多数の遺伝子操作及び/または遺伝子、タンパク質、細胞、および/または生体物質の心筋内注射は、急性虚血/再灌流傷害およびマウスにおける慢性的リモデリングの研究に時間の次元に重ね合わされている。このビデオでは、虚血/再灌流、恒久的な冠動脈結紮、および心筋内注入の研究のための顕微手順を示しています。
多数の遺伝子操作及び/または遺伝子、タンパク質、細胞、および/または生体物質の心筋内注射は、急性虚血/再灌流傷害およびマウスにおける慢性的リモデリングの研究に時間の次元に重ね合わされている。このビデオでは、虚血/再灌流、恒久的な冠動脈結紮、および心筋内注入の研究のための顕微手順を示しています。
マウスモデルは、心筋の急性損傷および慢性的なリモデリングをin vivoで研究するための貴重なツールです。個体全体または心筋への遺伝子改変や、さまざまな生物学的および/または合成材料の登場により、これらを組み合わせることで、急性虚血性損傷の程度を軽減し、心筋リモデリングに伴う心不全の発症を抑制できる大きな可能性があります。
ここでは、この微小外科手術を確実に行うための方法と材料、および一時的(再灌流あり)または永続的な冠動脈閉塞研究や心筋内注射に用いる修正方法について提示します。術中に観察される心臓への影響、および実験終了時の評価に加えて、組織学的評価を行うことで有効性を検証します。
簡潔に述べると、外科的手順の準備には、マウスの麻酔、胸部の除毛、および手術部位の消毒が含まれます。気管内挿管は、光ファイバーライトを用いた経食道照明によって行います。その後、チューブを人工呼吸器に接続します。胸部を切開し、大胸筋を露出させて切開し、肋骨を確認します。虚血/再灌流研究では、心臓上に配置した1 cmのPEチューブに結紮線を結びつけ、閉塞/再灌流を個別に調整できるようにします。心筋内注入には、滅菌済みの30ゲージ面取り針を備えたハミルトンシリンジを使用します。心筋操作が完了した後、肋骨、大胸筋、皮膚の順に縫合します。ラインブロック麻酔は、皮膚を閉じる前に筋肉層に塗布する、滅菌生理食塩水で希釈した0.25%マルカインによって行います。マウスに生理食塩水を皮下注射し、腹臥位で安定するまで保温チャンバーに入れます。その後、動物飼育室に戻し、組織採取まで標準的な条件下で飼育します。屠殺時にマウスを麻酔し、KClまたはBDMを用いて心臓を拡張期に停止させ、生理食塩水で洗浄した後、固定液に浸漬します。続いて、処理、包埋、切片作成、および組織学的染色の一連のルーチン手順を実施します。
マウスの非外科的挿管および記述されている微小外科的操作は、習得し再現性を得ることが技術的に困難なモデルです。これらの手順は、時間的な閉塞や再灌流、または心筋内注射のための結紮操作を一定に行うことの難しさと相まって、生存率に影響を及ぼす可能性があるため、最適化と一貫性が極めて重要です。
代表的な結果:
正しく完了したら、マウス(雄:年齢8〜10週間、22〜28グラム、女性:年齢10〜12週、20〜26グラム)の生存率は以下のとおりです。以上、急性虚血/再灌流と虚血プレコンディショニングの実験では90%以上恒久的な動脈の結紮の研究で85%、および心筋内注射のための約80%。初期の損傷がより容易に目に見える代謝の変化ではなく、構造的なことですので、虚血/再灌流における梗塞サイズの決定と虚血プレコンディショニングの実験がLADで提供されていない心臓を灌流される大動脈に1パーセントエバンスブルー色素を注入することによって実行されます(図1A)。心臓が削除され、横方向に半分に切断されると、組織は梗塞サイズ(図1B)を測定するために2,3,5 - トリフェニルクロリドの1%溶液中でインキュベートされる。領域が同じ倍率で撮像さマイクロメータを使用して較正することができますサイオンやNIHイメージソフトウェアを使用して測定されます。これらの数値は、リスク/左心室と梗塞のリスクが11でサイズ/エリアで面積を計算するために使用されます。違いは体重と心臓の大きさとそのケアの変化をもたらすことができる株は、比較のために心臓重量、体重、または脛骨の長さにこれらの対策を正規化するために注意が必要です。
このような壊死などの総構造変化、減肉、および心室拡張の恒久的な動脈の結紮の結果。左心室への相対的な梗塞サイズおよび壊死に対する治療および/または時間の効果の比較、チャンバ領域、永久閉塞モデル(図2A)の隔壁と左心室自由壁の厚さもサイオンやNIHのイメージングを使用して測定することができます。ソフトウェア。 picrosirius赤色/緑色で速く(図2B)とコラーゲンの染色は、壁の補強8-10の機能的な指標に相関insterstitial線維症を測定するために使用することができます。図3の画像は、恒久的な動脈の結紮は、次の心臓の国境地帯に注入6ulソリューション(エバンスブルー)の分布を表します。それはtransmurallyも基地に向かってだけでなく、けがの方向に進行していることに注意してください。

図1。 A.エヴァンのブルーは前に切除の大動脈に注入する。このイメージは、心臓(ステンドグラス)や閉塞部位(非染色)の潅流領域を示す。B.エヴァンのブルーとTTCは、急性虚血/再灌流傷害に続く染色。これはunoccluded地域だけでなく、代謝的に実行可能な組織のTTC染色(赤)を染色した青色色素の分布を示す代表的な画像(20倍)です。壊死領域が染色されないので、これらは(概説)薄いままです。

図2。 A.ヘマトキシリンおよびエオシン染色。これは、4日後に心筋梗塞で梗塞領域を介して横方向に切断マウスの心臓(20倍)のH&E染色の代表画像(20倍)である。 *は、組織の壊死を示し、矢印のポイント肉芽組織に、RV =右心室とLV =左心室。B. Picrosirius赤色と緑色で速く染色。これはpicrosirius赤/ポストMI 4週間でのマウスの心臓の断面の高速グリーン染色の代表画像(20倍)。細胞質の汚れの緑とコラーゲン線維が赤です。

6ul心筋内注射後図3。エバンスブルー色素染色の分布。これは、すぐに冠動脈結紮(12倍)以下の国境地帯で6ul心筋内注射した後、心臓全体にエバンスブルー色素のグローバルおよび経壁分布を示す代表的な画像です。
冠状動脈性心臓病の疫学的および財政的に重要な公衆衛生上の問題であり続けている。かなり基本的な研究はまだ怪我して改造を続行するメカニズムとそれらがどのように臨床使用するために開発される場合に潜在的な治療法はこれらのプロセスを調節することを理解するのに必要です。げっ歯類は、最も一般的に使用され、遺伝子改変マウスの広い範囲が利用可能なこの種のより魅力的なモデルになりますされています。
マウスや他の種の違いがありますが、マウスモデルに多くの利点があります。簡単な解剖スコープまたは虫眼鏡を使用しても点灯条件は、血管を容易に見ることができるようになります(血管系の詳細な肉眼解剖学のために、サルト- Tellez らを参照してください。、2004 13)。 25グラムのマウスの全血液量が2ミリリットル14よりも小さいので、手術後の死亡のリスクを減らすために、それは大型船を切断することを避けるために非常に重要です。過度の出血が発生した場合には、圧力やピンポイントの焼灼の穏やかなアプリケーションは、出血を止めるために使用することができます。
この手順は、さまざまな方法で変更することができます。例えば、マウスは、イソフルラン、ケタミン/キシラジン、またはペントバルビタールナトリウムと適切な選択はプロトコル15から18までの期間によって決定されるを使用して麻酔することができます。つま先-ピンチの反射は麻酔の深さの最も一般的に使用されるインデックスです。さらに、長期生存の確率を向上させるために、いくつかの研究者が致死性不整脈19,20の発生率を減らすためにリドカイン等の抗不整脈薬を使用するしかし、それは、これは最近、急性の抗アポトーシス特性を有することが示されていることを考慮する必要があります。モデル21。また、手術後の痛みを軽減する、そのようなブプレノルフィンなどの鎮痛薬は、手術3,16,17,22,23後の最初の48時間に投与することができる。 (特に長いプロトコルのため)手術中の体温を維持するために、加熱パッド付きシリーズの直腸プローブは、多くの場合、等温パッドの代わりに使用されます。永久的な閉塞のため、梗塞の大きさは、合字の位置を調整することによって変更されることがあります;閉塞(s)と再灌流(s)の持続時間は変更することができます:虚血/再灌流および/または虚血前またはpostconditioning用と心筋内注射(例えば、細胞、蛋白質)のために,1 - 3注射の場所が存在することができ、注入あたりの体積は15μlの24まですることができます。細胞が注入されている場合は針の内径は、シェアーリングを避けるために十分な大きさであるので、(通常は26〜30)5,25,26を使用するニードルのゲージは、細胞の大きさに基づいて選択する必要があります。手術によって引き起こされる炎症性プロセスによる困惑を避けるために、いくつかの研究者は手術27から29の後の任意の時点で閉胸のマウスの心臓を閉塞し、reperfuseにex vivoで操作されるスネアを使って報告している。さらに最近では、ガオら 30は、一時的および永久的な閉塞が換気を必要とせずに実行できると、いくつかの研究室が閉まる胸心筋内注射25,31を実行するために超音波を使用し始めていることが示されている。
マウスでは冠動脈を結紮することの実現可能性を実証する最初の研究、1954年32にジョンズとオルソンによって公開されて以来、多くの人はこのモデルを採用し、心筋障害とリモデリング3,33-45のさまざまな側面を研究するためにそれを変更しました。サイズ、生殖能力、購入とメンテナンスのため、比較的少ない費用の点でマウスの性質は、この種の生理学的および病態生理学的研究の幅広い魅力的なツールになります。 in vivoでの進歩46から49 のイメージング技術の微細化だけでなく、大規模ゲノミクスとプロテオミクスを実行し、分析することを意味し、薬剤のスクリーニング、細胞ベースおよび/ またはタンパク質の治療だけでなく、生体50から64の効果、組み合わせユビキタスまたは組織特異的トランスジェニックやノックアウト/変異マウスがもたらす遺伝子操作のますます広い範囲で、心筋梗塞のマウスモデルは、間違いなく急性心筋傷害と長期的なリモデリングを評価する上で貴重なツールであり続けるでしょう。したがって、確実にかつ再現性これらの実験を行うためにできることで疑う余地のない価値があります。
私は彼らの警戒と支援のために私の研究と比較医学科を支援する資金を提供するための研究と大学院の専攻を感謝したい。私も彼らの助けのための支援と指導のための生理学教室だけでなく、私の研究室の学生や技術者を認識したいと思います。最後に、私はマウスのマイクロサージェリーを学習した時にトレーニングの機会のために私のポスドクのメンター、博士チャールズE.ムリーロードを、感謝したいと思います。
| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| ロングヴァンナ剪刀 | George Tiemann & Co. | 160-159 | |
| マイクロ解剖用剪刀 | George Tiemann & Co. | 160-161 | |
| ピンセット – 直型、1x2歯 | George Tiemann & Co. | 105-205 | |
| メスハンドル #3 | George Tiemann & Co. | 105-64 | #10 滅菌ブレード |
| ピンセット – 半曲型、ギザ付き | George Tiemann & Co. | 160-19 | |
| 組織剪刀 | George Tiemann & Co. | 105-410 | |
| カストロビエホ持針器 | Miltex Inc. | 18-1828 | |
| クック眼瞼開瞼器 | Miltex Inc. | 18-63 | |
| Surgipro II 8-0 | Suture Express | VP-900-X | |
| Prolene 6-0 | Suture Express | 8776 | |
| Germinator 500 ビーズ滅菌器 | Cellpoint Scientific | 65369-1 | |
| Deltaphase 等温パッド | Braintree Scientific, Inc. | 39DP | |
| ハミルトンシリンジ - 25μl | Hamilton Co | 80430 | |
| 30G 鋭角針 | Hamilton Co | 7803-07 | |
| ベンチレーター | Kent Scientific | TOPO |