Name: Modello animale pediatrico di rianimazione cardiopolmonare extracorporea dopo arresto circolatorio prolungato (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-05-26T12:55:00.000+00:00
Duration: 4 min 55 s
Description: Scopri un modello neonatale suino di bypass cardiopolmonare con arresto cardiaco per studiare danni cerebrali post-chirurgia pediatrica. La cannulazione periferica garantisce un tasso di successo del 92% e valutazioni affidabili.

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Questo progetto ha ricevuto finanziamenti dal programma di ricerca e innovazione Horizon 2020 dell'Unione Europea nell'ambito dell'accordo di sovvenzione n. 101017113, dall'Instituto de Salud Carlos III (PI20/00298), da Beca Carmen de Torres (Fundació Sant Joan de Déu) e dal Vanderbilt Medical Scholars Program. Ringraziamo tutto lo staff del CMCiB, tra cui Jordi Grifols, María del Mar Arevalo, Juan Ricardo Gonzalez, Sara Capdevila, Josep Puig e Gemma Cristina Monte Rubi). Ringraziamo anche Abril Culell Camprubí e il Dr. Sergi Cesar Díaz per la loro assistenza nei disegni anatomici.

La presente procedura è stata approvata dal Comitato Etico per la Sperimentazione Animale (CEEA) del Centro di Medicina Comparata e Bioimmagine della Catalogna (CEEA-CMCiB). Il governo della Catalogna ha anche autorizzato il protocollo sperimentale (n. 11652), numero di identificazione del file FUE-2022-02381434 e ID QBXQ3RY3J. Professionisti esperti, compresi veterinari certificati che forniscono supervisione e assistenza, hanno eseguito tutti gli esperimenti. Per il presente studio sono stati utilizzati suinetti (Sus scrofa domestica), di 4-6 giorni, del peso di 2,5-3,5 kg. Si è cercato di bilanciare la distribuzione di genere per evitare pregiudizi correlati.
1. Sedazione, intubazione e accesso
<ol><li>Iniziare la sedazione e l'analgesia con ketamina intramuscolare (20 mg/kg), dexmedetomidina (0,02 mg/kg) e midazolam (0,3 mg/kg). Una volta che l'animale è profondamente sedato (5 minuti dopo la somministrazione della premedicazione), ossigenarlo con il 100% di O2 tramite una maschera per il muso (2 L/min). Successivamente, indurre l'anestesia con propofol EV (0,5 mg/kg) (vedi Tabella dei materiali).</li>
	<li>Posizionare il suinetto in posizione sdraiata dorsale. Eseguire l'intubazione orotracheale utilizzando un tubo endotracheale cuffiato da 2,5 mm (vedere la Tabella dei materiali), utilizzando la visualizzazione diretta della trachea.<ol><li>Confermare il corretto posizionamento del tubo endotracheale tramite auscultazione diretta delle basi polmonari.</li>
	</ol></li>
	<li>Impostare la ventilazione meccanica in modo che fornisca una frequenza respiratoria di 30 respiri al minuto, un volume corrente di 8-12 mL/kg e una pressione di fine espirazione di 4 cmH2O.</li>
	<li>Monitorare continuamente la profondità dell'anestesia durante il protocollo tramite frequenza cardiaca (FC), pressione sanguigna (BP) e saturazione di ossigeno (spO2). Regolare i parametri di ventilazione e sedazione secondo necessità. NOTA: I valori ideali per i parametri vitali sono una HR di 130-160 bpm, una pressione arteriosa di 75-95/60-70 e una spO2 > 85.</li>
	<li>Mantenere la sedazione con sevoflurano all'1,5% e fentanil (25-200 μg/kg/min) (vedi Tabella dei materiali).</li>
	<li>Utilizzare la visualizzazione diretta per posizionare i cateteri nell'arteria femorale (3 Fr) e nella vena (4 Fr) (vedi Tabella dei materiali). NOTA: Questi cateteri verranno utilizzati per la somministrazione di farmaci e l'acquisizione di campioni. Pertanto, è importante mantenere l'accesso.</li>
</ol>2. Configurazione e adescamento del circuito CPB
<ol><li>Personalizza e configura il circuito CPB seguendo i passaggi seguenti (Figura 3):<ol><li>Accorciare il più possibile il tubo, lasciando comunque una distanza sufficiente per raggiungere l'animale dalla macchina.</li>
		<li>Creare e collegare un ponte di tubi che colleghi il deflusso dall'ossigenatore a membrana (vedi Tabella dei materiali) all'afflusso nella pompa. NOTA: Il ponte è fondamentale per consentire al sangue di continuare a circolare attraverso la macchina durante l'esecuzione delle CA dell'animale.</li>
	</ol></li>
	<li>Una volta sigillati tutti i punti di connessione, innescare il circuito con 300 mL di una soluzione eparina-salina (1.000 UI di eparina miscelata in 1 L di soluzione fisiologica) e 300 mL di sangue fresco di suino donato, seguiti da 3,5 mEq di bicarbonato di sodio, 350 UI di eparina e 450 mg di gluconato di calcio (vedi Tabella dei materiali).<ol><li>"Spazzare" il circuito facendo scorrere la miscela di sangue, eparina-soluzione salina, bicarbonato di sodio e gluconato di calcio attraverso l'intero circuito per 2 minuti a una velocità di 0,3 L/min.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Chirurgia e iniziazione del CPB
NOTA: La Figura 1 supplementare illustra i materiali chirurgici necessari per il posizionamento della cannula.
<ol><li>Esporre la vena giugulare interna sinistra e l'arteria carotide destra per prepararsi all'incannulamento (Figura 4).</li>
	<li>Per l'incannulamento, utilizzare la tecnica di Seldinger o "over-the-wire"21.<ol><li>Innanzitutto, inserire un ago catetere nella vena giugulare interna sinistra. Una volta visualizzato un lampo di sangue, inserire con cautela un filo guida nel vaso e rimuovere l'ago, assicurandosi che il filo rimanga in posizione.</li>
		<li>Infilare un dilatatore sul filo e nel recipiente, quindi rimuovere il dilatatore.</li>
		<li>Con il filo ancora in posizione, infilare una cannula venosa da 8 Fr e farla avanzare lentamente di ~4 cm nel vaso. Rimuovere con cautela il filo, assicurandosi che la cannula rimanga in posizione.</li>
		<li>Ripetere la tecnica del filo di Seldinger con dilatazione per posizionare una cannula arteriosa pediatrica da 6 Fr (vedi Tabella dei materiali) nell'arteria carotide destra.</li>
		<li>Al momento dell'incannulamento arterioso, somministrare un bolo di eparina per via endovenosa (50 UI/kg) attraverso la cannula arteriosa appena posizionata.</li>
	</ol></li>
	<li>Una volta ottenuto l'accesso, fissare saldamente entrambe le cannule all'animale utilizzando suture e nastro riassorbibile 3-0 per evitare la rimozione involontaria (Figura 5).</li>
	<li>Collegare le cannule al circuito CPB, assicurandosi che la soluzione fisiologica con eparina venga aggiunta ai punti di connessione per evitare l'ingresso di aria nel circuito.</li>
	<li>Impostare il flusso iniziale a 80-85 mL/kg/min e aumentarlo lentamente fino a una portata finale di 150 mL/kg/min. NOTA: L'animale può rimanere sul CPB per tutto il tempo richiesto dagli esperimenti. Uno schema dei passaggi 1-3 è illustrato nella Figura 2 supplementare.</li>
</ol>4. Arresto circolatorio e cardiaco (CA)
<ol><li>Per indurre la CA, somministrare 9 mEq di KCl. Utilizzare i parametri vitali per valutare l'arresto completo e confermare con l'ecocardiografia. Somministrare KCl aggiuntivo se necessario.</li>
	<li>Una volta che il cuore si è fermato, isolare l'animale dal circuito per indurre l'arresto circolatorio.</li>
	<li>Mantenere il flusso del circuito CPB utilizzando il ponte precedentemente descritto (passaggio 3.5) che circola a 1.500 giri/min.</li>
</ol>5. Rianimazione cardiopolmonare extracorporea (eCPR)
<ol><li>Una volta raggiunta la condizione di CA appropriata (0 min, 30 min o 60 min), iniziare la rianimazione eCPR.</li>
	<li>Ricollegare il suinetto al circuito CPB.</li>
	<li>Somministrare 3 mL di gluconato di calcio (2,25 mmol/10 mL, diluito 1:2) e 6 mL di bicarbonato di sodio (1 M, diluito 1:2) attraverso l'accesso arterioso periferico, aggiungendo dosi se necessario. NOTA: Se necessario, possono essere utilizzati cardioversione o farmaci inotropi (adrenalina o dopamina).</li>
</ol>6. Assistenza postoperatoria
<ol><li>Una volta rianimato, monitorare i parametri vitali per 15 minuti per garantire la stabilità. NOTA: I parametri ideali nel periodo dell'unità di terapia intensiva sono: HR di 100-150 bpm, BP di 75-95/60-70 e spO2 > 85.</li>
	<li>Trasferire gli animali per la risonanza magnetica (MRI). NOTA: Dopo l'imaging, gli animali non si sono mai ripresi e sono stati soppressi mentre erano sotto anestesia tramite somministrazione endovenosa di pentobarbital sodico per ottenere campioni di cervello per l'analisi istologica. Una cronologia della parte sperimentale della procedura, inclusa la strategia di raccolta del campione, può essere visualizzata nella Figura 3 supplementare.</li>
</ol>

Rianimazione cardiopolmonare extracorporea in modello animale dopo arresto cardiaco

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<li>Tirilomis, T., Paz, D., Nolte, L., Schoendube, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+aortic+cannulation+for+cardiopulmonary+bypass+in+neonatal+piglet+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiac+Surgery%22%5BJournal%5D)">Modified aortic cannulation for cardiopulmonary bypass in neonatal piglet model.</a> Journal of Cardiac Surgery. 23 (5), 503-504 (2008).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Il bypass cardiopolmonare è comunemente usato durante la cardiochirurgia per adulti, bambini e neonati. Si basa su un circuito extracorporeo motorizzato e un ossigenatore a membrana che lavorano insieme per ossigenare il sangue e fornire stabilizzazione polmonare e cardiaca. Studi precedenti hanno dimostrato che il CPB può avere un impatto negativo su molti sistemi di organi (renale, cerebrale, polmonare, cardiaco, gastrointestinale) sia in pazienti malati che precedentemente sani 22,23,24.</...

La cardiopatia congenita (CHD) è la malformazione congenita più diffusa, con circa un milione di nascite colpite in tutto il mondo ogni anno1. Sebbene i moderni progressi nella chirurgia cardiotoracica (STC) e nel trattamento in terapia intensiva abbiano migliorato i tassi di mortalità, le comorbidità rimangono estremamente comuni 2,3,4,5. Anomalie dello sviluppo neurologico, inclusi disturbi cognitivi e motori e difficoltà di apprendimento, sono riportate in circa il 25%-50% di questi pazienti 6,7,8. È stato dimostrato che la chirurgia durante i primi giorni di vita, in particolare quelli che richiedono l'arresto circolatorio e cardiaco (CA), aumenta la morbilità9. Le alterazioni emodinamiche durante l'intervento chirurgico possono avere un effetto importante sul cervello neonatale vulnerabile in via di sviluppo. I modelli sperimentali sono essenziali per comprendere meglio l'origine di queste anomalie e studiare strategie neuroprotettive per migliorare la prognosi di questi pazienti.
L'uso di modelli animali per studiare questa popolazione è stato ampiamente documentato 5,10,11,12,13,14. In particolare, i suinetti offrono un'opzione eccellente, date le approssimazioni ravvicinate nell'anatomia cardiaca (Figura 1), nel genoma e nella fisiologia, nonché le loro dimensioni relativamente maggiori rispetto ad altri modelli animali15 (Figura 2). L'uso di modelli di suinetti per studiare gli effetti sia del bypass cardiopolmonare (CPB) che del CA è stato precedentemente descritto. Questi modelli animali sperimentali sono utili per studiare i cambiamenti emodinamici e le complicanze associate agli organi dei tessuti terminali 14,16,17,18,19,20. Questi modelli sono stati sviluppati per consentire ai ricercatori di studiare le condizioni umane in un ambiente controllato, con flessibilità per una varietà di condizioni sperimentali. La maggior parte degli studi riporta l'uso dell'incannulamento centrale, una tecnica che richiede competenze chirurgiche avanzate, richiede un maggiore utilizzo delle risorse e rende difficile garantire la sopravvivenza a lungo termine. Sebbene studi precedenti abbiano documentato l'uso di suinetti nello studio del CPB12,15, pochi hanno proposto la tecnica dell'incannulamento periferico.
Questa nuova tecnica di incannulamento periferico è più semplice, meno aggressiva e più fattibile rispetto ad altri studi pubblicati19. Inoltre, la convalida di questa tecnica nei neonati e nei piccoli animali è nuova e dovrebbe essere presa in considerazione per l'uso da parte di tutti i ricercatori interessati a utilizzare un modello animale per studiare la CHD e le sue comorbidità associate. È particolarmente appropriato per le persone che hanno accesso a un laboratorio dotato di forniture, risorse e personale esperto nella conduzione di esperimenti su modelli animali.
In sintesi, l'obiettivo principale di questo studio è quello di descrivere e convalidare un modello di suinetto neonatale di CPB con CA. Il protocollo mira a studiare il grave danno cerebrale e altre possibili complicanze della chirurgia CPB in un contesto controllato con condizioni sperimentali variabili. Questo metodo fornisce un modello generalizzabile, affidabile e di alta qualità, che può essere utilizzato per un'ampia varietà di protocolli sperimentali.

<table><tbody><tr><td>1,5% sevofluorane</td><td>Zoetis</td><td>20070289</td><td></td></tr><tr><td>tubo endotracheale da 2,5 mm</td><td>Henry Schein</td><td>988-1782</td><td></td></tr><tr><td>Catetere da 3 Fr per accesso arterioso periferico</td><td>Prodimed</td><td>3872.1</td><td></td></tr><tr><td>Catetere da 4 Fr per accesso venoso periferico</td><td>Prodimed</td><td>3872.13</td><td></td></tr><tr><td>6 Cannula arteriosa pediatrica ECMO francese&nbsp;</td><td>Medtronic&nbsp;</td><td>77206</td><td></td></tr><tr><td>8 Cannula venosa pediatrica ECMO francese&nbsp;</td><td>Medtronic&nbsp;</td><td>68112</td><td></td></tr><tr><td>Adrenaline</td><td>B Braun</td><td>469801-1119</td><td></td></tr><tr><td>Pinze Adson</td><td>Strumenti Allgaier</td><td>08-030-130</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita</td></tr><tr><td>BP cuff&nbsp;</td><td>Mindray</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfine (0,01 mg/kg)</td><td>Richter Pharma</td><td>#9004114000537</td><td></td></tr><tr><td>Gluconato di calcio (2,25 mmol/10 mL)</td><td>B Braun</td><td>570-12606194-1119</td><td></td></tr><tr><td>Dexmedetomidina (0,5-2,0 &micro; g/kg/min)</td><td>Orion farma</td><td>GTN 064321000017253</td><td></td></tr><tr><td>Dolethol</td><td>vetoquinol</td><td>#3605870004904</td><td></td></tr><tr><td>Dopamina</td><td>hikma</td><td>A044098010</td><td></td></tr><tr><td>Fentanyl (25-200 &; micro; g/kg/min)</td><td>Kern Pharma</td><td>756650.2H</td><td></td></tr><tr><td>Sangue di maiale da donatore fresco Tipo O</td><td>Qualsiasi&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scambiatore di calore</td><td>Maquet Gmbh & Co</td><td>MCP70107.2130</td><td></td></tr><tr><td>Eparina (1350 UI)</td><td>ROVI</td><td>641641.1</td><td></td></tr><tr><td>Divaricatore Irwin</td><td>Aesculap</td><td>BV104R</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita Ketamina</td></tr><tr><td>(20 mg/kg)</td><td>Richter Pharma</td><td>#9004114000452</td><td></td></tr><tr><td>Lubrificante</td><td>Qualsiasi lubrificante</td><td></td><td></td>orotracheale</tr><tr><td>Midazolam (0,3 mg/kg)</td><td>Serra Pamies</td><td>619627.4</td><td></td></tr><tr><td>Pinze per zanzare</td><td>Aesculap</td><td>BH109R</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita</td></tr><tr><td>Pinze ad ago</td><td>Aesculap</td><td>BM016R</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita</td></tr><tr><td>Normale&nbsp; soluzione salina (0,9%)</td><td>B Braun Fisiovet</td><td>5/469827/0610</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita</td></tr><tr><td>Morsetti in plastica per tubi</td><td>Achim Schulz-Lauterbach</td><td>DBGM</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita Cloruro</td></tr><tr><td>di potassio (9 mEq)</td><td>B Braun</td><td>3545156</td><td></td></tr><tr><td>Propofol (0,5 mg/kg)</td><td>Zoetis</td><td>579742.7</td><td></td></tr><tr><td>Ossigenatore a membrana Quadrox&nbsp;</td><td>Maquet Gmbh & Co</td><td>BE-HMOSD 300000</td><td></td></tr><tr><td>Termometro rettale</td><td>Qualsiasi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>console RotaFlow Sistema ECMO&nbsp;</td><td>Maquet Gmbh & Co</td><td>MCP00703177</td><td>Sistema ECMO neonatale</td></tr><tr><td>Bisturi</td><td>Aesculap</td><td>BB074R</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita</td></tr><tr><td>Bicarbonato di sodio (1 M)</td><td>Fresenius Kabi</td><td>634477.4 OH</td><td></td></tr><tr><td>Forbici chirurgiche</td><td>Talmed Inox</td><td>112</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita Sutura</td></tr><tr><td>(3/0 poli assorbibile)</td><td>B Braun Novosyn (R)</td><td>0068030N1</td><td>Qualsiasi marca può essere sostituita</td></tr></tbody></table>

modello animale pediatrico di rianimazione cardiopolmonare extracorporea dopo arresto circolatorio prolungato

Pediatric Animal Model of Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation After Prolonged Circulatory Arrest

La cardiopatia congenita (CHD) è la malformazione congenita più diffusa, con circa un milione di nascite colpite in tutto il mondo ogni anno. Un'indagine completa su questa malattia richiede modelli animali appropriati e convalidati. I suinetti sono comunemente usati per la ricerca traslazionale a causa della loro analoga anatomia e fisiologia. Questo lavoro mirava a descrivere e convalidare un modello neonatale di suinetto di bypass cardiopolmonare (CPB) con arresto circolatorio e cardiaco (CA) come strumento per studiare gravi danni cerebrali e altre complicanze della cardiochirurgia. Oltre a includere un elenco di materiali, questo lavoro fornisce una tabella di marcia per altri ricercatori per pianificare ed eseguire questo protocollo. Dopo che professionisti esperti hanno eseguito diverse prove, i risultati rappresentativi del modello hanno dimostrato un tasso di successo del 92%, con fallimenti attribuiti alle piccole dimensioni dei suinetti e alla variante dell'anatomia dei vasi. Inoltre, il modello ha permesso ai professionisti di scegliere tra un'ampia varietà di condizioni sperimentali, tra cui tempi variabili in CA, alterazioni della temperatura e interventi farmacologici. In sintesi, questo metodo utilizza materiali prontamente disponibili nella maggior parte delle strutture ospedaliere, è affidabile e riproducibile e può essere ampiamente impiegato per migliorare la ricerca traslazionale nei bambini sottoposti a cardiochirurgia.

Durante un periodo di 6 mesi, il protocollo completo è stato eseguito 12 volte da un team interdisciplinare di medici di terapia intensiva pediatrica, cardiologi pediatrici, veterinari e tecnici (Figura 2 e Figura 3 supplementare).
La Figura 1 e la Figura 2 dimostrano l'anatomia prevista degli animali utilizzati in questo protocollo. I suinetti inclusi avevano in media 4,8 giorni (4-6 giorni) e pesava...

Questo protocollo descrive un modello suino neonatale di bypass cardiopolmonare (CPB), con arresto circolatorio e cardiaco come strumento per studiare il grave danno cerebrale e altre complicanze secondarie al CPB.

Modello animale pediatrico di rianimazione cardiopolmonare extracorporea dopo arresto circolatorio prolungato

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive ...

I tassi di mortalità per i bambini con difetti cardiaci congeniti sono migliorati significativamente negli ultimi anni grazie ai miglioramenti in cardiochirurgia. Tuttavia, le comorbidità rimangono estremamente comuni e questo è l'obiettivo del nostro laboratorio. Il nostro obiettivo è indagare su queste comorbidità, scoprire le cause sottostanti e sviluppare misure preventive.In questo momento, stiamo studiando le anomalie neurologiche che si sviluppano dopo la cardiochirurgia. Questo protocollo offre un modello animale fattibile e riproducibile per simulare la cardiochirurgia pediatrica. Quindi, con ciò, i ricercatori possono usarlo come base per testare molte condizioni sperimentali diverse e un'ampia varietà di altre ipotesi.La tecnica di incannulamento periferico per il bypass cardiopolmonare suino nel nostro modello è pratica ed economica. Inoltre, consente un modo più affidabile per valutare gli esiti postoperatori rispetto alla tradizionale tecnica di incannulamento centrale. La flessibilità del nostro modello incoraggia il lavoro futuro negli studi sulle cardiopatie congenite e sulle comorbidità.Ad esempio, il nostro laboratorio sta attualmente pianificando di espandere qu

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Un modello potente per perioperatoria e critica lesioni legate ai reni per acuti è presentato. Utilizzando tutto il corpo ipoperfusione indotta da arresto cardiaco è possibile replicare quasi alterazioni istologiche e funzionali del clinico AKI.

Normotermico arresto cardiaco e rianimazione cardiopolmonare: un modello murino di ischemia-riperfusione

Questo articolo descrive un modello di ratto di fibrillazione ventricolare indotta elettricamente e rianimazione mediante compressione toracica, ventilazione e somministrazione di scosse elettriche che simula un episodio di arresto cardiaco improvviso e rianimazione cardiopolmonare convenzionale. Il modello consente di raccogliere informazioni sulla fisiopatologia dell'arresto cardiaco e di esplorare nuove strategie di rianimazione.

Un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e Rianimazione dal convenzionale chiuso petto Tecnica

Questo articolo descrive come eseguire il bypass cardiopolmonare in topi. Questo modello di romanzo faciliterà l'indagine dei meccanismi molecolari coinvolti nel danno dell'organo.

Esclusione cardiopolmonare in un modello murino: un nuovo approccio

Qui, presentiamo un protocollo per descrivere un modello di recupero semplice bypass cardiopolmonare senza trasfusione o agenti inotropi in un ratto. Questo modello permette lo studio di lungo termine le conseguenze dell'esclusione cardiopolmonare multiple-organo.

Un modello di esclusione cardiopolmonare di recupero senza trasfusione o agenti inotropi in ratti

Qui, presentiamo un protocollo per la produzione di cardiomiopatia tachicardia-indotta in maiali. Questo modello rappresenta un modo potente per studiare l'emodinamica dell'insufficienza cardiaca cronica progressiva e gli effetti del trattamento applicato.

Cardiomiopatia tachicardia-indotta come un modello di insufficienza cardiaca cronica in maiali

Questo protocollo mostra un approccio semplice e flessibile per la valutazione di nuovi agenti di condizionamento o strategie per aumentare la fattibilità della donazione cardiaca dopo la morte circolatoria.

Modello preclinico di donazione cardiaca dopo la morte circolatoria

La rianimazione cardiopolmonare e la defibrillazione sono le uniche opzioni terapeutiche efficaci durante l'arresto cardiaco causato dalla fibrillazione ventricolare. Questo modello presenta un regime standardizzato per indurre, valutare e trattare questo stato fisiologico in un modello di porcellana, fornendo così un approccio clinico con varie opportunità per la raccolta e l'analisi dei dati.

Modello standardizzato di fibrillazione ventricolare e supporto avanzato per la vita cardiaca in suina

Il protocollo descrive un modello di donazione di animali di grandi dimensioni (suini) dopo morte circolatoria, seguito da perfusione regionale normotermica toracoaddominale che simula da vicino lo scenario clinico nel trapianto di cuore e ha il potenziale per facilitare studi e strategie terapeutiche.

Modello di donazione su animali di grandi dimensioni dopo morte circolatoria e perfusione regionale normothermica per la valutazione cardiaca

Questo modello di suinetto prevede strumentazione chirurgica, asfissia fino all'arresto cardiaco, rianimazione e osservazione post-rianimazione. Il modello consente il campionamento multiplo per animale e, utilizzando la pressione arteriosa invasiva continua, l'ECG e il monitoraggio non invasivo della gittata cardiaca, fornisce conoscenze sull'emodinamica e sulla fisiopatologia cardiaca nell'asfissia perinatale e nella rianimazione cardiopolmonare neonatale.

Un modello di asfissia perinatale da maialino per studiare la lesione cardiaca e l'emodinamica dopo l'arresto cardiaco, la rianimazione e il ritorno della circolazione spontanea

Questo protocollo dimostra l'uso di un cardioverter-defibrillatore (ICD) impiantabile per indurre in modo affidabile aritmie ventricolari, eseguire cardioversione interna e ottenere registrazioni ECG intracardiache in un modello suino.

Modello di arresto cardiaco suino con defibrillatore impiantabile

Scopri un modello neonatale suino di bypass cardiopolmonare con arresto cardiaco per studiare danni cerebrali post-chirurgia pediatrica. La cannulazione periferica garantisce un tasso di successo del 92% e valutazioni affidabili.

Modello animale pediatrico di rianimazione cardiopolmonare extracorporea dopo arresto circolatorio prolungato

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