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$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
試薬の調製
CAがない場合10X HBSSの一部でパーコールの9部を混合することにより、株式等張パーコール（SIP）、脳あたり4 mlを、準備+ +およびMg + +。
15 mlのポリプロピレンコニカルチューブに分注し、脳当たりのCa + +およびMg + +、2 mlのなく1X HBSSで70％でSIPを準備します。
注：これは、パーコールは室温で使用されることをお勧めします、風邪を使用する場合、細胞が塊に傾向があると細胞分離が少なく効率的です。
組織の収集と均質化
氷冷した1 × HBSSで左心室経由でマウスと浸み込ませるの麻酔。脳と脊髄を摘出し、すべてのマウスを屠殺されるまで、フェノールレッドを含まないRPMIで維持する。
RPMI 3mlを含む7または15ミリリットルダウンスホモジナイザーの場所の組織は、優しく、さらに組織を解離するために締め付けフィッティング乳棒（Bサイズ）に続く、緩い乳棒（サイズ）で細胞懸濁液を作る。 RPMIで7 mlに細胞懸濁液の体積を完了します。
勾配は、セットアップ
最終的に30％のSIPを作るために細胞懸濁液に、SIPの3 mlを加え
徐々に層の70％SIPの上に10 mLの細胞懸濁液。これはプロシージャの中で最も重要なステップであり、70％、30％溶液の混合回避重力モードで設定されたピペットエイドを使用してください。非常に明確なフラットラインは70％-30％の接合部で表示する必要があります。
500G 18℃で30分間遠心操作する相間が乱されないように遠心分離機が最小限、あるいはまったくブレーキで停止することを確認してください。
転送ピペットを用いて、軽くチューブの上部からごみの層を除去し、1X HBSS 8mlを含むきれいなコニカルチューブに70％-30％の相間の2.0〜3.0ミリリットルを収集する。相間を含むパーコールは、3倍程度希釈されていることを確認し、18で500Gで反転しcentrifugre 7分で数回混ぜる℃に
懸濁します細胞染色緩衝液1mlでペレットとは、1.5 mlチューブに移すと4℃で10,000 G 1分間℃でマイクロ遠心機を使用して、1つより多くの時間を洗う
抗体染色
ヤギCD16/CD32を精製した50μlに再懸濁し、ペレットは、Fc結合部位をブロックするために細胞の染色バッファーで1:200に希釈した。 10分間氷の上にインキュベートする。血球計算板を用いて細胞を数える。
氷上で30分間抗体のカクテルミックスとインキュベート（50μl）を加えます。各抗体は、最初に最適な希釈を評価するために滴定する必要があります。レーザーと、特定のフローサイトメーターのフィルタ設定の機能に従って、選択した適切な蛍光色素の組み合わせを使用してください。
細胞の染色バッファ100〜200μlの細胞の染色バッファー、再懸濁し、ペレットに細胞を洗浄し、血球計算器で直ちに分析し、あるいは細胞は4℃のPBSで調製した2％パラホルムアルデヒド（PFA）に再懸濁し、一晩保存することができます° C 。
代表的な結果：
グラデーションを回転した後、70％-30％の相間には定義されている白いハロを持っているはず、と素朴なマウスから回収された細胞の定量は、マウスにつき3〜5 × 10 5細胞（脳プラス脊髄）でなければなりません。炎症を起こした脳は中枢神経系の侮辱や疾患モデル（図1）によって炎症細胞数の範囲かもしれない。
図1ピーク疾患におけるナイーブおよびEAE -脳から単核細胞の単離。脳細胞の懸濁液は、不連続70％/ 30％パーコール勾配を介して分離した。染色した細胞を氷上で30分間抗CD45抗体が続くのFc -ブロックとインキュベートした。細胞は、細胞の染色バッファーでリンスし、そしてLSR - IIの2％PFA買収前に修正されました。 CD45の強度は、3つの異なった集団が可視化するY軸、に測定されます。 CD45 ハイテク浸潤細胞の免疫表現型のさらなる特徴は、追加の抗体を使用して実装し、続いてフローサイトメトリーによって分析されます。