JoVE Core
Molecular Biology
Chapter 15: Studying DNA and RNA
15.12:
サンガーシーケンシング
DNAシーケンシングは、生物科学で日常的に使用されている基本的な技術です。この方法は、クローニングされたDNA断片のシーケンシングや遺伝子の突然変異の研究から全ゲノムシーケンシングまで、さまざまなスケールでさまざまな問題に適用できます。しかし、今日ではシーケンシングが広く使用されているにもかかわらず、フレデリック・サンガーと彼の共同研究者たちがDNA配列を解読するための鎖終端法を開発したのは1977年のことでした。これは、キャピラリーゲル電気泳動を使用してさまざまなサイズのDNA断片の混合物を分離し、得られたエレクトロフェログラムからDNA配列を解読することに依存しています。
サンガーシーケンシングの課題
サンガーシーケンシングは、1回のランで約300〜1000 bpのDNAのシーケンシングにのみ使用できます。配列中の最初の15〜40ヌクレオチドを作るプライマー結合部位のサンガー配列の品質は劣っています。
サンガーシーケンシングの現在の応用
そのシンプルさと信頼性により、従来のサンガーシーケンシング技術は、より正確で信頼性が高く、高速な半自動法に迅速に適応されました。今日では、小規模なターゲットシーケンシングに頻繁に使用されています。
特定の実験や診断では、存在する遺伝子や対立遺伝子、それらの機能、および関連する疾患についてより深く理解するために、生物の全ゲノムのヌクレオチド配列を取得する必要がある場合があります。これは、DNAシーケンシングを使用して達成できます。
2つのよく知られた伝統的なDNAシーケンシング技術は、サンガーシーケンシング法とマクサム・ギルバート法です。
サンガーシーケンシング(鎖末端またはジデオキシヌクレオチドシーケンシングとも呼ばれる)では、シーケンシングされる純粋なテンプレートDNAは、適切なプライマー、dNTP、およびジデオキシヌクレオチドまたはddNTPと呼ばれる修飾塩基の存在下でPCR増幅されます。
ジデオキシヌクレオチドは、デオキシヌクレオチドのヒドロキシル基を欠いているため、隣接するヌクレオチドとホスホジエステル結合を形成する能力が制限されます。
また、各ジデオキシヌクレオチドには、検出を容易にするために異なる蛍光標識が貼られています。
最初のステップは、テンプレートDNAを一本鎖DNAに変性させることです。
次に、プライマーが目的領域に結合すると、DNAポリメラーゼはDNA鎖に新しいヌクレオチドを追加し始め、場合によってはデオキシヌクレオチドの代わりにジデオキシヌクレオチドを組み込みます。これにより、DNA増幅が終了します。
その結果、さまざまな長さのDNA断片ができ、それぞれが標識されたジデオキシヌクレオチドで終点します。
次に、これらのDNA断片をキャピラリーゲル上で実行してサイズに基づいて分離し、これらの各断片からの発光スペクトルを自動ソフトウェアで分析して、目的のDNAの遺伝子配列を解読します。
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