6 febbraio 2026
Qui presentiamo un protocollo per valutare semi-quantitativamente i livelli globali di m⁶A utilizzando dot blot. L'RNA totale viene estratto, denaturato, maculato su una membrana di nylon, sondato con anticorpi anti-m⁶A e visualizzato tramite chemiluminescenza. L'intensità del segnale, quantificata dall'analisi in scala di grigi ImageJ, riflette l'abbondanza relativa di metilazione, fornendo un flusso di lavoro riproducibile per la ricerca.
Il nostro protocollo consente la stessa valutazione quantitativa dei livelli globali di m6A utilizzando il sangue dot. Questo protocollo può essere applicato allo screening di routine e alla verifica funzionale preliminare di m6A. Per cominciare, rimuovere dalle incubatrici le ciotole di coltura cellulare contenenti 143 cellule B con cellule di controllo stabili a knockdown negativo per SNHG 21 e le cellule trattate con 3-deazadenosina e acido meclofenamico dall'incubatrice impostate a 37 gradi Celsius.
Verifica che la confluenza cellulare sia circa dell'80 al 90% al microscopio. Risciacquare le cellule due volte con 1 ml di PBS dopo aver rimosso il mezzo di coltura. Sostituisci il PBS con 1 ml di tripsina per piatto da 6 cm.
Scuoti delicatamente la teglia per distribuire la tripsina in modo uniforme e incuba a temperatura ambiente per un minuto. Successivamente, sostituire la soluzione di tripsina con 1 miglio di mezzo contenente il 10% di FBS per interrompere la digestione. Pipetta la sospensione cellulare più volte per disperdere le cellule.
Trasferire la sospensione cellulare in un tubo microcentrifuga privo di ribonucleasi da 1,5 ml. Centrifuga il tubo a 1000 G per tre minuti e pipetta il surnatante. Per l'estrazione dell'RNA, aggiungere 600 microlitri di tampone di lisi dal kit di purificazione dell'RNA al pellet cellulare.
Vortice accuratamente per lisare le cellule e lasciare che la soluzione riposi per cinque minuti. Dopo cinque minuti, aggiungi un volume uguale di 100% etanolo al lisato e al vortice in modo accurato. Ora pipetta 600 microlitri della miscela su una colonna spinante assemblata con un tubo di raccolta.
Centrifuga la colonna a 12.000 G per un minuto. Scarta il liquido dal tubo di raccolta. Dopo aver centrifugato la miscela rimanente, aggiungere 500 microlitri di tampone di lavaggio dal kit di purificazione RNA alla colonna di spin e incubare a temperatura ambiente per un minuto.
Poi centrifugare la colonna a 12.000 G per un minuto. Scartare il liquido dal tubo di raccolta e centrifugare nuovamente la colonna vuota per rimuovere il liquido residuo. Ora trasferisci la colonna di spin su un nuovo tubo privo di ribonucleasi da 1,5 millilitri.
Apri il coperchio per farlo asciugare all'aria per due minuti. Aggiungi da 25 a 50 microlitri di acqua senza enzimi al centro della colonna di spin. Dopo un'incubazione di due minuti a temperatura ambiente, centrifugare la colonna a 12.000 G per un minuto per eluire l'RNA.
Scartare la colonna di spin e posizionare l'RNA eluzionato sul ghiaccio. Successivamente, misura la concentrazione di RNA nei campioni di controllo e di knockdown utilizzando uno spettrofotometro. Prepara un microgrammo di RNA totale da ciascuna linea cellulare.
Poi diluisci serialmente l'RNA a 400 nanogrammi, 200 nanogrammi e 100 nanogrammi usando acqua trattata con dietil pirocarbonato. Riscaldare i campioni di RNA diluiti a 95 gradi Celsius per tre minuti. Trasferisci immediatamente i tubi al ghiaccio per raffreddarli.
Per eseguire il dot blotting, prima traccia le linee di riferimento sulla membrana di nylon caricata positivamente. Etichetta la membrana con i nomi dei campioni. Ora, miscela accuratamente ogni campione di RNA tramite vortexing delicato o pipetta.
Poi posiziona da 1 a 2 microlitri di ogni campione di RNA in posizioni designate della membrana. Irradiare la membrana in un reticolatore ultravioletto a 254 nanometri e 120 millijoule per centimetro quadrato per eseguire il reticolamento dell'RNA. Poi trasferisci la membrana in una ciotola contenente 10 ml di soluzione salina tris-buffata con Tween 20 e incubala su una piattaforma a dondolo per cinque minuti.
Successivamente, prepara una soluzione serotica bloccante all'albumina al 5% prima dell'uso e incuba la membrana nella soluzione bloccante a temperatura ambiente per due ore. Poi incubare la membrana con anticorpo anti-m6A a 4 gradi Celsius durante la notte su una piattaforma oscillante impostata a 50 giri al minuto. Il giorno successivo, lava la membrana tre volte con 10 ml di soluzione fisiologica tris-bufferizzata con Tween 20 per 10 minuti ciascuno su una piattaforma a dondolo.
Poi incubare la membrana con anticorpo secondario coniugato con perossidasi di rafano per un'ora a temperatura ambiente. Dopo aver lavato la membrana tre volte ancora, applica uniformemente il substrato chemiluminescente di perossidasi di rafano a goccia sulla membrana e incuba per un minuto a temperatura ambiente con un leggero dondolo. Rilevare il segnale utilizzando un sistema di imaging a chemiluminescenza.
Esegui una pre-scansione iniziale utilizzando la funzione di esposizione automatica. Per la colorazione con blu di metilene, incubare la membrana in una soluzione di colorazione al blu di metilene per un minuto. Lava la membrana tre volte con 10 ml di soluzione fisiologica treptata con Tween 20 per cinque minuti ciascuno.
Immagine come controllo di caricamento. Rimuovere la membrana utilizzando una soluzione contenente 1% di dodecil solfato di sodio su una piattaforma oscillante per 15 minuti. Successivamente, importa l'immagine acquisita nel software Image J e regola il formato.
Sottrai il background selezionando Processo e scegliendo Sottrai Background. Imposta il raggio a 50,0 pixel e attiva lo sfondo luminoso. Usa lo strumento rettangolo per selezionare l'area di analisi.
Poi definisci le corsie in sequenza selezionando Analizza, Gels e seleziona Prima corsia. Poi clicca sequencialmente su Analizza, Gel, Traccia le Corsie e misura i picchi per generare profili di intensità. Misurare i valori in scala dei grigi dei segnali N6-metiladenosina e blu di metilene.
Copia i dati quantificati in una tabella per l'analisi. Confrontare le intensità dei segnali per valutare i livelli globali di modifica della N6-metiladenosina. Il trattamento con l'inibitore della metiltransferasi 3-deazanosina ha ridotto notevolmente il segnale globale N6-metiladenosina nelle cellule 143B.
Il knockdown di SNHG 21 ha prodotto una riduzione comparabile dei livelli globali di N6-metiladenosina di base. Un trattamento aggiuntivo con 3-deazaadenosina ha ulteriormente ridotto il segnale globale N6-metiladenosina nelle cellule SHSNHG 21. Il trattamento con l'inibitore della demetilasi acido meclofenamico ha aumentato significativamente i livelli globali di N6-metiladenosina nelle cellule 143B.
Nonostante livelli basali di N6-metiladenosina più bassi, le cellule SHSNHG 21 hanno mostrato un aumento robusto di N6-metiladenosina, dopo il trattamento con acido meclofenamico. Le sfide più importanti includono la selezione della membrana, la diluizione precisa dell'RNA e la dimensione uniforme di entrambe le dimensioni. Eseguire sequenziamento per un'identificazione precisa specifica dello stato e applicare il tratto dello spettro di massa per ottenere un'analisi quantitativa globale completa.
Studi futuri possono indagare il meccanismo m6A nello sviluppo e nella progressione delle malattie.
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Questo articolo presenta un protocollo dettagliato per la valutazione semi-quantitativa dei livelli globali di N6-metiladenosina (m6A) nell'RNA mediante saggio di dot blot. Il metodo è progettato per analisi di routine e studi funzionali preliminari, offrendo un'alternativa rapida ed economica rispetto agli approcci basati su sequenziamento o spettrometria di massa per la valutazione delle modifiche m6A.
La quantificazione globale delle modifiche dell'RNA di N6-metiladenosina (m6A) è fondamentale per la validazione precoce dei bersagli e la riduzione del rischio meccanicistico nella scoperta di farmaci epitrascrittomica. Il saggio di dot blot consente uno screening rapido e semi-quantitativo dei livelli di m6A in diverse condizioni sperimentali, supportando la selezione del portafoglio e la verifica di ipotesi funzionali. La sua accessibilità e riproducibilità lo rendono uno strumento prezioso per analisi comparative e screening di routine nei flussi di ricerca traslazionale e preclinica.
Il saggio dot blot si inserisce nel continuum dalla scoperta precoce alla fase preclinica, fungendo da ponte tra la validazione del bersaglio, lo screening e la ricerca traslazionale per i bersagli epitrascrittomica.