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方法論記事

3D DNA FISH:染色体上の特定の遺伝子を見つける技術

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2023年4月30日

この記事について

要約

出典:Gallerani, G. et.al. Characterization of Tumor Cells Using a Medical Wire for Capturing Circulating Tumor Cells: A 3D Approach Based on Immunofluorescence and DNA FISH. J. Vis. Exp.(2017年)。

がん患者の血液からの循環腫瘍細胞(CTC)の単離と特性評価は、非侵襲的なリキッドバイオプシーの一種であり、再発と疾患の進行に関連しています。このビデオでは、医療用ワイヤーで捕捉したCTC上のDNA蛍光in-situハイブリダイゼーション(DNA FISH)の手法について説明し、目的の特定の遺伝子を研究しています。

プロトコル

1. 3D DNA-FISH 2日目

>注意:機器の高温と湿度の高いチャンバーには特別な注意を払う必要があります。

  1. ハイブリダイゼーションオーブンと乾熱オーブンをセットアップします(DNA-FISHプロトコルを開始する~3時間前)。ハイブリダイゼーションオーブンを75°Cにセットし、乾熱オーブンを37°Cにセットし、0.4×SSC溶液(pH = 7.0 ± 0.1)を4°C.
    に冷却します 手記:FISHバッファーのpHステータスは重要であり、7.0±0.1でなければなりません。
  2. 氷冷した0.4×SSC溶液でワイヤーを3回洗浄します.
    手記:次の手順中に蛍光色素の光退色を避けるために、ワイヤーを暗所に置いてください。
  3. ヒュームキャビネットの下の暗闇で10分間乾燥させます。
  4. プローブを渦巻きにして5秒間回転させます。
  5. プローブ10μLをガラスマイクロチューブに滴下します。実験用フィルムで覆います。
  6. 次のようにマイクロチューブを回転させます:マイクロチューブを乾燥吸収剤で包み、紙を50mLチューブに入れ、短時間回転させます。
  7. 乾燥させたワイヤーをマイクロチューブに慎重に入れ、ワイヤーストッパーを挿入します。ゴムセメントでシール.
    注意:次の 2 つのステップには、高温が関係します。保護手袋を着用してください。
  8. ハイブリダイゼーションオーブンの暗く湿ったチャンバーにワイヤーを75°Cで8分間入れて、完全なDNA変性を得ます。
  9. 湿ったチャンバーを37°Cの乾熱オーブンに一晩移します。

2. 3D DNA-FISH 3日目

  1. 0.4× SSC溶液を入れたスライド染色ジャーをウォーターバスに入れ、72°Cに設定します。
  2. 0.4× SSC溶液の温度が72°C±1°Cに達するまで確認します。
  3. 2つのガラスビーカーを準備し、1つは2×SSC + 0.05%Tween(pH = 7.0 ± 0.1)溶液、もう1つは蒸留水です。
  4. 湿ったチャンバーを乾熱オーブンから取り出し、ピンセットを使用してワイヤーストッパーからゴムセメントを慎重に取り除き、ワイヤーを取り出します.
    手記:コーティングされていないワイヤーの端をIN-Stopperに通し、機能化された先端を傷つけないように注意してください。
  5. ワイヤーを0.4×SSC溶液に72°Cで2分間浸します。
  6. ワイヤーを2×SSC + 0.05%Tween溶液でRTで30秒間洗浄します。
  7. RTの蒸留水でワイヤーを洗浄します。
  8. ヒュームフードの下のワイヤーを暗闇で10分間乾かします。
  9. 1× PBSの2 mLに1.43 μMのDAPIストック溶液を調製します。
  10. 官能基化したワイヤーの先端を2 mLバイアル中のDAPI溶液とインキュベートし、室温で暗所1時間インキュベー
  11. トします。
  12. ワイヤーを1×PBSで2回すすぎ、風乾します。

3. 3D顕微鏡観察と分析

  1. ワイヤーをワイヤーホルダーに配置します。機能化された先端を、先端が結合点と一致するまで、特別なホルダーのエントリポイントに慎重に挿入します。機能化された先端を傷つけないように注意してください(図1a)。
  2. 特別なホルダーを顕微鏡ステージに置きます。20×レンズを使用して顕微鏡の焦点を調整します。最初に特別なサポートに大まかに焦点を合わせ、次にDAPIチャネルで明るく見えるセルを微調整します。

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結果

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図1:機能化されたワイヤ、ALKブレークアパルトプローブの概略配置、ALK再配置の期待パターンのスキーム、および特別なホルダー。(a)赤いボックスは、ワイヤーの3つの主要部分(機能化チップ、ワイヤーストッパー、および非機能化チップ)を強調しています。機能化された先端はワイヤーの最もデリケートな部分であり、セルの剥離や損傷を避けるために、取り扱い中に触れてはなりません。(b)緑色と赤色のプローブは、それぞれALK遺伝子座の上流と下流の配列に結合します(左)。右側には、ALK配置の例示的なパターンが示されています。正常細胞上の赤と緑の共局在化シグナル。緑と赤のシグナルが分離されているのは、ALK遺伝子の染色体切断(ALK遺伝子の転座)と1つの緑-オレンジの共局在シグナル(異常な細胞-1)を示していま...

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開示事項

利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
トゥイーン 20 バイオレーダー # 1706531
Vysis 20X SSC (66g) アボット・モレキュラー・インク #30-804850 推奨されているように、蒸留水に再懸濁する粉末
水ミリポア
DAPI、フルオロピュアグレード インビトゲン#D21490
ZEISS蛍光顕微鏡Axioskop ツァイス

タグ

蛍光顕微鏡法遺伝子局在染色体分析血中循環腫瘍細胞メディカルワイヤーハイブリダイゼーションオーブンプローブインキュベーションSSC溶液DAPI染色