方法論記事

細菌の表面運動性を可視化するためのスウォーミングアッセイ

2025年9月26日

この記事について

要約

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出典: Morales-Soto、N. et al.、 細菌表面運動性アッセイの調製、イメージング、および定量化。 J. Vis. 経験。 (2015年)

このビデオでは、緑色の蛍光タンパク質を発現する細菌を使用して、軟寒天の表面運動性を観察する群集合アッセイを示します。タイムラプスイメージングは、協調的な拡大と巻きひげの形成を捉え、細菌の表面運動性を強調します。

プロトコル

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1. スウォームアッセイ培地の調製と接種

  1. 培地の準備
    手記:以下に説明する培地組成は、緑膿菌の巻きひげ形成研究に適用できます。緑膿菌枯草菌、および Myxococcus xanthus 表面運動性アッセイについては、表 1 の培地仕様を参照してください。
    1. 200 mlの流動好気性バイオリアクター(FAB)マイナス硫酸アンモニウム((NH4)2SO4)スウォーム培地(材料表)、0.9 gの貴寒天、および0.2 gのカサミノ酸(表1)を磁気撹拌棒で攪拌して混合します。実験間の一貫性を高めるために、少量(100〜300 ml)を使用します。
    2. 200 ml寒天/培地混合物を、22分の暴露時間、121.1°Cの暴露温度、および高速ベントオプションを使用してオートクレーブします。オートクレーブ設定により、適切な滅菌と寒天の融解が可能になりますが、寒天のカラメル化は防止されます。
      手記: 高貴な寒天はカラメル化しやすいです。細菌の運動性は、キャラメリゼ寒天で変化します。
    3. 滅菌サイクルが終了したらすぐに、蒸発による水分の損失を防ぐためにメディアボトルのキャップを閉めてください。ただし、キャッピングをきつくすると、ボトルに「真空シール」のような効果が生じる可能性があることに注意してください。
    4. 室温(RT)で撹拌しながら培地を50°Cに冷却し、滅菌1.2Mグルコース2mlを加えます。または、培地を60°Cのインキュベーターまたはウォーターバスに入れて、使用する準備ができるまで(最大15時間後)、指示に従って進めます。媒体に気泡が形成されるのを防ぐために、磁気攪拌バーを使用して完全に混合します。寒天の表面の泡は、群がることさえも防ぎます。
      手記:他のアッセイでは、必要に応じて、このステップで追加の栄養素や染料など、オートクレーブ滅菌できない熱に敏感な成分を追加します(たとえば、以下の代表的な結果に示すように、溶融寒天100mlあたり8 μlのInvitrogen Syto 63色素を使用して、M.キサンサスを画像化します)。一部の色素の添加は、ベースラインの群れの挙動に影響を与える可能性があり、非色素対照と照らし合わせる必要があります。
    5. 実験室のフードで、直径60 mmのポリスチレンペトリ皿あたり7.5 mlの滅菌培地を分注し、プレートを単層(積み重ねない)に維持します。より大きな群れの表面の場合は、直径100 mmのペトリ皿あたり25 mlの培地を分注します。均一な水平面に皿を埋めることが重要です。ブルズアイレベルを使用して、表面が水平になっているかどうかを確認します。
      手記:緑膿菌アッセイでは、プレートごとに特定の培地量を使用すると、一貫性と再現性が向上します。枯草菌および M. キサンサスアッセイの場合、手で注ぐと、特定の容量のアリコートに匹敵する結果が得られます。
  2. プレート硬化
    1. 小さなプレート(60 mm)の場合、溶融した寒天培地をフード内で30分間硬化させます(半固体と乾燥した余分な液体の両方に設定)、蓋をせずに30分間待ちます。より大きなプレート(100 mm)は、より長い硬化時間を必要とします(説明を参照)。
      手記: あるいは、一部のアッセイでは、プレートを単層で覆った(つまり、蓋をした)ベンチトップで一晩(20〜24時間)硬化させる必要がある場合があります(表1)。群れは、過剰な水分と不十分な水分の両方に敏感です。特定のラボの湿度、気流、温度により、細菌の最適な群れを促進するためにプレート硬化の変動が必要になる場合があります。
    2. 乾燥期間が終わったらすぐにプレートに接種してください。プレートを保管しないでください。
      1. 0.50%(vol/vol)のヒギンズ防水ブラックインディアインクと細菌接種物の10μlの混合物でテストプレートをスポットすることにより、「インク拡散試験」を実行します。インク/接種物の混合物が培地の表面に容易に広がる(つまり、 液滴の形を保持しない)場合、培地の乾燥にはさらに時間が必要になります。
        手記:湿度に特に敏感な種 (緑膿菌など) の場合は、簡単な「インク拡散テスト」を実行して、プレートが十分に乾燥しているかどうかを判断します。
  3. スウォームアッセイ接種
    1. 6 mlのブロス培地(詳細については 表1 を参照)に、新鮮な(室温で放置した場合<5日齢)溶原性ブロス(LB)プレート培養物から単離したコロニーを接種します。ブロス培養物を水平振とう(240 rpm)しながら、30°Cまたは37°Cで一晩(≤18時間)インキュベートします。
    2. 1〜5 μlの一晩ブロス培養物でスポッティングするか、滅菌つまようじまたはワイヤー接種針で寒天を「突く」ことにより、群れプレートを接種します。
      手記: 接種物が飛び散る可能性が低くなり、群れの表面積に水分が追加されるのを防ぐため、後者の方法を好みます。
  4. スウォームアッセイインキュベーション
    1. 一般的なアッセイの場合、スウォームアッセイプレートを30°Cまたは37°C(または枯の場合は42°C;1)—これは細菌特異的です。インキュベーション中にプレートを反転させて、余分な水分が寒天ではなく蓋に凝縮するようにします。
      手記: 温度は表現型と動態に影響を与える可能性があります。緑 膿菌 の群れの場合、37°Cでのインキュベーションは、30°Cでのインキュベーションよりも速い成長と群れの拡大につながります。ただし、これらの群れの形態は、この温度の変化によって異なることがよくあります。
    2. タイムラプスイメージングの場合は、スウォームプレートをイメージングステーションに移す前に、適切な温度でインキュベートします(詳細については 、表1 を参照)。
      手記: このイメージング前のインキュベーションにより、群れは新しい環境に移動される前に発達を開始し、定着することができますが、これは群れの運動性にとって最適である場合とそうでない場合があります。

2. 表面運動性アッセイの巨視的イメージング

  1. タイムラプスイメージングの場合、イメージング前のインキュベーション期間の後、市販の in vivo イメージングステーション内の透明なイメージングプレートにスウォームアッセイプレートを置きます。一度に最大6枚の直径60mmまたは4枚の直径100mmのプレートを撮影できます。カメラは撮像面の下から画像を撮影するため、光路が遮られないようにプレートを反転させます。あるいは、実験中は30°Cまたは37°C(表1)でインキュベートし、設定された時間間隔でイメージングするプレートをインキュベーターから取り出します。
  2. ペトリ皿の蓋を、接種した培地を保持するプレートの上に直立させます。イメージング中の過度の乾燥を防ぐためにペトリ皿の蓋を水で満たし、実験中ずっと湿度を維持するために別の透明なトレイを使用してセットアップ全体を囲みます。
  3. 分子イメージング(MI)ソフトウェアを使用して、 表2に記載されているイメージング設定を使用して室温でアッセイを実行します。タイムラプスイメージングの場合は、必要な手順と仕様を備えたプロトコルを設定します。

表1:表面運動性アッセイ調製の仕様。 膿菌枯草菌および M. キサンサスの表面運動性アッセイ調製仕様が含まれています。

 緑膿菌緑膿菌巻きひげ形成研究枯草菌M.キサンサス
オーバーナイトブロス培地FABプラス30 mMグルコースFABプラス30 mMグルコースポンドCTT(複合媒体)
一晩のブロス培養インキュベーション温度37°C37°C37°C30°Cで30時間
スウォームメディア工場FABマイナス(NH4)2SO42%(重量/体積)LBCTTの
スウォームメディア:追加コンポーネント12 mMグルコース10%(wt / vol)カサミノ酸(CAA)、12 mMグルコース該当なしSYTO® 64a
寒天タイプ寒天、高貴寒天、高貴造粒寒天寒天、高貴なアフィメトリックス
寒天濃度(wt / vol)0.45%0.45%0.60%1.50%
スウォームプレートサイズ60ミリメートル60ミリメートル100ミリメートル150ミリメートル
プレートあたりのメディア量7.5ミリリットル7.5ミリリットル手作業で注がれた手作業で注がれた
スウォーム培地の設定/乾燥方法フード;プレートは覆われていないフード;プレートは覆われていないベンチトッププレートを覆うベンチトッププレートを覆う
スウォーム培地の設定/乾燥時間30分30分一晩(20 -24時間)一晩(20 -24時間)
スウォームアッセイのインキュベーション温度30または37°C30°C37°C30°C
タイムラプスイメージングのためのインキュベーション30°Cで4時間以上30°Cで4時間以上37°Cで2時間12時間RT
タイムラプスキャプチャの長さ24時間24時間10時間66時間
タイムラプス設定1コマ/10分1コマ/10分1コマ/6分1コマ/10分
a オートクレーブ滅菌後に追加されます。  

 

表2:イメージング仕様。 細菌表面増殖の赤と緑の蛍光とルミネセンスイメージングのためのBrukerイメージングステーションの仕様

信号緑色蛍光赤色蛍光I赤色蛍光II発光
タンパク質または染料緑色蛍光タンパク質(GFP)mCherryプロテインまたはナイルレッドラムノ脂質染色シト® 64ルシフェラーゼ 由来の ルシフェラーゼ
励起波長(nm)480 ± 10540 ± 10590 ± 10オフ
発光波長(nm)535 ± 17.5600 ± 17.5670 ± 17.5フィルターなし
露光時間(秒)306060240
Fストップ4.04.02.51.1
視野角(mm)190190140120
焦点面(mm)27.527.512.24
ビニング (ピクセル)何一つ2 x 2何一つ8×8

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
試薬:    
FABミニマルメディア:   ~4週間ごとに準備してください。ナノピュアH2Oで1 Lにトッピングします。
(NH4)2ソー4シグマA44182グラム膿菌 巻き ひげ形成研究では使用されていません。
Na2HPO4 x 7H2Oシグマ・アルドリッチS93909グラム 
KH2PO4シグマP56553グラム 
NaClBDHのBDH80143グラム 
MgCl2 x 6H2O 溶液 (198 g/L)フィッシャーサイエンティフィックM331ミリリットル 
CaCl2 x 2H2O 溶液 (14 g/L)フィッシャーサイエンティフィックC791ミリリットル 
微量金属溶液(下記参照)該当なし該当なし1ミリリットル 
     
微量金属溶液:   ナノピュアH2Oで1 Lにトッピングします。ガラス瓶に入れてかき混ぜ、ホイルで覆います。
CaSO4 x 2H2Oシグマ・アルドリッチ255548200ミリグラム 
MnSO4 x H2Oシグマ・アルドリッチM763420ミリグラム 
CuSO4 x 5H2OフィッシャーサイエンティフィックC49320ミリグラム 
ZnSO4 x 7H2Oシグマ・アルドリッチZ475020ミリグラム 
CoSO4 x 7H2Oシグマ・アルドリッチC676810ミリグラム 
ナムーオ4 x 2H2OシグマS664610ミリグラム 
H3BO3フィッシャーサイエンティフィックA745ミリグラム 
FeSO4 x 7H2Oシグマ・アルドリッチF7002200ミリグラム 
     
CTTメディア:   必要に応じて準備します。ナノピュアH2Oで100mlまでトッピングします。
Tris-HCl、1 M溶液(pH 8.0に調整)アムレスコ2341ミリリットルナノピュアH2Oで1 Mストック溶液を調製し、pHを8.0に調整し、ろ過滅菌します(0.2 μmの細孔)。
K2HPO4、1 M溶液(pH 7.6に調整)シグマ・アルドリッチP37860.1ミリリットルナノピュアH2Oで1 Mストック溶液を調製し、pHを7.6に調整し、ろ過滅菌します(0.2 μm細孔)。
MgSO4溶液フィッシャーサイエンティフィックM650.8ミリリットルナノピュアH2Oで1 Mストック溶液を調製し、ろ過滅菌(0.2 μm細孔)します。
カシトーンBD診断2259301グラム 
     
追加の試薬:    
LBブロス、レノックスBD診断2402302 % (重量/体積) 
D-(+)-グルコースシグマ・アルドリッチG5767オーバーナイトブロス培養の場合は30 mM。12 mM(スウォームメディア用)ナノピュアH2Oで1.2 Mフィルター滅菌原液を調製し、オートクレーブ滅菌後に培地に加えます。
カサミノ酸(CAA)アムレスコJ8510.10 % (重量/体積)膿菌 の巻きひげ形成研究に推奨されます。オートクレーブ滅菌前に培地に追加します。
寒天、高貴シグマ・アルドリッチA54310.45 % (重量/体積)P.aeruginosa表面運動性研究のための好ましい貴宝寒天オートクレーブ滅菌前に培地に追加します。
寒天、高貴アフィメトリックス109071.50 % (重量/体積)M. xanthus 表面運動性研究に使用されます。緑膿菌の運動性研究には推奨されません。オートクレーブ滅菌前に培地に追加します。
寒天、造粒フィッシャーサイエンティフィックBP14230.60 % (重量/体積) 
ヒギンズ防水ブラックインディアインクヒギンズHIG442010.50 % (ボリューム/ボリューム)インクを接種物と混合して、スウォーム培地の表面水分をテストします。
SYTO® 64赤色蛍光核酸染色インビトロゲンS-11346 溶融寒天100mlあたり4μl( 緑膿菌の場合)または8μl( M.キサンサスの場合)のSYTO® 64(オートクレーブ滅菌後に添加)を使用します。
     
関連材料と機器:    
ペトリ皿、滅菌、150 mm x 15 mm (直径 x 高さ)VWRの25384-326  
シャーレ、滅菌、100 mm x 15 mm (Dia.x H)VWRの25384-342  
シャーレ、滅菌、60 mm x 15 mm (直径 x 高さ)VWRの25384-092  
生体内Xtreamブルカー  表面運動性研究の巨視的イメージングに使用します。http://www.bruker.com/products/preclinical-imaging/opticalx-ray-imaging/in-vivo-xtreme/overview.html

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