8 maggio 2026
È stato sviluppato un approccio robusto e riproducibile per stabilire colture primarie 2D di cellule arricchite di zona glomerulosa e zona fascicolata, per la corteccia surrenale del muro. Questo sistema preserva le caratteristiche molecolari e funzionali chiave di ciascuna zona, consentendo un'indagine mirata delle vie di segnalazione, della produzione ormonale e del comportamento delle cellule corticali surrenali ex vivo.
La mia ricerca ha studiato la regolazione del microambiente surrenale, concentrandosi sulla segnalazione ACM e Wnt nella zona glomerulosa e nella differenziazione della zona fascicolata, e sullo sviluppo tumorale. I metodi esistenti non riescono a distinguere chiaramente le zone surrenali. Questo protocollo arricchisce ZG e ZF, consentendo lo studio di diversi tipi cellulari.
Questo protocollo può essere applicato per studiare la adrenofisiologia in ZG e ZF, inclusa la zonazione e la differenziazione cellulare. Per isolare la ghiandola surrenale per la coltura primaria arricchita a zone, si utilizzano da 10 a 15 maschi adulti giovani, di circa sei-sette settimane di età. Dopo l'eutanasia del topo, posizionalo in posizione dorsale del decubito su una superficie piana sterile e disinfetta il pelo animale con alcol al 70%.
Con le forbici, effettuare una prima incisione nella regione inguinale dell'addome. Estendi l'incisione lateralmente verso il torace su entrambi i lati per esporre il peritoneo. Ritrae la pelle con attenzione.
Poi ritrai delicatamente i muscoli addominali per esporre la carie, evitando danni ai vasi sanguigni per mantenere una chiara visualizzazione delle ghiandole surrenali. Cambia gli strumenti chirurgici per minimizzare la contaminazione microbica. Identificare la ghiandola surrenale sinistra situata medialmente e superiore al rene sinistro nel retroperitoneo, con forma ovale e colorazione rosa circondata da tessuto adiposo bianco.
Utilizzando le pinze contundenti, spostare con attenzione gli organi adiacenti per migliorare la visualizzazione della ghiandola surrenale. Con forbici, rimuovi la maggior parte del tessuto adiposo circostante con tagli brevi e controllati per isolare la ghiandola surrenale. Evita di afferrare direttamente la ghiandola surrenale, per evitare danni alla sua capsula.
Immediatamente posizionare la ghiandola surrenale isolata in una tavola di coltura P60 contenente 10 millilitri di mezzo DMEM F-12 preriscaldato fino a quando tutti i campioni non saranno stati raccolti. Successivamente, identifica la ghiandola surrenale destra situata lateralmente e superiore al rene destro nel retroperitoneo, osservando che la sua vicinanza al fegato, al colon ascendente e ai vasi sanguigni vicini può rendere la visualizzazione più difficile. Maneggiare con attenzione le vene renali e le arterie renali per evitare tagli accidentali e sanguinamento.
Dopo aver isolato la ghiandola surrenale destra, utilizzando la stessa procedura della ghiandola surrenale sinistra, posizionare entrambe le ghiandole insieme nello stesso piatto. Pulisci la ciotola di coltura con alcol al 70% prima di trasferire le ghiandole nella cappa a flusso laminare. Poi, lava le ghiandole surrenali tre volte trasferendole in sequenza attraverso piatti contenenti PBS a 25 gradi Celsius.
Dopo il lavaggio finale, raccogliere e mantenere i tessuti separati in una quarta piastra contenente DMEM preriscaldato per preservare la vitalità durante la preparazione di più ghiandole. Trasferire le ghiandole surrenali su una carta filtro per la dissezione. Successivamente, usando una pinza fine, afferra la ghiandola surrenale tramite il tessuto adiposo aderente.
Disseziona con attenzione il grasso sulla carta filtrante con movimenti controllati per evitare di danneggiare la capsula. Assicurati che la ghiandola sia liscia e intatta, e priva di eccesso di tessuto adiposo e connettivo. Trasferire con attenzione le ghiandole surrenali su carta filtro nuova per facilitare una micro-dissezione precisa.
Con pinze sottili, pizzica delicatamente la capsula della ghiandola surrenale. Usando una lama di bisturi, fai un'incisione radiale nella ghiandola senza tagliare completamente il tessuto. Applicare una leggera pressione meccanica per espellere il contenuto interno della corteccia verso l'esterno attraverso l'incisione.
Espone il materiale ghiandolare interno mantenendo la capsula e la zona glomerulosa collegate alla punta della pinza. Identificare il materiale ghiandolare interno espulso come zona fascicolare e midolla. Avviare la digestione enzimatica solo dopo che tutte le ghiandole sono state processate, per garantire una corretta separazione meccanica delle zone esterne e interne.
Dopo la centrifugazione, risospendere le cellule raccolte nel mezzo di coltura. Dopo aver stabilito la coltura delle cellule surrenali, eseguire la caratterizzazione molecolare delle cellule coltivate utilizzando l'analisi dell'espressione genica e la colorazione immuno-colorata. Colture primarie di cellule surrenali sono state stabilite con successo dalla frazione esterna arricchita per le cellule zonaglomerulosi e dalla frazione interna arricchita per le cellule della zona fascicolata.
Il modello murino di tracciamento della linea ha permesso la visualizzazione dell'espressione specifica di mGFP nella zona glomerulosa guidata dal promotore Cyp11b2. L'espressione di mGFP è stata osservata prevalentemente nelle colture arricchite con zonaglomerulosa, mentre le colture arricchite con zona fascicolate esprimevano principalmente mtomato. Livelli di espressione relativa più elevati di Cyp11b2, Dab2 e Sonic hedgehog sono stati osservati nelle colture a frazione esterna rispetto a quelle a frazioni interne.
Le colture a frazione interna hanno mostrato un'espressione relativa più elevata di Cyp11b1 e Akr1b7 rispetto alle colture a frazione esterna. La secrezione di aldosterone era più alta nelle colture arricchite con zonaglomerulosa rispetto a quelle arricchite con zona fascicolata. Nelle colture della frazione esterna, la secrezione di aldosterone aumentava ulteriormente durante la stimolazione con angiotensina II, potassio e ormone adrenocorticotropo.
La secrezione di corticosterone era più elevata nelle colture arricchite con zona fascicolata rispetto a quelle arricchite con zona glomerulosa. Le colture arricchite da zona fascicola hanno mostrato un aumento della secrezione di corticosterone in risposta all'ormone adrenocorticotropico e alla stimolazione della forskolina. Questo protocollo consente lo studio della fisiologia e differenziazione specifiche per zona, inclusa la produzione ormonale, la via di segnalazione e la matrice extracellulare.
Studi futuri potranno esplorare i meccanismi di zonazione e differenziazione delle surrenali, e l'uso di queste cellule per costruire un modello 3D e studiare le interazioni ECM.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
Questo articolo presenta un nuovo protocollo di frazionamento e coltura primaria per l'isolamento e lo studio di cellule specifiche delle diverse zone della corteccia surrenale del topo adulto. Mediante la microdissezione delle ghiandole surrenali e la generazione di colture primarie bidimensionali (2D) arricchite per cellule della zona glomerulosa (zG) o della zona fascicolata (zF), il metodo consente un'analisi dettagliata delle caratteristiche molecolari, cellulari e funzionali uniche di ciascuna zona surrenale.
Le colture primarie arricchite per zona del corticale surrenale del topo colmano una lacuna fondamentale nella scoperta in endocrinologia, consentendo la riduzione del rischio meccanicistico e la validazione degli obiettivi in un sistema fisiologicamente rilevante. Questo modello fornisce un'attendibilità predittiva per l'analisi dei percorsi e la valutazione funzionale della segnalazione specifica per le zone surrenali, influenzando direttamente le decisioni sul portafoglio nelle fasi iniziali. La riproducibilità e la fedeltà biologica di queste colture facilitano una valutazione solida di bersagli e meccanismi endocrini.
Questo sistema di coltura primaria si integra nel percorso di scoperta, dalla verifica iniziale delle ipotesi fino all'identificazione dei composti promettenti e alla validazione preclinica per bersagli surrenalici.