12 settembre 2025
Il protocollo presenta un metodo per l'attaccamento covalente in vivo della biotina alle proteine in base alla loro vicinanza a una biotina ligasi fusa a una proteina di interesse. Questa modifica consente un arricchimento selettivo delle proteine utilizzando perle di streptavidina come necessario negli studi di interazione proteica.
Il paramecio è un eucariote unicellulare con dimorfismo nucleare. Nel suo nucleo germinale, molti geni codificanti proteine sono interrotti da sequenze simili a trasposoni che devono essere rimosse nel nucleo somatico. Ciò richiede complessi multiproteici in un processo dinamico.
Una strategia efficiente per studiare questo intricato macchinario molecolare è la biotinilazione di prossimità. Nel nostro approccio, possiamo inserire qualsiasi gene bersaglio a monte della turboID ligasi per creare una proteina di fusione. Quindi questo costrutto deve essere iniettato nel nucleo somatico del paramecio, come dimostrato nel seguente protocollo.
Per questo protocollo utilizzato oggi, le cellule che sono state recuperate in terreno di coltura fresco. Utilizzare uno stereomicroscopio per catturare le cellule con la pipetta e trasferirle su un campo di diapositive a depressione fresco con terreno di lavaggio. Mentre le celle si trovano nel mezzo di lavaggio, disperdere 20 microlitri di acqua sul vetrino e sovrapporlo con il vetro di copertura.
Aggiungere 200 microlitri di olio minerale sopra il vetro di copertura. Successivamente, trasferire le singole cellule dal vetrino di lavaggio sotto forma di goccioline sotto l'olio minerale. Posizionare il vetrino preparato sul piedistallo del microscopio per iniezione.
Inserire l'ago di aspirazione e spostarlo in posizione. Attiva il braccio robotico e il microiniettore FemtoJet. Utilizzare la punta di una pipetta per microloader per aggiungere il DNA all'interno del capillare dell'ago per iniezione.
Collegare l'ago per iniezione al sistema di iniezione, quindi spostarlo in posizione e collegarlo al FemtoJet. Utilizzare il braccio robotico per posizionare l'ago per iniezione all'interno di una goccia d'acqua. Quindi premere per pulire l'ago fino a quando il flusso di DNA non è visibile.
Passare a una gocciolina contenente una cellula e abbassare l'ago di aspirazione. Quindi aspirare delicatamente l'acqua fino a quando la cella non è immobilizzata. Sollevare l'ago di aspirazione e abbassare l'ago di iniezione.
L'ago per iniezione deve essere inserito in un'area più scura corrispondente al nucleo somatico. Una gocciolina diffusa può diventare visibile all'interno dei confini del nucleo somatico dopo un'iniezione riuscita. Dopo l'iniezione, utilizzare l'ago di aspirazione per riportare l'acqua nella cellula.
Successivamente, ogni cellula iniettata deve essere recuperata in un pozzetto riempito con terreno di coltura. Dopo aver espanso le cellule, la presenza del DNA iniettato deve essere convalidata. Con questa procedura ci si aspetta solitamente un tasso di successo dal 40 al 50%.
È inoltre necessario convalidare l'espressione di successo delle proteine dal DNA iniettato e la loro corretta localizzazione utilizzando la colorazione immunofluorescente. Qui, mostriamo l'uso di successo di una proteina NOVA1 fusa con una biotina ligasi turboID per la marcatura di prossimità durante diverse fasi di sviluppo nel paramecio. In particolare, la biotina supplementare aumenta la biotinilazione nelle cellule che esprimono una proteina di fusione turboID.
Tuttavia, l'aggiunta di biotina alle cellule wild-type non porta alla biotinilazione. Come previsto, la biotina è legata in modo covalente a varie proteine, come mostrato nell'analisi Western blot. Infine, utilizziamo perle magnetiche rivestite di streptavidina per dimostrare che le proteine biotinilate possono essere arricchite selettivamente da un lisato di paramecio.
Abbiamo sviluppato un metodo per l'etichettatura della biotina di proteine in vivo in paramecio. Questo metodo è rapidamente adattabile a qualsiasi gene di interesse. La biotinilazione specifica per stadio può essere ottenuta attraverso la tempistica dell'integrazione di biotina.
Questo protocollo descrive un metodo per la biotinilazione in vivo di proteine in paramecio mediante una ligasi turboID per la biotina. La tecnica consente l'arricchimento selettivo di proteine biotinilate, facilitando lo studio delle interazioni proteiche.
La biotinilazione per prossimità in Paramecium tetraurelia consente la mappatura risolta nel tempo delle interazioni proteina-proteina all'interno di complessi molecolari dinamici e complessi. Questo approccio supporta i team di scoperta precoce nell'identificazione degli interattomi transitori e nella chiarificazione dei percorsi meccanicistici alla base dei sistemi di editing del genoma. L'adattabilità del metodo e le sue capacità di arricchimento quantitativo lo posizionano come una piattaforma riutilizzabile per la validazione di bersagli e la riduzione del rischio meccanicistico nei sistemi modello eucariotici.
Questo flusso di lavoro di biotinilazione per prossimità si integra nell'interfaccia tra scoperta precoce e identificazione di bersagli, supportando la mappatura dell'interactoma e la deconvoluzione del bersaglio prima dello sviluppo di modelli preclinici.