方法論記事

モスキート子育てのためのプロトコル(A. gambiae)

DOI:

10.3791/221

2007年7月4日

この記事について

サマリー

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このビデオでは、実験室で背面ハマダラカに使用される一般的なテクニックを示しています。実験室での蚊の世話をするための方法は、吸血性の成人に蛹に幼虫から生物のライフサイクルの全段階を経て実証されています。

要約

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このプロトコルは、昆虫館での蚊の飼育について説明します。昆虫館のお部屋は12時間で、℃、〜80%湿度28で保持されます。昼/夜サイクル。この手順では、蚊のケージ10%滅菌ショ糖溶液、ペーパータオル、ビーカー、ワットマン濾紙、ガラスフィーダー、ヒトの血液や血清、水浴、パラフィルム、蒸留水、きれいなプラスチックトレイ、蚊の食べ物を(説明​​する必要があります以下)、成人を収集するトレー、真空、及び収集チャンバーをカバーするために蚊帳。

プロトコル

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モスキート食べ物:

  1. 食べ物:接地された魚の餌(Aquaricare)。小さいピンチを追加する必要があります。
  2. 食べ物B:接地CATフード(ピュリナ)。小さいピンチを追加する必要があります。
  3. 食品C:猫フード(ピュリナ)。 2錠を追加する必要があります。

ブラッド:

動物またはヒトの血液は、背面蚊に使用することができます。新鮮な血液が注射器で採取し、血液の各10 mlのCPD(抗凝固)の1mlを含む滅菌15ミリリットルファルコンチューブに入れ、その後穏やかに混合し、5分間2000rpmで、室温で遠心分離する。上清を他の血液細胞(例えばWBC)を含むバフィーコートを除去するために世話をして、破棄されます。 RBCペレットをピペッティングによりRPMI培地の等量に懸濁し、そしてさらにこの培地で3回洗浄する。最終洗浄後、ペレット化赤血球はRPMI培地の等量に再懸濁させ、4℃(8-10日間保持することができます)で保存。ちょうど授乳する前に、RBCは(RPMIで)セルダウンペレットに(5分間2000rpmで)遠心分離され、パックされたRBCは40%のヘマトクリットを取得するために血清(O +ヒト血清)中に再懸濁されている。血液を37℃で常に送りのために保持されている必要があります。

1日目:

  1. 3〜5日齢成体メスの蚊が卵を産むために血を供給されています。
  2. 吸血のために、人工膜(パラフィルム)給電方式は、以下のように使用されます。

    1. 赤血球は(血液の準備については上記を参照)〜40%のヘマトクリット(パックされたRBC 40〜60%の血清)を取得するために血清不活化熱と混合されています。これは、ガラスのフィーダに追加されます。
    2. フィーダは、暖かい水ジャケット(37℃)に接続され、膜表面への蚊のアクセスを許可するようにケージに配置されます。
    3. 蚊が〜30分間供給することが許可されています。

3日目:

  1. 女性は二日、彼らが血を餌後に卵を産むでしょう。円錐形に包まれた小さなろ紙は、ろ紙​​が湿った得ることを確認して、蒸留水を含む小さなビーカーに入れられます。ビーカーは、産卵のた​​めに蚊の一晩ケージの内部に保持されます。

4日目:

  1. 蚊の卵を含む濾紙〜300 mlの蒸留水をプラスチックトレイに配置されます。食品のピンチをトレイに追加され、卵は、次の日の間に幼虫に孵化するために許可されています。

デイズ5 - 8:

  1. 成長する幼虫は食品Cの2つの錠剤で毎日供給し、密度と人口のために監視されます。八日目(5日齢幼虫)で、幼虫の人口は、各トレイ内の食品の食品Cのと2つの錠剤をのピンチで、1トレーから〜10トレーに希釈される。 (〜30分)

DAYS 9〜12:

  1. 幼虫は12日目(9日齢幼虫)の食品Cに毎日供給され、水は新鮮な水で変更されており、食品は(食品Bと食物Cの2つの錠剤のピンチ)が追加されます。蛹はこの段階で開発を開始します。トレイは、大人のエスケープを避けるために、ネットで覆われている。 (〜80〜10分)

13日目 - 15:

3日間 - サナギは、次の2の成人に現れるが許可されています。食品は、慎重に大人のエスケープを避けるためにネットを除去することによって幼虫/蛹に毎日与えられます。

16日目:

  1. 大人の真空に接続して吸引器を介してケージに収集されます。ケージには、10%ショ糖(オートクレーブ)やケージの処理中に発生する可能性のある潜在的な砂糖の流出を浸して底部にペーパータオルのライニングに浸したさ綿の芯を持つ小さな100mlのボトルで構成されています。 (〜30〜40分)

17日目 - 21:

  1. 大人(男性と女性の両方)、彼らは次のサイクルを開始するために再び血液に供給される前に、10%ショ糖を与えた、4-5日のための昆虫館室に保管されています。同じ蚊が複数回産卵するために使用することができます。
  2. 実験や飼育に必要されていない蚊は、冷凍庫にケージを置くことによって殺すことができます。使用されるトレーやケージは、それらが再び使用する前に洗浄し、乾燥する必要があります。

:蚊飼育法と異なるラボで多少のバラツキができる各種の方法があるかもしれません。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
餌AAquaricare粉砕した魚用餌。少量を加える必要がある。
餌BPurina粉砕したキャットフード。少量を加える必要がある。
餌CPurinaキャットフード。2錠を加える必要がある。
RBC調製赤血球:ヒト血清中ヘマトクリット値40%
RPMI培地
CPD抗凝固剤
血清O+型ヒト血清
蚊用フィーダー
パラフィルム
Anopheles gambiae
10% sucrose蚊用餌
昆虫飼育室

参考文献

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bangs, M. J., Soelarto, T., Barodji,, Wicaksana, B. P., Boewono, D. T. Colonization of Anopheles maculatus from Central Java, Indonesia. J Am Mosq Control Assoc. 18, 359-363 (2002).
  2. Beier, M. S., Beier, J. C., Merdan, A. A., el Sawaf, B. M., Kadder, M. A. Laboratory rearing techniques and adult life table parameters for Anopheles sergentii from Egypt. J Am Mosq Control Assoc. 266, 266-270 (1987).
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