Name: Rimodellamento dipendente dallesperienza del cervello giovanile, neurone sensoriale olfattivo, connettività sinaptica in un periodo critico della prima infanzia (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-01T14:50:00.000+00:00
Duration: 7 min 13 s
Description: Esplora il rimodellamento sinaptico dipendente dall'esperienza nel cervello giovanile di Drosophila. Questo metodo combina manipolazione genetica ed esposizione controllata agli odori per studiare i meccanismi gliali della potatura sinaptica durante i periodi critici.

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<meta charset="utf8"></head><body>Rimodellamento sinaptico indotto dall'esperienza olfattiva nel cervello giovanile di Drosophila

<ol><li>English, S., Barreaux, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+evolution+of+sensitive+periods+in+development%3A+insights+from+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opinion+Behav+Sci%22%5BJournal%5D)">The evolution of sensitive periods in development: insights from insects.</a> Curr Opinion Behav Sci. 36, 71-78 (2020).</li>
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<li>Gugel, Z. V., Maurais, E. G., Hong, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+exposure+to+odors+at+naturally+occurring+concentrations+triggers+limited+plasticity+in+early+stages+of+Drosophila+olfactory+processing%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Chronic exposure to odors at naturally occurring concentrations triggers limited plasticity in early stages of Drosophila olfactory processing.</a> eLife. 12, 85443(2023).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Per l'esposizione agli odori</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drosophila fiale</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-110</td><td></td></tr><tr><td>Butirrato di etile</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E15701</td><td></td></tr><tr><td>Provette per microcentrifuga&nbsp;</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>Olio minerale</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M3516</td><td></td></tr><tr><td>Camere per odori</td><td>Glasslock</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pennelli</td><td>Winsor & Newton</td><td>Serie 233</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Thermofisher</td><td>S37440</td><td></td></tr><tr><td>Rete metallica</td><td>Scienceware</td><td>378460000<</td><td></td></tr><tr><td>strong>Brain Dissection</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Etanolo, 190 proof</td><td>Decon Labs</td><td>2801</td><td>Diluito al 70%</td></tr><tr><td>Pinze</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-30</td><td>Dumont #5</td></tr><tr><td>Paraformaldeide</td><td>Microscopio elettronico Sciences</td><td>157-8</td><td>diluito al 4%</td></tr> <tr><td>piastre di Petri</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>08-757-100B</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione salina tamponata con fosfato</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>70011-044</td><td>Diluito a 1x</td></tr><tr><td>saccarosio</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>BP220-1</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard</td><td>Microscopio Elettronico Scienze</td><td>24236-10</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X 100</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>BP151-100</td><td></td></tr><tr><td>Brain Immunocitochimica</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>488 capra anti-pollo</td><td>Invitrogen</td><td>A11039</td><td></td></tr><tr><td>546 capra anti-ratto</td><td>Invitrogen</td><td>A11081</td><td></td></tr><tr><td>Albumina sierica bovina&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9647</td><td></td></tr><tr><td>Pollo anti-GFP</td><td>Abcam</td><td>13970</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini coprioggetti</td><td>Avantor</td><td>48366-067</td><td>25 x 25 mm</td></tr><tr><td>Nastro biadesivo</td><td>Scotch</td><td>34-8724-5228-8</td><td></td></tr><tr><td>Fluoromount-G&nbsp;</td><td>Microscopio elettronico Sciences</td><td>17984-25</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini per microscopio</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-544-2</td><td>75 x 25 mm</td></tr><tr><td>Smalto per unghie</td><td>Sally Hansen</td><td>109</td><td>Xtreme Wear, Invisibile</td></tr><tr><td>Siero di capra normale</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-CadN</td><td>Developmental Studies Hybridoma Bank</td><td>AB_528121</td><td></td></tr><tr><td> Confocale/Analisi</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Qualsiasi computer/laptop</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio confocale</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td>Zeiss 510 META&nbsp;</td></tr><tr><td>Fiji software Fiji</td><td></td><td></td><td>Versione 2.14.0/1.54f</td></tr></tbody></table>

rimodellamento dipendente dall'esperienza del cervello giovanile, neurone sensoriale olfattivo, connettività sinaptica in un periodo critico della prima infanzia

Experience-Dependent Remodeling of Juvenile Brain Olfactory Sensory Neuron Synaptic Connectivity in an Early-Life Critical Period

La Figura 1 mostra il flusso di lavoro per l'esposizione agli odori del periodo critico dipendente dall'esperienza olfattiva e i metodi di imaging cerebrale. Il protocollo inizia con l'abbinamento per età delle pupe scure del farato immediatamente prima dell'eclosion (Figura 1A). Le pupe vengono poste in camere odorizzanti per 4 ore, quindi gli adulti appena chiusi vengono capovolti in fiale fresche nel controllo del veicolo o nelle camere odorose EB dosate (Figura 1B). In genere ci esponiamo all'odorizzante per 24 ore, anche se è possibile qualsiasi durata. Dopo l'esposizione agli odori, la dissezione cerebrale inizia rimuovendo la testa dal torace e quindi rimuovendo l'esoscheletro della cuticola con una pinza fine (Figura 1C). Il cervello isolato viene ripulito da tutti i tessuti associati che potrebbero interferire con l'imaging e quindi immediatamente fissato in paraformaldeide al 4% e saccarosio al 4% in PBS. Una breve dose di 30 minuti è sufficiente per una buona integrità del tessuto cerebrale. Il protocollo immunocitochimico inizia con un blocco di 1 ora (ad es. BSA, NGS), l'incubazione notturna in anticorpi primari (ad es. anti-GFP, -CadN) e quindi una breve incubazione di 2 ore in anticorpi secondari (Figura 1D). I cervelli marcati sono montati su vetrini sotto vetrini coprioggetti sigillati con la superficie dorsale del cervello rivolta verso l'alto per una migliore imaging dei lobi antennali (Figura 1E). Si noti che tutti i campioni sono all'oscuro sia del genotipo che delle condizioni di esperienza, contrassegnando il vetrino con una designazione codificata per la decodifica successiva. Un microscopio confocale a scansione laser con un obiettivo a immersione in olio 63x viene utilizzato per visualizzare i lobi delle antenne del cervello centrale (Figura 1F). Vengono selezionate linee laser ottimali per i fluorofori utilizzati (ad esempio, Argon 488 e HeNe 543) per visualizzare l'innervazione olfattiva dei neuroni sensoriali Or42a di VM7 nel contesto dei glomeruli circostanti.
È importante selezionare il guadagno, l'offset, la risoluzione dell'imaging e lo spessore della fetta ottica ottimali per catturare l'intera proiezione Z-stack dell'innervazione del neurone Or42a nei glomeruli VM7. Tutti i genotipi e le condizioni di esperienza da confrontare vengono visualizzati con le stesse impostazioni del microscopio. Gli Z-stack vengono elaborati utilizzando il software ImageJ con variazioni dipendenti dall'esperienza valutate principalmente dal volume di innervazione 7,14. Ci sono due modi in cui sono state calcolate le misure volumetriche. Si calcola l'area di innervazione fetta per fetta utilizzando la funzione lazo ImageJ e quindi si moltiplica ogni valore per lo spessore di ogni fetta (μm)8,9. L'altro utilizza le proiezioni Z della somma delle fette e moltiplica il numero di fette Z-stack per lo spessore della fetta per determinare il volume medio. Entrambi i metodi danno risultati coerenti. Oltre alle misure di volume, l'intensità della fluorescenza può essere valutata anche con la proiezione dell'intensità massima di VM7 glomeruli16. La somma ponderata di tutti i pixel viene valutata tramite la proiezione massima della fetta somma ImageJ, con il numero di pixel a ciascun livello di intensità sommato per calcolare l'intensità complessiva 8,9. Lo sfondo può essere sottratto quantificando una regione extra-glomerulare di dimensioni identiche. Questo metodo di sottrazione richiede più tempo ma è più accurato, in quanto tiene conto dei diversi livelli di marcatura degli anticorpi di fondo in ciascun campione di cervello per produrre una quantificazione più rappresentativa dei valori di intensità della fluorescenza dell'innervazione. Le misurazioni dell'intensità vengono effettuate in un intervallo tipico di 18-30 fette ottiche (0,37 μm/fetta) all'interno di uno Z-stack, in media per ogni cervello16. In quasi tutti i casi, le misurazioni dell'intensità e del volume della fluorescenza per innervazione forniscono risultati coerenti.
In tutte le modalità di misurazione, i risultati rappresentativi rimangono invariati; l'esperienza precoce con l'odorizzante EB provoca una significativa perdita dell'innervazione del neurone Or42a. Il glomerulo VM7 può essere identificato in modo affidabile per dimensioni, forma e posizione tra gli altri glomeruli olfattivi del lobo antennale mappati con precisione (Figura 2A) e dall'espressione mirata dell'etichetta di membrana Or42a-mCD8::GFP accoppiata alla marcatura glomerulare con caderina anti-neurale (CadN; Figura 2B). L'esposizione temporizzata al controllo del veicolo odorizzante (olio minerale) provoca l'innervazione del neurone Or42a indistinguibile da un animale normale non trattato. Tuttavia, l'esperienza dell'odore EB nei primi giorni dopo l'eclosione (dpe) provoca la potatura dei glomeruli sinaptici (Figura 2C). Questo meccanismo di potatura è interamente limitato al breve periodo critico precoce della vita 8,10. In genere ora utilizziamo esposizioni odorose 24 ore su 24 per valutare la potatura sinaptica dei glomeruli VM7 e la conseguente diminuzione del volume di innervazione nel cervello di Drosophila giovanile. Un'esposizione di 24 ore (0-1 dpe) al controllo del veicolo odorizzante (olio minerale) mantiene la normale, densa innervazione Or42a-mCD8::GFP (verde) nei glomeruli sinaptici VM7 (cerchi bianchi tratteggiati) in entrambi i lobi antennali dell'emisfero cerebrale (Figura 2D, a sinistra). In netto contrasto, l'esposizione di 24 ore (0-1 dpe) al 25% di odorante EB disciolto nell'olio minerale provoca una forte potatura dell'innervazione Or42a-mCD8::GFP (verde) e una perdita del volume glomerulare sinaptico (Figura 2D, a destra). Questi risultati sono sia visivamente evidenti che costantemente chiari. Uno dei maggiori attributi di questo protocollo di esperienza con gli odori è la chiarezza dei risultati dell'imaging cerebrale, che sono anche estremamente suscettibili di semplici quantificazioni dell'intensità e del volume della fluorescenza dell'innervazione.
Il principale vantaggio di questo protocollo di esperienza olfattiva è la capacità di sfruttarlo per lo studio della restrizione temporale e dei meccanismi dose-dipendenti dell'odorizzante durante la potatura sinaptica del periodo critico. Per l'eliminazione delle sinapsi del neurone Or42a guidata da EB nel glomerulo VM7, il meccanismo di rimodellamento è principalmente limitato al giovane precoce (0-2 dpe), senza potatura sinaptica rilevabile esperienza-dipendente alla maturità (7-9 dpe) tranne una modulazione minore ai livelli di esposizione EB più alti8. Tale restrizione temporale definisce un periodo critico e la comprensione di questo meccanismo di temporizzazione è un obiettivo importante. Un altro attributo di questo protocollo è che la potatura sinaptica dipendente dall'esperienza è dose-dipendente dall'EB (Figura 3). L'esposizione temporizzata al controllo del veicolo odorizzante (olio minerale) con lo 0% di odorante EB provoca una normale innervazione del neurone Or42a del glomerulo sinaptico VM7, che è indistinguibile da un animale non trattato. Il calcolo del volume tridimensionale dell'innervazione del neurone Or42a mostra una dimensione tipica di un cervello giovanile normale (2260 μm3; Figura 3A, a sinistra). Risultati rappresentativi mostrano che l'aumento della concentrazione di odorante EB provoca una potatura dei glomeruli sinaptici progressivamente maggiore. Ad esempio, un'esposizione di 24 ore (0-1 dpe) al 15% di odorizzante EB provoca una perdita di innervazione chiara e costante (Figura 3A, al centro). La quantificazione del volume di innervazione 3D mostra una notevole riduzione rispetto ai controlli del veicolo (760 μm3 rispetto a 2260 μm3). Un'esposizione di 24 ore (0-1 dpe) al 25% di odorante EB provoca una perdita di innervazione ancora maggiore (281 μm3; Figura 3A, a destra). Le quantificazioni rappresentative per questo intervallo di concentrazioni di odoranti EB mostrano risultati coerenti per l'intensità della fluorescenza (Figura 3B) e il volume di innervazione (Figura 3C). Questa dipendenza dalla dose consente lo studio dei mezzi per prevenire la potatura sinaptica e migliorare la potatura con esposizioni odorose inferiori per dimostrare un aumento del rimodellamento dei glomeruli sinaptici. Alcuni studi precedenti hanno dimostrato l'effetto opposto dell'aumento del volume glomerulare utilizzando altri odoranti con questo protocollo10. L'esposizione agli odori EB nel periodo critico si traduce sempre in una potatura dei glomeruli sinaptici sorprendente e facilmente rilevabile.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66629/66629fig01.jpg"> Figura 1: Diagramma di flusso degli studi sull'esposizione agli odori nel cervello giovanile di Drosophila . (A) Le pupe scure del farato (90+ ore dopo la puberazione a 25 °C) vengono raccolte e poste in camere odorose. In condizioni odorizzanti, sono consentite 4 ore per l'eclosione, quindi le mosche giovani vengono trasferite in una fiala fresca. (B) Le mosche di pari età sono suddivise in condizioni di esperienza di controllo del veicolo (olio minerale al 100%) o di butirrato di etile (EB; % v/v in olio minerale). Una sottile rete metallica (riquadro) consente l'accesso agli odorizzanti. Le mosche sono in genere esposte per ulteriori 20 ore per un totale di 24 ore di esposizione, 0-1 giorno dopo l'esplosione (DPE). (C) Le mosche vengono sezionate rimuovendo prima la testa, quindi vengono utilizzate pinze fini per rimuovere delicatamente l'esoscheletro della cuticola e isolare il cervello giovanile. Il cervello isolato viene ripulito da tutti i tessuti circostanti e dalla trachea sporgente. (D) I cervelli isolati vengono fissati, bloccati e quindi incubati in sequenza in anticorpi primari e secondari. La gamma di anticorpi utilizzati include tipicamente una sonda di membrana generale per rivelare i glomeruli sinaptici del lobo antennale e una sonda di membrana specifica per i neuroni sensoriali olfattivi Or42a. (E) I cervelli etichettati sono posti in un supporto di montaggio su un vetrino da microscopio con distanziatori a nastro sotto un vetrino coprioggetti sigillato. Il corretto orientamento del cervello (superficie dorsale verso l'alto) è fondamentale per l'imaging ottimale dei lobi antennali. (F) I cervelli vengono visualizzati utilizzando un microscopio fluorescente confocale a scansione laser. Tutti i campioni sono in cieco rispetto al genotipo e sperimentano le condizioni prima dell'imaging e delle successive analisi quantificate. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66629/66629fig01large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66629/66629fig02.jpg"> Figura 2: Potatura dei glomeruli sinaptici del periodo critico dipendente dall'esperienza odorosa. (A) I glomeruli olfattivi del lobo antennale (AL) sono mappati con precisione. Sono mostrati alcuni glomeruli sinaptici rappresentativi. La classe dei neuroni sensoriali olfattivi (OSN) del recettore Or42a innerva specificamente i glomeruli VM7. (B) I neuroni marcati con Or42a-mCD8::GFP (verde) innervano densamente i glomeruli VM7 accoppiati sui lati sinistro (L) e destro (R) del cervello, con la marcatura anticorpale N-Caderina (CadN) di tutti i glomeruli sinaptici AL (magenta). La linea di mosca è w1118; Or42a-mCD8::GFP/+. (C) Rappresentazione grafica schematica dell'innervazione OSN Or42a dei glomeruli sinaptici VM7 in condizioni di controllo del veicolo (100% olio minerale; a sinistra) e dell'esposizione al butirrato di etile (% EB v/v in olio minerale; a destra) durante il periodo critico giovanile. La potatura dell'innervazione dipendente dall'esperienza si verifica solo con l'esposizione all'EB nelle prime fasi della vita, con l'eliminazione delle sinapsi e la perdita degli assoni, con conseguente riduzione del volume di innervazione. (D) Immagini confocali rappresentative dell'innervazione OSN di Or42a dei glomeruli sinaptici VM7 accoppiati (cerchi di contorno bianco tratteggiati; Or42a-mCD8::GFP, verde) dopo il controllo del veicolo a olio (a sinistra) e il 25% di esposizione all'EB (a destra) per 24 ore (0-1 dpe). L'esperienza dell'odorizzante EB guida la potatura sinaptica e la perdita di volume di innervazione. Questo meccanismo dipendente dall'esperienza è temporalmente limitato e reversibile transitoriamente solo entro un periodo critico olfattivo ben definito nei primi giorni dopo l'eclosione. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66629/66629fig02large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66629/66629fig03.jpg"> Figura 3: Quantificazione dell'intensità e del volume della fluorescenza dell'innervazione dei glomeruli sinaptici dose-dipendenti dell'EB. (A) Innervazione marcata con Or42a-mCD8::GFP in un glomerulo sinaptico VM7 (verde) esposto da 0-1 dpe al controllo dell'olio minerale del veicolo odorizzante (0% EB, a sinistra), 15% EB (al centro) o 25% EB (a destra). Sotto: Le stesse immagini con l'innervazione glomerulare delineata (cerchi bianchi) e il volume di innervazione tridimensionale calcolato. Il controllo del veicolo ha un'innervazione del glomerulo sinaptico VM7 da parte dei neuroni Or42a che è indistinguibile dagli animali non trattati. L'esperienza in un periodo critico con un'esposizione al 15% di ef odorizzante si traduce in un'evidente potatura sinaptica del glomerulo, con una diminuzione del 66% del volume di innervazione tridimensionale in questo caso. L'esposizione al livello più elevato del 25% di EB si traduce in una maggiore potatura, con una perdita di quasi il 90% del volume del glomerulo sinaptico in questo caso. Pertanto, si può immaginare una potatura dose-dipendente man mano che l'esperienza dell'odorizzante aumenta. (B) Risultati rappresentativi dell'intensità di fluorescenza marcata con Or42a-mCD8::GFP all'interno di glomeruli sinaptici VM7 esposti da 0-1 dpe al controllo del veicolo odorizzante (olio, verde), 15% EB (medio, arancione) o 25% EB (destra, nero). (C) Risultati rappresentativi dei volumi di innervazione tridimensionale dei glomeruli VM7 nelle stesse condizioni di esposizione agli odori del periodo critico. I grafici a dispersione mostrano tutti i singoli punti dati con la media ± SEM. La significatività è indicata come p≤0,05 (*), p ≤ 0,01 (**), p ≤ 0,001 (***) e p ≤ 0,0001 (****). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66629/66629fig03large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>

Rimodellamento dipendente dall'esperienza del cervello giovanile, neurone sensoriale olfattivo, connettività sinaptica in un periodo critico della prima infanzia

Early-life olfactory sensory experience induces dramatic synaptic glomeruli remodeling in the Drosophila juvenile brain, which is experientially ...

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Questo protocollo introduce l'apprendimento precoce lateralizzato delle preferenze olfattive nei ratti utilizzando l'occlusione acuta di un singolo naride. L'apprendimento lateralizzato consente l'esame dei risultati comportamentali e dei meccanismi biologici di base all'interno degli stessi animali, riducendo la varianza indotta dai disegni tra gli animali. Questo protocollo può essere utilizzato per studiare i meccanismi molecolari alla base dell'apprendimento precoce degli odori.

Un laterizzazione Odore Learning Modello in ratti neonati per dissezione Formazione Neural circuiti Sostenere la memoria

Descriviamo un protocollo per la marcatura in vivo dei neuroni sensoriali olfattivi mediante elettroporazione e successiva scansione laser confocale o microscopia multifotone per visualizzare la morfologia neuronale e il suo sviluppo nel tempo.

Il sistema olfattivo come modello per studiare gli schemi di crescita assonale e Morfologia In Vivo

Descriviamo un protocollo immunoistochimica per studiare il profilo di attivazione dei neuroni dell'ippocampo seguito dell'esposizione ad un compito di apprendimento spaziale in un modello murino caratterizzato da deficit cognitivi di origine dello sviluppo neurologico. Questo protocollo può essere applicato a entrambi i modelli murini genetici o farmacologici caratterizzati da deficit cognitivi.

Visualizzazione immunoistochimica di ippocampale Neuron attività dopo Spatial apprendimento in un modello murino di disturbi dello sviluppo neurologico

L'identificazione di molecole e percorsi che controllano la plasticità sinaptica e la memoria è ancora una grande sfida nelle neuroscienze. Qui, viene descritto un flusso di lavoro che affronta la quantificazione relativa delle proteine sinaptiche presumibilmente coinvolte nella riorganizzazione molecolare delle sinapsi durante l'apprendimento e nel consolidamento della memoria in un paradigma di apprendimento uditivo.

Alta risoluzione Quantitative Synaptic Proteome profiling di cervello di topo Regioni Dopo uditiva discriminazione Learning

Qui, ci alleniamo topi su un compito di apprendimento associativo per testare la discriminazione di odore. Questo protocollo consente inoltre di studi sui cambiamenti strutturali indotti su apprendimento nel cervello.

Una prova oggettiva e riproducibile di apprendimento olfattivo e discriminazione nei topi

Questo è un protocollo per la preparazione a slice acuta da ippocampo di topi adulti e invecchiamento che sfrutta la perfusione transcardiale e il taglio delle fette con NMDG-aCSF ghiacciato per ridurre i danni ipossici al tessuto. Le fette risultanti rimangono sane per molte ore e sono adatte per le registrazioni di patch e field a lungo termine.

Ridurre al minimo l'ipossia nelle fette di ippocampale da topi adulti e anziani

Il protocollo qui presentato fornisce informazioni sull'elettroencefalografia simultanea (EEG) e sulla valutazione comportamentale in tempo reale. Abbiamo discusso tutti i passaggi coinvolti in questo protocollo come soluzione attraente per i ricercatori in molti campi delle neuroscienze, in particolare nelle aree di apprendimento e memoria.

Monitoraggio simultaneo dell'elettrofisiologia wireless e del test comportamentale della memoria come strumento per studiare la neurogenesi ippocampale

Questo protocollo descrive la procedura di dissezione, le condizioni di coltura e l'imaging dal vivo di un sistema di espianto antenna-cervello per lo studio dell'assemblaggio del circuito olfattivo.

Un sistema di espianto per studi di imaging time-lapse dell'assemblaggio di circuiti olfattivi in Drosophila

Esplora il rimodellamento sinaptico dipendente dall'esperienza nel cervello giovanile di Drosophila. Questo metodo combina manipolazione genetica ed esposizione controllata agli odori per studiare i meccanismi gliali della potatura sinaptica durante i periodi critici.

Rimodellamento dipendente dallesperienza del cervello giovanile, neurone sensoriale olfattivo, connettività sinaptica in un periodo critico della prima infanzia (Video) | JoVE Journal

Rimodellamento dipendente dall'esperienza del cervello giovanile, neurone sensoriale olfattivo, connettività sinaptica in un periodo critico della prima infanzia

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