16 giugno 2023
Questo protocollo descrive vari metodi che possono aiutare nello studio della biologia di ATG9A, tra cui l'immunofluorescenza seguita da analisi delle immagini, considerazioni sulla sovraespressione transitoria e lo studio dello stato di glicosilazione di ATG9A utilizzando il western blot.
Nel nostro laboratorio, siamo interessati a capire quali lipidi e proteine sono coinvolti nel traffico delle vescicole ATG9A. ATG9A è fondamentale nella via dell'autofagia per la formazione e la maturazione dei fagofori. Tuttavia, recentemente abbiamo studiato l'impatto di ATG9A nell'omeostasi degli organelli.
La sfida più grande è scoprire i dettagli molecolari di come funzionano le proteine e i macchinari proteici. Tecnologie come l'ingegneria proteica, basata su AlphaFold e la crio-EM in situ ad alta risoluzione stanno attualmente fornendo i maggiori progressi. Il lavoro del mio laboratorio ha stabilito una visione fondamentale di come si formano gli autofagosomi.
Queste intuizioni sono state supportate da tecniche avanzate di biologia cellulare molecolare come quella qui descritta. Descriviamo alcuni svantaggi dell'utilizzo di determinati tag proteici e come il comportamento di ATG9A può cambiare a seconda della localizzazione del tag. Quindi, o N o C-terminale.
Suggeriamo anche modi per rilevare questi inconvenienti e come evitarli. Oltre a questo, forniamo anche un flusso di lavoro per quantificare la dispersione di ATG9A in modo riproducibile. Qui, forniamo un flusso di lavoro che va dall'immunofluorescenza e dall'imaging dal vivo all'acquisizione e all'analisi delle immagini per l'analisi della dispersione di ATG9 tra i diversi compartimenti cellulari.
E pensiamo che la standardizzazione delle pipeline per l'analisi delle immagini sia una priorità per i biologi cellulari per essere in grado di aumentare l'affidabilità e la riproducibilità dei nostri risultati.
Questo studio analizza i meccanismi del traffico delle vescicole ATG9A e il loro ruolo nell'autofagia e nell'omeostasi degli organelli. Utilizzando cellule HEK293A, i ricercatori hanno impiegato diverse tecniche di imaging cellulare per comprendere l'influenza dei marcatori proteici sulla localizzazione e sul comportamento di ATG9A.
Un'analisi precisa dell'imaging e della quantificazione del traffico di ATG9A affronta una sfida fondamentale nella validazione degli obiettivi dell'autofagia e nella riduzione dei rischi meccanicistici per i portafogli della fase iniziale di scoperta. Procedure standardizzate per la localizzazione delle proteine di membrana consentono una valutazione riproducibile dei componenti della via dell'autofagia, sostenendo una previsione affidabile in sistemi rilevanti per la malattia. Queste capacità costituiscono la base per decisioni solide di prosecuzione o interruzione di programmi mirati alla modulazione dell'autofagia.
Questo flusso di lavoro di imaging e quantificazione colloca l'analisi del traffico di ATG9A all'intersezione tra scoperta precoce, validazione del bersaglio e ricerca preclinica per programmi legati all'autofagia.