1. 顕微鏡試料の調製
手記: 顕微鏡で観察する細胞は顕微鏡のカバースリップに置かれ、その後アガロースパッドで栄養分を供給します。カバースリップはプラスチックや金属のフレームに接着され、機械的な支持を提供します。顕微鏡検査の準備として、ステップ 2.1から2.3に記載されたように、1%アガロース/TPM/0.2%CTTの大型パッドを事前に準備する必要があります。ここで使用されている特定の製品については、 材料表 もご参照ください。
1. 500 mLのTPMバッファー(10 mM Tris-HCl pH 7.6、1 mM KH2PO4 pH 7.6、8 mM MgSO4)を準備し、ボトルトップフィルターを使ってオートクレーブまたはろ過で滅菌します。
手記: 滅菌バッファーは室温で数ヶ月間保存可能です。
2. 0.2%CTTを含む1%アガロース顕微鏡溶液を準備します(アガロース1gと80 mLのTPMバッファーおよび20 mLの1% CTT培地を混合)。電子レンジでアガロースが溶けるまで加熱します。
手記: 0.2%のCTTは細胞の成長を許し、飢餓を防ぐのに十分です。顕微鏡培地中のCTT濃度が高いと、背景蛍光が高くなります。
3. 溶融アガロースを厚さ0.5cmまでペトリ皿に詰めます(11.5cm×11.5cmの正方形ペトリ皿には約60mLの溶融アガロースが必要です)そして室温まで冷ます。
手記: アガロースパッドは湿度の高い環境で4°Cで最大2日間保存可能です。
1. 使用前に1%アガロース/TPM/0.2%CTTパッドを32°Cで少なくとも15分間予温。
手記: 顕微鏡検査のために細胞を準備するには、 手順2.4から2.8に従ってください。
4. 滅菌ガラスカバースリップ(60 mm x 22 mm、厚さ:0.7 mm)を中央に穴の開いたプラスチックまたは金属フレームに置きます(図1A参照);このフレームは薄いカバースリップの機械的支持として機能し、顕微鏡観察中のドリフトを減らすのに役立ちます。カバースリップをテープでフレームに固定します。
1. フレームを準備するには、厚さ1mmの金属板から75mm×25mmのフレームを切り出し、中央に適切な大きさの穴(この実験では20mm×30mm)を開けます。
5. カバースリップに指数関数的に増殖した M. xanthus 細胞を10〜20μL追加します。
6. 細胞にフィデューシャルマーカーとして蛍光の0.5μm微球を追加し、タイムラプス記録における細胞やタンパク質の追跡を簡素化する。
1. 微小球をTPMバッファーで1:100希釈し、4°Cで最大数ヶ月保存します。使用前によく振ってから、希釈した微小球を5〜10μL加えてください。
手記: ここでは、すべての共通の青、緑、黄、赤蛍光チャネルで蛍光を発するマイクロスフィアが使用されました。
7. 大きな予温された1%アガロース/TPM/0.2% CTTパッドのカバースリップほどの大きさの小さなパッドを切り取り、セルの上に置きます(図1B)。蒸発を防ぎ、細胞を湿った環境に保つために、1%アガロース/TPM/0.2%のアガロースパッドの上にカバースリップを敷きます。
手記: カバースリップだけで少なくとも2時間は大きな蒸発を防ぎます。より長いタイムラプス記録の場合、1%アガロース/TPM/0.2%CTTパッドとカバースリップサンドイッチは蒸発を防ぐためにパラフィンフィルムで密封する必要があります。
8. 顕微鏡サンプルを32°Cで15〜20分間培養し、細胞がアガロースパッドの底に付着するのを待つ。それからタイムラプス顕微鏡の記録を始めてください。