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Imaging intravitale dell'espressione di proteine fluorescenti nei topi con una lesione cerebrale ...
Imaging intravitale dell'espressione di proteine fluorescenti nei topi con una lesione cerebrale ...
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JoVE Journal Neuroscience
Intravital Imaging of Fluorescent Protein Expression in Mice with a Closed-Skull Traumatic Brain Injury and Cranial Window Using a Two-Photon Microscope

Imaging intravitale dell'espressione di proteine fluorescenti nei topi con una lesione cerebrale traumatica a cranio chiuso e una finestra cranica utilizzando un microscopio a due fotoni

Full Text
1,615 Views
08:25 min
April 21, 2023

DOI: 10.3791/64701-v

Jianjun Zhong1,2, Georgia Gunner3, Nils Henninger1, Dorothy P. Schafer3, Daryl A. Bosco1

1Department of Neurology,University of Massachusetts Chan Medical School, 2Department of Neurosurgery,The First Affiliated Hospital of Chongqing Medical University, 3Department of Neurobiology,University of Massachusetts Chan Medical School

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study demonstrates a method for visualizing the neuronal response to mechanical stress following traumatic brain injury (TBI) in a live mouse model. It details the implantation of a cranial window to facilitate intravital imaging of EGFP-expressing neurons using two-photon microscopy, enabling tracking of the neuronal response over time.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Traumatic Brain Injury
  • Imaging Techniques

Background

  • Traumatic brain injury (TBI) leads to significant neuronal changes.
  • Monitoring neuronal responses during acute and chronic phases is crucial for understanding TBI effects.
  • Two-photon microscopy allows for deep imaging in live tissues.
  • EGFP expression helps in tracking specific neuronal populations.

Purpose of Study

  • To visualize and quantify neuronal responses to mechanical stress in a live mouse model following TBI.
  • To provide insights into the effects of TBI on neuronal function over time.
  • To establish a protocol for changing gene targets to study various proteins in different cell types.

Methods Used

  • Two-photon microscopy for imaging neuronal responses.
  • Use of mice for in vivo experimentation with induced traumatic brain injury.
  • Detailed surgical protocol for cranial window implantation to provide accessibility for imaging.
  • Stable positioning and preparation techniques were emphasized to minimize damage during procedures.

Main Results

  • The technique allows for real-time monitoring of neuronal behavior following TBI.
  • Responses observed in EGFP-expressing neurons illustrate alterations in excitability following mechanical injury.
  • Data showing continuity in responses both acutely and chronically demonstrates the lasting effects of TBI on neuronal integrity.

Conclusions

  • This study establishes a valuable tool for exploring the dynamic responses of neurons to traumatic injury in vivo.
  • It enables investigation into specific molecular changes related to TBI over time, potentially leading to better understanding and treatment strategies.
  • The findings have implications for neuronal plasticity and recovery mechanisms following injury.

Frequently Asked Questions

What advantages does the cranial window provide?
The cranial window allows for non-invasive imaging of neuronal activity in real-time, enabling continuous observation of changes after traumatic brain injury.
How is traumatic brain injury induced in the model?
TBI is induced by a specific impact at marked coordinates on the mouse's skull, utilizing a device that delivers a controlled mechanical force.
What imaging outcomes can be expected?
The study allows monitoring of the neuronal response, specifically focusing on changes in excitability and EGFP expression levels after injury.
Can this method be adapted for other proteins?
Yes, the protocol can be adjusted by changing the gene of interest and the viral promoter to study different proteins in various neuronal types.
What are some key limitations of this approach?
Limitations may include the need for precise surgical techniques and potential variability in injury response based on individual animal factors.

Questo studio dimostra la somministrazione di una lesione cerebrale traumatica ripetitiva ai topi e l'impianto simultaneo di una finestra cranica per il successivo imaging intravitale di un EGFP espresso da neuroni utilizzando la microscopia a due fotoni.

Il nostro protocollo fornisce un modo per visualizzare la risposta neuronale allo stress meccanico in un topo vivo, che può fornire prove dirette di come la lesione cerebrale traumatica influisca sul cervello. Questa tecnica è in grado di monitorare la proteina bersaglio nella stessa posizione cerebrale nello stesso animale sia per la fase acuta che per quella cronica dopo una lesione cerebrale traumatica. Il gene di interesse e il promotore del virus possono essere modificati di conseguenza per studiare altre proteine nei tipi di cellule specifiche del cervello.

Per iniziare, applicare un unguento oftalmico sugli occhi del topo anestetizzato. Rimuovi i capelli dalla sommità della testa tagliandoli con le normali forbici. Dopo aver stabilito un'incisione della linea mediana lunga da 12 a 15 millimetri, asportare la pelle sugli emisferi sinistro e destro del cranio usando forbici a molla a punta curva.

Una volta che il cranio è esposto, rimuovere il periostio strofinandolo delicatamente con l'applicatore sterile con punta in cotone e sciacquandolo con soluzione fisiologica sterile. Una volta che l'area del cranio è asciutta, segnare il sito di impatto della lesione cerebrale traumatica, o TBI, alle coordinate 2,5 millimetri posteriori al bregma e due millimetri laterali dalla sutura sagittale a destra. Rimuovere rapidamente il mouse dal telaio stereotassico e posizionare la testa sul cuscino tampone sotto il dispositivo TBI.

Allineare la punta del dispositivo d'urto con il punto d'impatto contrassegnato. Sollevare la colonna metallica tirando la corda di nylon legata a 15 centimetri sopra la testa del topo, quindi rilasciarla, lasciando che il peso cada liberamente sull'asta del trasduttore, che è a contatto con la parte superiore del cranio nel sito del trauma cranico. Posizionare la testa del topo anestetizzato sul telaio stereotassico tenuto sotto il microscopio operatorio.

Forare delicatamente e lentamente la superficie del cranio utilizzando una punta in metallo duro FG4 a bassa velocità del rotore per rimuovere il periostio rimanente e creare una superficie cranica ruvida in modo tale che il cemento dentale si leghi saldamente al cranio. Usa la soluzione salina per lavare e rimuovere la polvere ossea dalla superficie del cranio. Per separare i muscoli laterali dal cranio, a circa cinque millimetri posteriormente all'occhio, dove si trova la sutura che collega il cranio parietale e temporale, inserire delicatamente le punte fini chiuse e muovere delicatamente le punte chiuse in direzione posteriore fino alla sutura lambdoide.

Separare i muscoli laterali sul lato in cui si verificherà l'impianto della finestra cranica. Lavare via i detriti dal sito chirurgico con soluzione fisiologica e asciugare l'area con una garza. Per impiantare il perno della testa, segnare il punto centrale 2,5 millimetri posteriormente al bregma e 1,5 millimetri dalla sutura sagittale sull'emisfero destro utilizzando un pennarello e un calibro chirurgico.

Quindi traccia la circonferenza della craniotomia sul cranio pulito e asciutto. Allentare la barra auricolare e ruotare la testa, in modo che il piano della craniotomia sia perfettamente orizzontale, quindi serrare nuovamente la barra auricolare. Usa il bastoncino di legno di un applicatore con punta di cotone per aggiungere due piccole gocce di supercolla sul bordo anteriore e posteriore del montante della testa.

Posizionare il perno della testa in titanio al centro della craniotomia e regolarlo rapidamente per farlo riposare all'interno dello stesso piano in cui verrà impiantata la finestra cranica. Applicare una leggera pressione fino a quando la supercolla non si è asciugata, il che di solito richiede circa 30 secondi. Preparare il cemento dentale in un piatto di ceramica preraffreddato mescolando accuratamente 300 milligrammi di polvere di cemento, sei gocce di liquido QuickBase e una goccia di catalizzatore.

Applicare rapidamente una generosa quantità di miscela di cemento dentale sul perimetro esterno della circonferenza tracciata e coprire qualsiasi superficie ossea esposta. Tuttavia, non coprire il sito della craniotomia. Rilasciare la barra auricolare e fissare il montante della testa al telaio metallico per assicurarsi che la testa sia stabile per una perforazione precisa lungo la circonferenza della craniotomia contrassegnata.

Per eseguire la craniotomia, utilizzare un calibro chirurgico per verificare il diametro del cerchio contrassegnato come dimostrato in precedenza e regolare se necessario, in modo che la finestra cranica si adatti perfettamente all'interno della craniotomia. Utilizzando un trapano dentale elettrico, incidere e assottigliare il cranio lungo l'esterno del cerchio contrassegnato utilizzando prima una punta in metallo duro FG4, che crea una traccia all'interno della quale assottigliare il cranio. Irrigare l'area con soluzione fisiologica per lavare via la polvere ossea.

Continuare ad assottigliare il cranio usando una punta in metallo duro FG 1/4 fino a quando il cranio non è sottile come carta e trasparente. Periodicamente, interrompere la perforazione e irrigare nuovamente l'intera area con soluzione fisiologica sterile per ridurre il riscaldamento del trapano e per lavare via la polvere ossea. Completare l'assottigliamento del cranio utilizzando una punta in metallo duro EF4 e continuare ad assottigliare e perforare il resto del cranio lungo la pista.

Inserire una pinza a punta fine da 0,5 millimetri attraverso il punto incrinato e sollevare delicatamente il lembo osseo verso l'alto senza intaccare il cervello sottostante. Dopo aver rimosso il lembo osseo, irrigare l'area craniotomica con soluzione fisiologica. Utilizzando la pinza chirurgica a punta curva, rimuovere delicatamente la materia aracnoidea visibile.

Utilizzare la pinza chirurgica a punta diritta per sollevare la finestra di vetro sterile con il vetrino di copertura da tre millimetri rivolto verso il basso. Posizionare e regolare la finestra di vetro sopra il sito della craniotomia per assicurarsi che la finestra possa adattarsi perfettamente al bordo della craniotomia. Il vetrino coprioggetto da cinque millimetri è in alto.

Preparare il cemento dentale come dimostrato in precedenza e attendere circa sei minuti fino a quando il cemento diventa pastoso e denso. In attesa che il cemento diventi pastoso e denso, applicare un'adeguata pressione alla finestra attraverso un manipolatore stereotassico per verificare che il cranio possa entrare in contatto sicuro e stretto con la finestra di vetro. Usa un pennello applicatore di precisione regolabile per aggiungere una piccola quantità di cemento lungo il bordo della finestra per sigillare la finestra di vetro con il cranio.

Attendere circa 10 minuti per lasciare asciugare completamente il cemento, quindi rilasciare delicatamente e rimuovere il manipolatore sopra la finestra. Completare tagliando il cemento dentale utilizzando il trapano dentale con una punta in metallo duro FG4 se il cemento in eccesso copre la finestra. A circa quattro ore dall'intervento chirurgico, è stato eseguito l'imaging a due fotoni, dove a livello superficiale la vascolarizzazione appariva nera, e a livello profondo di circa 400 micrometri, l'espressione della proteina EGFP era diffusamente distribuita in tutto il corpo cellulare.

A una settimana e quattro mesi dopo il trauma cranico, il modello vascolare osservato al punto del giorno zero è stato utilizzato come riferimento per localizzare la stessa regione di imaging. Il modello vascolare è simile a quello del giorno zero. Allo stesso modo, l'espressione di EGFP è stata rilevata in tutto il corpo cellulare.

L'intensità della fluorescenza al giorno zero e a quattro mesi era simile sia a livello superficiale che a livello più profondo. Tuttavia, l'intensità della fluorescenza a una settimana era inferiore a quella del giorno zero e a quattro mesi, probabilmente a causa della repressione traslazionale riportata per altri modelli di trauma cranico. È fondamentale prestare la massima attenzione quando si esegue la fase di craniotomia per evitare di danneggiare il tessuto cerebrale.

Non inserire la punta del trapano nel cervello. Utilizzando questa tecnica, i ricercatori possono visualizzare diverse proteine di interesse nella stessa cellula longitudinalmente attraverso diverse fasi post-trauma cranico, fornendo informazioni sulla localizzazione, l'espressione e la solubilità di quella proteina nel cervello dei mammiferi dopo un trauma.

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Imaging intravitale Espressione di proteine fluorescenti Topi Lesione cerebrale traumatica a cranio chiuso Finestra cranica Microscopio a due fotoni Proteina di interesse Stimuli esogeni Iniezione intracranica Virus adeno-associato (AAV) Proteina fluorescente verde potenziata (EGFP) Promotore neuronale specifico Dispositivo di caduta di peso Copricapo in metallo Finestra cranica di vetro Espressione e localizzazione cellulare Visualizzazione longitudinale

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