Name: Protocolli per lallevamento efficiente e lanalisi funzionale della vespa endoparassitoide Asobara japonica e del suo ospite Drosophila melanogaster (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-24T13:10:00.000+00:00
Duration: 10 min 14 s
Description: Impara i protocolli per l'allevamento di Asobara japonica e Drosophila melanogaster. Questo metodo standardizzato consente analisi funzionali dei geni del veleno e studi sulle interazioni parassitoide-ospite.

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	<li>Hasik AZ, et al. Parasitism as a driver of host diversification. Nat Rev Biodivers. 2025;1(6):401-410.</li>
	<li>Pennacchio F, Strand MR. Evolution of developmental strategies in parasitic Hymenoptera. Annu Rev Entomol. 2006;51:233-258.</li>
	<li>Quicke DL. Parasitic Wasps. 1997:221-255.</li>
	<li>Moreau S, Asgari S. Venom proteins from parasitoid wasps and their biological functions. Toxins. 2015;7(7):2385-2412.</li>
	<li>Huang J, Chen XX, Zhan S. Molecular mechanisms underlying parasitoid-derived host manipulation strategies. Annu Rev Entomol. 2026;71:51-68.</li>
	<li>Belokobylskij SA. Key to the Insects of Russian Far East. Tribe Alysiini. In: Ler PA, ed. 1998;4(3):163-298.</li>
	<li>Ideo S, Watada M, Mitsui H, Kimura MT. Host range of Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae), a larval parasitoid of drosophilid flies. Entomol Sci. 2008;11(1):1-6.</li>
	<li>Mitsui H, Van Achterberg K, Nordlander G, Kimura MT. Geographical distributions and host associations of larval parasitoids of frugivorous Drosophilidae in Japan. J Nat Hist. 2010;41(25-28):1731-1738.</li>
	<li>Kamiyama T, et al. Whole-genome sequencing analysis and protocol for RNA interference of the endoparasitoid wasp Asobara japonica. DNA Res. 2022;29(4):1-14.</li>
	<li>Kamiyama T, et al. Parasitoid wasp venoms degrade Drosophila imaginal discs for successful parasitism. Sci Adv. 2025;11(5).</li>
	<li>Shrestha B, Aryal B, Lee Y. The taste of vitamin C in Drosophila. EMBO Rep. 2023;24(6).</li>
	<li>Murata Y, Ideo S, Watada M, Mitsui H, Kimura MT. Genetic and physiological variation among sexual and parthenogenetic populations of Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae), a larval parasitoid of drosophilid flies. Eur J Entomol. 2009;106(2):171-178.</li>
	<li>Werren JH, Baldo L, Clark ME. Wolbachia: master manipulators of invertebrate biology. Nat Rev Microbiol. 2008;6(10):741-751.</li>
	<li>Furihata S, Hirata M, Matsumoto H, Hayakawa Y.&#160;Bacteria endosymbiont,&#160;Wolbachia, promotes parasitism of parasitoid wasp Asobara japonica. PLoS One. 2015;10(10).</li>
	<li>Yamashita S, Takahashi KH. Artificial transfer of a thelytoky-inducing Wolbachia endosymbiont between strains of the endoparasitoid wasp Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae). Appl Entomol Zool. 2018;53(3):403-409.</li>
	<li>Wang X, Biondi A, Daane KM. Functional responses of three candidate Asian larval parasitoids evaluated for classical biological control of Drosophila suzukii (Diptera: Drosophilidae). J Econ Entomol. 2020;113(1):73-80.</li>
	<li>Niwa R, Niwa YS. Molecular mechanisms of ecdysteroid biosynthesis. Compr Mol Insect Sci. 2026:106-137.</li>
	<li>Zhang J, et al. A set of novel venom proteins enables parasitoid wasps to exploit older hosts and coexist with competitors. Adv Sci. 2026;13(4).</li>
	<li>Schott S, et al. A fluorescent toolkit for spatiotemporal tracking of apoptotic cells in living Drosophila tissues. Development. 2017;144(20):3840-3846.</li>
	<li>Kacsoh BZ, Bozler J, Ramaswami M, Bosco G. Social communication of predator-induced changes in Drosophila behavior and germ line physiology. eLife. 2015;4.</li>
	<li>Sadanandappa MK, Sathyanarayana SH, Kondo S, Bosco G. Neuropeptide F signaling regulates parasitoid-specific germline development and egg-laying in Drosophila. PLoS Genet. 2021;17(3).</li>
	<li>Amano S, Akada T, Takahashi KH. In vivo and in vitro developmental profiling of Asobara japonica, a larval endoparasitoid of drosophilid flies. Entomol Exp Appl. 2019;167(5).12790.</li>
	<li>Shirai Y, Piulachs MD, Belles X, Daimon T. DIPA-CRISPR is a simple and accessible method for insect gene editing. Cell Rep Methods. 2022;2(5):100215.</li>
	<li>Zhang X, Singh A, Soriano Martinez K, Ferree PM. Direct parental (DIPA) CRISPR in the jewel wasp, Nasonia vitripennis. G3 (Bethesda). 2024;14(7).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>50 mL tube</td><td>Greiner Bio-One</td><td>210261</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>1 mL syringe</td><td>TERUMO</td><td>SS-01T</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Daisin, Ltd.</td><td>P-700</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Asnol Petri Dish &phi;40&times;13.5mm</td><td>As One Corporation</td><td>1-8549-01</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Asnol Petri Dish &phi;55&times;17mm</td><td>As One Corporation</td><td>1-8549-02</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Blue dye (Erioglaucine disodium salt)</td><td>Sigma-Aldrich Co. Llc.</td><td>861146-25G</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Butyl p-Hydroxybenzoate</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>06327-15</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>CO2 pressure regulator</td><td>YAMATOSANGYO</td><td>YR-507F-2</td><td>Infection assay</td></tr><tr><td>Confocal laser scanning microscope</td><td>Zeiss</td><td>LSM700</td><td>Analisi delle immagini</td></tr><tr><td>Corn meal</td><td>Sunny Maize Co., Ltd.</td><td>No.4M</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>PI62247</td><td>Colorazione dei nuclei, 1:10000</td></tr><tr><td>Deionized water</td><td>Millipore Inc.</td><td>ZLXEV030WW</td><td>Infection assay</td></tr><tr><td>Dual-Stage Glass Micropipette Puller</td><td>Narishige</td><td>PC-10</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Fiji</td><td>NA</td><td><a href="https://fiji.sc/">https://fiji.sc</a></td><td>Analisi delle immagini</td></tr><tr><td>Filter paper</td><td>Advantec</td><td>ITEM 526</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Fly food vial</td><td>Chiyoda Science Co., Ltd.</td><td>KFB-3M</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Fly food vial plug</td><td>Chiyoda Science Co., Ltd.</td><td>AS-275</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Dumont Biologie</td><td>11252-20</td><td>Dissecazione</td></tr><tr><td>Freezer, -20 &deg;C</td><td>Nihon Freezer</td><td>GS-3120HC</td><td>Conservazione dei campioni</td></tr><tr><td>Freezer, -80 &deg;C</td><td>Nihon Freezer</td><td>CLN-52UD2</td><td>Conservazione dei campioni</td></tr><tr><td>Glass slides</td><td>Matsunami Glass Ind., Ltd</td><td>S7213</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Showa Sangyo Co., Ltd.&nbsp;</td><td>Non disponibile</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>KOD Plus Neo</td><td>Toyobo</td><td>KOD-401</td><td>Sintesi dsRNA</td></tr><tr><td>Incubator</td><td>Panasonic</td><td>MIR-254-PJ</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Ligation high Ver.2</td><td>Toyobo</td><td>LGK-201</td><td>Sintesi dsRNA</td></tr><tr><td>Micropipette Grinder</td><td>Narishige</td><td>EG-401</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Mineral oil</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>23306-84</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Nanoject III</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>3-000-207</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Nanoject Glass Capillaries</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>3-000-203-G/X</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>pBluescript KS (+) plasmid</td><td>Non disponibile</td><td>Non disponibile</td><td>Sintesi dsRNA</td></tr><tr><td>pBluescript SK (-) plasmid</td><td>Non disponibile</td><td>Non disponibile</td><td>Sintesi dsRNA</td></tr><tr><td>PrimeScript reverse Transcriptase</td><td>Takara</td><td>2680A</td><td>Sintesi dsRNA</td></tr><tr><td>Propionic acid</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>29018-55</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>PROWIPE</td><td>Daio Paper Corporation</td><td>2-2624-02</td><td>Infection assay, dsRNA injection.</td></tr><tr><td>ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover</td><td>Toyobo</td><td>FSQ-301</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>RNAiso Plus reagent</td><td>Takara</td><td>9108</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Small vial (Test tube 12 mL)</td><td>Sarstedt</td><td>REF 58.487</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Small vial plug</td><td>Chiyoda Science Co., ltd.</td><td>QD-S4</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Spatula</td><td>As One Corporation</td><td>6-522-02</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Square petri dish</td><td>Eiken Chemical Co., Ltd.</td><td>64-2192-55, AW2000</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Leica Microsystems</td><td>lvesta3 (C-Mount)</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Nikon Solutions Co., Ltd.</td><td>SMZ1000</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>T7 RiboMAX Express RNAi System</td><td>Promega</td><td>P1700</td><td>Sintesi dsRNA</td></tr><tr><td>Thermal Cycler Dice Real Time System</td><td>Takara</td><td>TP815</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Thermal Cycler GeneAtlas</td><td>Astel</td><td>G02</td><td>Sintesi dsRNA, qRT-PCR</td></tr><tr><td>THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix</td><td>Toyobo</td><td>QPS-201</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>TissueLyser II</td><td>Qiagen</td><td>Non disponibile</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Vitamin C, L-Ascorbic Acid</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>03420-65</td><td>Allevamento</td></tr><tr><td>Welch's grape 100 juice</td><td>Asahi Soft drinks Co., Ltd.</td><td>32390</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Yeast</td><td>Asahi Group Foods, Ltd.</td><td>HB-P02</td><td>Allevamento</td></tr></tbody></table>

protocolli per l'allevamento efficiente e l'analisi funzionale della vespa endoparassitoide asobara japonica e del suo ospite drosophila melanogaster

Protocols for Efficient Rearing and Functional Analysis of the Endoparasitoid Wasp Asobara japonica and its Host Drosophila melanogaster

Protocolli per l'allevamento efficiente e l'analisi funzionale della vespa endoparassitoide Asobara japonica e del suo ospite Drosophila melanogaster

Parasitism is a biological interaction in which one organism exploits the body or resources of another (the host), resulting in substantial damage or ...

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Protocolli per lallevamento efficiente e lanalisi funzionale della vespa endoparassitoide Asobara japonica e del suo ospite Drosophila melanogaster (Video) | JoVE Journal

Protocolli per l'allevamento efficiente e l'analisi funzionale della vespa endoparassitoide Asobara japonica e del suo ospite Drosophila melanogaster

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