1. 9日目(午前):酵素測定のための培養を開始します。
- 分光光度計プレート上のマルチチャンネルピペットを使用して培養物を再懸濁し、125 μLを移します(測定OD600).
手記:注意:OD600が0.3〜0.6未満の場合は、気泡を避けるために最後の一滴を分注しないでください、読み取り値に基づいて残りの細胞をさらに1〜2時間インキュベートします。このステップで使用した125 μLの培養物は、ユーザーの裁量で廃棄するか、元のディープウェルブロックに戻すことができます。
- ディープウェルブロックの残りの細胞を3000 x g、21°Cで10分間遠心分離し、反転させて上清を除去します。
- 200 μLのZバッファーとボルテックスを加えます.
手記:表 1 の Z バッファーのレシピを参照してください。
- 3000 x g、21°Cで5分間遠心分離し、上清を反転させて除去します。
- 20μLのZバッファーとボルテックスを加えます。
- 凍結融解サイクルに耐えることができるシーリングホイルでプレートを覆います。ヒュームフードで液体窒素を使用して4サイクルの凍結/融解を行い、次にウォーターバスで42°C(各2分)で凍結/融解します。
- Zバッファー/β-メルカプトエタノール(β-ME)/オルト-ニトロフェニル-β-ガラクトシド(ONPG)を200 μL加えます(それぞれ12 mL、21 μL、8.4 mgで20 mLの溶液が得られます。常に新鮮な溶液を調製してください)
手記:ONPGが適切に溶解するまでには時間がかかるため、このステップに到達する1時間前に溶液を準備します。ONPGは、β-ガラクトシダーゼ活性を測定するための基質として機能します。
- 30°Cで最大17〜24時間インキュベートします(その間に確認し、色が早く発生する場合は次のステップに進みます)。
2. 10日目(午前):反応を止めて測定します。
- 110 μL 1M Na2CO3 を加えて反応を停止し、時間を記録します。
- ボルテックスし、3000 x g、21°Cで10分間遠心分離します。
- マルチチャンネルを使用して125μLの上清を採取し、OD420.
を測定します
手記: 気泡を避けるために、最後の一滴を分配しないでください。
表 1: プロトコールで使用される溶液のレシピ。この表は、アッセイで使用される主要なバッファーのストック溶液とワーキング溶液のレシピを示しています。
| TEバッファー10X(10ml) | |
| 願わしい | 在庫から |
| 1000mM Tris-Cl (pH 8.0) | トリス1M1mL |
| 10mM EDTA(pH 8.0) | 200uL の EDTA 0.5M |
| 水でボリュームを補う | |
| TE/LiAc (10ミリリットル) | |
| 願わしい | 在庫から |
| 1倍 | 1mL TE 10倍 |
| 0.1M LiAc | 1mL LiAc 1M |
| 水でボリュームを補う | |
| TE/LiAc/PEG (50 mL) 50% | |
| 願わしい | 在庫から |
| 1倍 | 5 mL TE 10X |
| 0.1M LiAc | 5 mL LiAc 1M |
| 40 mL PEG3350 | |
| Zバッファー(1L)pH 7.0 | |
| Na2HPO4 16.1gの七水和物または8.52gの無水物 |
| NaH2PO4 5.5gの水和物または4gの無水物 |
| KCl 0.75g |
| MgSO4 0.246gの水和物または0.12gの無水物 |
| HClでpHを維持する |
| すべての溶液は使用前に厳格化されています。 |
| プロトコルで使用される培地および寒天プレート(YPDA、SD-Ura;SD-Trp-UraおよびSD-Trp-Ura寒天プレート)は、Y1Hと同じレシピに従います |