il mouse. L'installazione generale è illustrata nella Figura 2A.</li>
	<li>Prima dell'intervento chirurgico, utilizzare una maschera facciale, una cuffia da scrub e guanti sterilizzati. Utilizzare strumenti sterilizzati per l'intervento chirurgico.</li>
</ol>2. Il protocollo SADI-S
<ol><li>Laparotomia mediana<ol><li>Sotto un microscopio binoculare (ingrandimento 8x), eseguire una laparotomia mediana con forbici o bisturi aprendo la pelle addominale dal processo xifoideo al centro dell'addome. Assicurarsi che il processo xifoideo e lo strato muscoloaponeurotico siano visibili (Figura 2B). NOTA: Somministrare bupivacaina (3 mg/kg) per via sottocutanea nel sito chirurgico 5 minuti prima di effettuare l'incisione cutanea.</li>
		<li>Aprire la parete addominale lungo la linea alba con le forbici tra i muscoli addominali. Fare attenzione a non entrare nella cavità toracica (Figura 2C).</li>
	</ol></li>
	<li>Esclusione duodenale<ol><li>Mobilitare delicatamente il duodeno dalla cavità addominale usando un batuffolo di cotone inumidito per vedere i suoi lati anteriore e posteriore. Localizzare il dotto biliare principale, che è immediatamente visibile al microscopio binoculare sul lato posteriore dell'omento minore e del duodeno (Figura 3A, frecce nere).</li>
		<li>Prossimalmente dal dotto biliare principale, visualizzare un'area tra le arterie duodenali al microscopio binoculare (Figura 3A, B, cerchi tratteggiati blu). Penetrare in quest'area usando una pinza micro curva da un lato all'altro del duodeno ed eseguire una legatura duodenale tra le arterie usando una sutura 6-0 non assorbibile (Figura 3C-E). Fare attenzione a non ligare i rami delle arterie duodenali.</li>
	</ol></li>
	<li>Gastrectomia a manica<ol><li>Mobilitare lo stomaco dalla cavità addominale usando un batuffolo di cotone inumidito e un morsetto non traumatico. Separare lo stomaco dagli organi circostanti usando micro forbici: separare l'omento maggiore, tagliare le arterie gastriche corte (ramo dell'arteria splenica) tra lo stomaco e la milza e il lipoma che collega lo stomaco alla parte inferiore dell'esofago (Figura 4A,B).</li>
		<li>Utilizzando micro forbici, eseguire una gastrotomia di 5 mm aprendo il fondo e rimuovere il cibo residuo utilizzando un batuffolo di cotone (Figura 4C, freccia). Risciacquare il sito di gastrotomia con soluzione salina sterile (37 °C) per evitare la contaminazione dal contenuto gastrico rimosso.</li>
		<li>Applicare clip chirurgiche (dimensioni medie, 5,6 mm) lungo la maggiore curvatura dello stomaco per escludere circa l'80% dello stomaco. Due clip sono sufficienti. Rimuovere lo stomaco escluso tagliandolo con micro forbici (Figura 4D-G).</li>
		<li>Ancorare le clip chirurgiche per accertare l'impermeabilità eseguendo una sutura corrente (8-0) dall'inizio alla fine della resezione dello stomaco (Figura 4H).</li>
	</ol></li>
	<li>Anastomosi duodeno-ileale<ol><li>Sotto il microscopio binoculare, visualizzare l'ultimo anello ileale, che si trova appena prima del cieco (Figura 5A). Mobilitare delicatamente l'intestino tenue all'esterno della cavità addominale dall'ultima ansa ileale. Disporre l'intestino tenue, come mostrato nella Figura 5B, in modo che l'ultimo anello ileale si trovi sul lato sinistro. Utilizzando un cordone di sutura di dimensioni precedenti, misurare 10 cm (circa 1/3 della lunghezza totale dell'intestino tenue) dall'ultima ansa ileale; Questo sarà il sito della futura anastomosi.</li>
		<li>Al fine di garantire che il futuro arto biliare arrivi al sito di anastomosi dal suo lato sinistro, fare un grande anello dell'intestino tenue attorno al sito della futura anastomosi. Utilizzando micro forbici, eseguire un'enterotomia di 4 mm aprendo l'intestino tenue a questo punto (Figura 5C-E). Risciacquare il sito di enterotomia con soluzione salina sterile (37 °C) per evitare contaminazioni.</li>
		<li>Eseguire un'enterotomia di 4 mm sulla parte esclusa del duodeno, immediatamente dopo il piloro, tra lo stomaco e la legatura eseguita al punto 2.2.2 (Figura 5F). Posizionare un impacco di collagene emostatico assorbibile da 5 mm x 5 mm per favorire l'omeostasi.</li>
		<li>Utilizzando un 8-0 non assorbibile sutura, eseguire un'anastomosi duodeno-ileale side-to-side-atale. Inizia con l'anastomosi laterale posteriore, seguita dall'anastomosi laterale anteriore (Figura 5G-I).</li>
	</ol></li>
	<li>Chiusura addominale<ol><li>Mostra l'intestino tenue nella cavità addominale in modo che l'arto biliare arrivi all'anastomosi dal lato superiore sinistro dell'addome e l'arto comune cada nella parte inferiore dell'addome. NOTA: Lavare l'addome tre volte con circa 5 ml di soluzione salina sterile allo 0,9% (37 °C). Quindi, aspirare il fluido dall'addome per rimuovere il liquido gastrointestinale residuo e il cibo digerito per evitare infezioni batteriche e successive infiammazioni addominali.</li>
		<li>Reidratare il topo con 500 μL di soluzione salina a 37 °C applicandolo direttamente nella cavità addominale utilizzando una siringa da 1 ml.</li>
		<li>Chiudere lo strato muscoloaponeurotico utilizzando una singola sutura da corsa 6-0 non assorbibile. Chiudere la pelle addominale usando 6-0 punti di sutura separati non assorbibili (Figura 5J,K).</li>
	</ol></li>
</ol>3. Assistenza postoperatoria generale
<ol><li>Dopo aver fermato l'isoflurano, lasciare che il topo si svegli sul termoforo sotto 0,4 L/min O2 insufflato con la maschera nasale. Quando è completamente risvegliato, che può essere garantito dal completo recupero motorio, mettere il topo da solo in una gabbia in un'incubatrice a 30 °C. Lasciare il mouse nell'incubatore a 30 °C per 5 giorni (nessuna condizione specifica per gas o umidità). NOTA: La gabbia deve essere riscaldata in anticipo.</li>
	<li>Consentire il libero accesso all'acqua immediatamente dopo l'intervento chirurgico. Aggiungere integratori vitaminici, tra cui vitamine B1, B9, B12 e vitamine liposolubili (A, D, E, K), all'acqua (800 mg / 180 ml di acqua) fino alla fine del protocollo.</li>
	<li>Mantenere l'analgesia mediante iniezioni sottocutanee di buprenorfina (0,1 mg/kg) due volte al giorno dal giorno 1 al giorno 3, una volta al giorno dopo fino al giorno 5. Continuare le iniezioni sottocutanee di amoxicillina (15 mg/kg), meloxicam (1 mg/kg) e metoclopramide (1 mg/kg) una volta al giorno fino al giorno 3. Fornire iniezioni sottocutanee di ferro (0,5 mg / kg) una volta al giorno fino alla fine del protocollo.</li>
</ol>4. Misure generali ed eutanasia
<ol><li>Pesare i topi ogni giorno fino al giorno 5 postoperatorio. Quindi pesare il giorno 7 e poi settimanalmente.</li>
	<li>Per misurare l'assunzione giornaliera di cibo, posizionare un topo per gabbia. Posizionare un peso noto di una dieta solida e misurare il peso della dieta solida rimanente dopo 24 ore. Misurare l'assunzione di cibo il giorno 3, 4, 5, 7 e poi settimanalmente.</li>
	<li>Eutanasia dei topi mediante lussazione cervicale in anestesia generale (isoflurano al 5% (1 L/min) con ossigeno (1 L/min)) con iniezione sottocutanea di buprenorfina (0,1 mg/kg) dopo incisione cardiaca dell'atrio sinistro per prelievo di sangue (da 500 a 600 μL di sangue).</li>
	<li>Misurare la concentrazione di emoglobina nel sangue utilizzando un analizzatore ematologico automatico che richiede 20 μL di sangue.</li>
</ol>

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</ol>

Claire Blanchard è stata pagata da Medtronic per fornire corsi di immersione clinica.

Gli interventi bariatrici, le cui tecniche sono in continua evoluzione, sembrano essere attualmente il trattamento più efficace per l'obesità e le comorbidità metaboliche associate 3,19,20. La procedura SADI-S, descritta per la prima volta nel 20074, è una procedura promettente associata a maggiori effetti metabolici rispetto ad altri interventi chirurgici di malassorbimento. I modelli animali, in partico...

L'obesità è una situazione emergente ed endemica con prevalenza crescente, che colpisce circa 1 adulto su 20 in tutto il mondo1. La chirurgia bariatrica è diventata l'opzione di trattamento più efficace per gli adulti affetti negli ultimi anni, migliorando sia la perdita di peso che i disturbi metabolici2,3, con risultati variabili a seconda del tipo di procedura chirurgica utilizzata.
Ci sono due meccanismi principali che sono implicati negli effetti delle procedure bariatriche: restrizione che mira ad aumentare la sazietà (come nella gastrectomia della manica (SG) dove viene rimosso l'80% dello stomaco) e malassorbimento. Tra le procedure che implicano sia la restrizione che il malassorbimento, è stato proposto il bypass duodeno-ileale a anastomosi singola con gastrectomia a manica (SADI-S) come alternativa al bypass gastrico Roux-en-Y (RYGB), in cui si osserva un recupero di peso in circa il 20% dei pazienti 4,5. In questa tecnica, una gastrectomia a manica è associata a un riarrangiamento dell'intestino tenue, dividendolo in una biliare e un arto comune corto (un terzo della lunghezza totale dell'intestino tenue) (Figura 1A). Tecnicamente, il SADI-S ha il vantaggio rispetto al RYGB di richiedere una sola anastomosi, riducendo il tempo di funzionamento di circa il 30%. Inoltre, questo metodo preserva il piloro, che aiuta a ridurre il rischio di ulcera peptica e limita la perdita anastomotica. Il SADI-S è inoltre associato ad un alto tasso di miglioramento metabolico, favorendone fortemente l'utilizzo negli ultimi anni 6,7.
Poiché gli effetti metabolici sono diventati sempre più fondamentali per le procedure bariatriche, chiarire i loro meccanismi sembra cruciale. Pertanto, l'uso di modelli animali per le procedure bariatriche è della massima importanza per comprendere meglio i loro effetti metabolici e le vie cellulari e molecolari coinvolte8. Questi modelli hanno contribuito, ad esempio, a una migliore comprensione della variazione dell'assunzione di cibo dopo SG o RYGB in un ambiente controllato9 e allo studio dei flussi di glucosio o colesterolo attraverso la barriera intestinale10,11; Queste informazioni sono raramente disponibili negli studi clinici. Questa conoscenza potrebbe aiutare a definire le loro indicazioni chirurgiche ottimali. Abbiamo precedentemente descritto modelli murini di SG e RYGB12. Tuttavia, nonostante i suoi risultati promettenti nella pratica clinica, il SADI-S è stato sviluppato e descritto solo nei ratti13,14,15. Tuttavia, data la sua malleabilità genetica, il modello murino è stato utile in passato per studiare i vari effetti metabolici di tali procedure16,17,18, e un modello murino SADI-S potrebbe essere utile per valutare gli effetti di SADI-S nonostante la difficoltà tecnica.
In questo articolo, descriviamo l'adattamento della procedura SADI-S nei topi (Figura 1B) in modo riproducibile. Particolare attenzione è data alla descrizione delle cure perioperatorie.

<table><tbody><tr><td>Ago Agagani 26 G</td><td>Terumo</td><td>050101B</td><td>Ago 26 G</td></tr><tr><td>Betadine dermique&nbsp;</td><td>Pharma-gdd</td><td>3300931499787</td><td>Soluzione povidone</td></tr><tr><td>Betadine scrub</td><td>Pharma-gdd</td><td>&nbsp; 3400931499787</td><td>Soluzione Povidone</td></tr><tr><td>Microscopio binoculare</td><td>Optika Microscopes Italy</td><td>SZN-9</td><td>Stereomicroscopio binoculare</td></tr><tr><td>Buprecare</td><td>Animalcare</td><td>3760087151244</td><td>Buprenorphin</td></tr><tr><td>Castroviejo, dritto 9 cm</td><td>F.S.T</td><td>12060-02</td><td>Micro forbici</td></tr><tr><td>Castroviejo, dritto 9 cm</td><td>F.S.T</td><td>12060-02</td><td>Porta aghi</td></tr><tr><td>Cloruro di sodio Fresenius 0,9%</td><td>Fresenius Kabi&nbsp;</td><td>BE182743</td><td>NaCl 0,9%</td></tr><tr><td>Clamoxyl</td><td>Med'vet</td><td>5414736007496</td><td>Amoxicillina</td></tr><tr><td>Cotton fioc</td><td>Comed</td><td>2510805</td><td>Cotton fioc</td></tr><tr><td>Element HT5</td><td>Scilvet</td><td>Element HT5</td><td>Analizzatore ematologico automatizzato</td></tr><tr><td>Emeprid</td><td>CEVA</td><td>3411111914365</td><td>Metoclopramid</td></tr><tr><td>Extra Fine Graefe Pincipe, curvo (larghezza punta: 0,5 mm)</td><td>F.S.T</td><td>11152-10</td><td>Pinza chirurgica</td></tr><tr><td>Pinza Graefe extra fine, diritta (larghezza punta: 0,5 mm)</td><td>F.S.T</td><td>11150-10</td><td>Pinza chirurgica</td></tr><tr><td>Fercobsang</td><td>Vetoprice</td><td>QB03AE04</td><td>Ferro, multivitaminici e minerali&nbsp;</td></tr><tr><td>Forane</td><td>Baxter</td><td>1001936060</td> Pinza Graefe <td>isoflurano</td></tr><tr><td>, diritta (larghezza della punta: 0,8 mm)</td><td>F.S.T</td><td>11050-10</td><td>Pinze</td></tr><tr><td>Graphpad Prism versione 8.0</td><td>GraphPad Software, Inc.</td><td>Versione 8.0</td><td>Software per l'analisi statistica</td></tr><tr><td>Termoforo</td><td>Intellibio innovation</td><td>A-2101-00300</td><td>Termoforo</td></tr><tr><td>Incubatore</td><td>Bioconcept Tecnologie</td><td>Prodotto su richiesta</td><td>Incubatore&nbsp;</td></tr><tr><td>Illuminazione</td><td>Microscopi Optika Italia</td><td>CL-30</td><td>Illuminazione per microscopia</td></tr><tr><td>Ocrygel</td><td>Med'vet</td><td>3700454505621</td><td>Carboptol 980 NF</td></tr><tr><td>Pangen 2,5 cm x 3,5 cm</td><td>Urgovet</td><td>A02978</td><td>Impacco emostatico di collagene</td></tr><tr><td>Prolene 6/0</td><td>B.Braun</td><td>3097915</td><td>Optilene 6/0 (0,7 metrico) 75 cm 2XDR13 CV2 RCP, cordone di sutura</td></tr><tr><td>Prolene 8/0</td><td>Ethicon</td><td>8732</td><td>2 x BV175-6 MP, 3/8 Cerchio, 8 mm,&nbsp; corda di sutura</td></tr><tr><td>Forbici</td><td>F.S.T</td><td>146168-09</td><td>Forbici chirurgiche</td></tr><tr><td>Compresse sterili&nbsp;</td><td>Laboartoire Sylamed</td><td>211S05-50</td> Siringa Terumo <td>compressa sterile in tessuto non tessuto</td></tr><tr><td></td><td>Terumo</td><td>50828</td><td>Siringa da 1 ml</td></tr><tr><td>Clip emostatica in titanio</td><td>P&eacute; ters Surgical</td><td>B2180-1</td><td>Clip chirurgica</td></tr><tr><td>Vannas Wolff</td><td>F.S.T</td><td>15009-08</td><td>Micro forbici</td></tr><tr><td>Vita Rongeur</td><td>Virbac</td><td>3597133087611</td><td>Integrazione vitaminica</td></tr><tr><td>Vitaltec inox</td><td>P&eacute; ters Surgical</td><td>PB 220-EB Applicatore di</td><td>clip chirurgiche</td> medie</tr></tbody></table>

bypass duodeno-ileale a singola anastomosi con modello di gastrectomia a manica nei topi

Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass with Sleeve Gastrectomy Model in Mice

L'obesità è un grave problema di salute in tutto il mondo. Come risposta, sono emersi interventi chirurgici bariatrici per trattare l'obesità e le sue comorbidità correlate (ad esempio, diabete mellito, dislipidemia, steatoepatite non alcolica, eventi cardiovascolari e tumori) attraverso meccanismi restrittivi e malassorbitivi. Comprendere i meccanismi con cui queste procedure consentono tali miglioramenti spesso richiede la loro trasposizione negli animali, specialmente nei topi, a causa della facilità di generare animali geneticamente modificati. Recentemente, il bypass duodeno-ileale a anastomosi singola con gastrectomia a manica (SADI-S) è emerso come una procedura che utilizza sia effetti restrittivi che malassorbitivi, che viene utilizzata come alternativa al bypass gastrico in caso di obesità maggiore. Finora, questa procedura è stata associata a forti miglioramenti metabolici, che hanno portato ad un marcato aumento del suo utilizzo nella pratica clinica quotidiana. Tuttavia, i meccanismi alla base di questi effetti metabolici sono stati scarsamente studiati a causa della mancanza di modelli animali. In questo articolo, presentiamo un modello affidabile e riproducibile di SADI-S nei topi, con particolare attenzione alla gestione perioperatoria. La descrizione e l'uso di questo nuovo modello di roditori sarà utile alla comunità scientifica per comprendere meglio i cambiamenti molecolari, metabolici e strutturali indotti dal SADI-S e per definire meglio le indicazioni chirurgiche per la pratica clinica.

Curva di apprendimento La curva di apprendimento per questo modello è illustrata nella Figura 6. Si osserva una progressiva diminuzione del tempo operatorio, raggiungendo circa 60 minuti di intervento chirurgico dopo 4 settimane di allenamento intensivo (Figura 6A). Anche la sopravvivenza postoperatoria a 5 giorni è migliorata con il tempo, raggiungendo il 77% durante la pratica regolare (Figura 6B). Le cause più...

Il bypass duodeno-ileale a singola anastomosi (SADI-S) è una procedura bariatrica emergente con importanti effetti metabolici. In questo articolo, presentiamo un modello affidabile e riproducibile di SADI-S nei topi.

Bypass duodeno-ileale a singola anastomosi con modello di gastrectomia a manica nei topi

Obesity is a major health issue worldwide. As a response, bariatric surgeries have emerged to treat obesity and its related comorbidities (e.g., diabetes ...

Quindi questo protocollo è la prima descrizione della CDS nei topi, permettendoci di imitare l'intervento chirurgico eseguito nella pratica clinica e di decifrare i meccanismi metabolici cellulari e molecolari in modo più prevedibile. Questa procedura richiede meno anastomosi rispetto al bypass gastrico, quindi l'operazione viene abbreviata e il tasso di sopravvivenza viene migliorato con benefici metabolici simili al bypass gastrico. Iniziare somministrando buprenorfina, amoxicillina, metoclopromide e ferro per via sottocutanea.Dal processo xifoideo, radere i primi due terzi dell'addome del topo usando un rasoio elettrico e disinfettare l'addome del topo usando una soluzione di iodio povidone due volte. Quindi posizionare il mouse supino su un termoforo dedicato coperto da un sottopad pulito. Controllare la profondità dell'anestetizzazione utilizzando il test del pizzicamento della punta e coprire il mouse con un involucro di plastica sterilizzato.Quindi, estendere l'addome del mouse fissando il nucleo inferiore e posizionando una siringa da un millilitro o equivalente dietro la schiena del mouse. Tagliare un'apertura delle dimensioni di una finestra come futuro sito di incisione

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In questo video, viene eseguita una procedura di gastrectomia a manica verticale su un modello murino sperimentale. Questa procedura aiuta a rimuovere una parte significativa dello stomaco lungo la sua maggiore curvatura.

Gastrectomia a manica verticale murina: una procedura chirurgica per ridimensionare lo stomaco in modelli murini sperimentali

Questo video descrive una procedura di chirurgia bariatrica-Roux-en-Y. Ciò comporta il taglio del digiuno, la parte centrale dell'intestino, per generare due arti intestinali. L'arto biliare è attaccato all'ansa intestinale esistente e l'arto alimentare è attaccato allo stomaco, creando un bypass gastrico. Il bypass gastrico creato qui aiuta a ridurre l'assorbimento dei nutrienti e riduce efficacemente il peso corporeo.

Procedura di bypass gastrico Roux-en-Y: una procedura chirurgica bariatrica per la resezione gastrica in modello murino

La chirurgia bariatrica è il modo più efficace per ridurre il peso corporeo e le complicanze metaboliche mortali (diabete, obesità e dislipidemia) spesso associate all'obesità patologica. I modelli murini di chirurgia bariatrica rappresentano una risorsa unica per decifrare i meccanismi molecolari alla base degli effetti benefici di questi interventi chirurgici su diabete, ipertensione e dislipidemia.

Tecniche di sleeve gastrectomy e modificata Roux-en-Y bypass gastrico nei topi

Quanto segue descrive le prestazioni della gastrectomia verticale nei topi. Si tratta di un tipo di chirurgia di perdita di peso che comporta l'asportazione di circa il 70% dello stomaco.

Un modello murino di gastrectomia verticale

Questo protocollo è per le prestazioni dell'esclusione gastrica di un-anastomosi (OAGB) il ratto. L'operatore esegue una tasca gastrica lunga e tubolare pinzati, seguita dall'anastomosi cucita a mano. Per questo modello, l'operatore riproduce lo stesso rapporto tra biliopancreatica e arto comune in esseri umani; di conseguenza, l'arto biliopancreatic misura 35 cm.

Esclusione gastrica di un-anastomosi (OAGB) in ratti

La prevalenza del diabete e dell'obesità è in continuo aumento in tutto il mondo. I meccanismi tra diabete, obesità e mortalità e co-morbidità associati devono essere ulteriormente studiati. Qui, presentiamo un protocollo per la gastrectomia manica (SG) negli animali come modello preclinico semplice di chirurgia bariatrica.

Gastrectomia a maniche nei topi con clip chirurgiche

La chirurgia di bypass duodenale-digiunale (DJB) può migliorare il metabolismo del glucosio e ridurre la resistenza all'insulina. Qui, presentiamo un protocollo per stabilire un modello murino stabile e affidabile di DJB.

Chirurgia di bypass duodenale-digiunale in topi diabetici obesi indotti dalla dieta

Occlusione filamentosa dell'arteria cerebrale media è un modello comune per lo studio di ictus ischemico nei topi.

Corsa di modellazione in Mouse - Medio occlusione dell&#39;arteria cerebrale con il Modello Filament

Numerosi studi che utilizzano modelli di ratto di bypass gastrico sono stati recentemente condotti per scoprire i meccanismi fisiologici alla base di Roux-en-Y operazioni di bypass gastrico. Questo articolo mira a dimostrare e discutere i dettagli tecnici e sperimentale del nostro modello di ratto pubblicato bypass gastrico per capire vantaggi e limiti di questo strumento sperimentale.

Roux-en-Y operazione di bypass gastrico in Rats

Questo articolo descrive un nuovo connettore anastomotico coronarico non occlusivo in un modello di bypass coronarico (OPCAB) suino off-pump. Questo connettore coronarico facile da usare ha un potenziale intrinseco per facilitare la chirurgia OPCAB minimamente invasiva.

Valutazione di un romanzo Laser-assistita coronarica anastomosi Connector - Clip Trinity - in un suino Off-pompa bypass Modello

Scopri il bypass duodeno-ileale a singola anastomosi nei topi per studiare gli effetti metabolici della chirurgia bariatrica. Questo modello permette di analizzare i meccanismi cellulari e molecolari in modo controllato.

Bypass duodeno-ileale a singola anastomosi con modello di gastrectomia a manica nei topi

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