>注:バッファーは0.22μmフィルターを使用してろ過し、真空で1時間脱気する必要があります。
1. 脂質ベシクルの調製
- 2mLのガラス管を使用してください。各脂質、1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DOPC)、1-パルミトイル-2-オレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(POPC)、1-パルミトイル-2-オレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホ-L-セリン(POPS)、およびコレステロール(Chol)をクロロホルム/メタノールの混合物(50:50 v/v)に溶解して、透明な5 mM脂質溶液を調製します。1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホ-(1'-ミオ-イノシトール-4',5'-ビスリン酸)(PI(4,5)P2)をクロロホルム/メタノール/水(20:9:1 v / v)の混合物に溶解します。
- 溶解した脂質を、POPC/POPS (80/20)、POPC/PI(4,5)P2 (95/5)、POPC/POPS/Chol (60/20/20)、POPC/POPS/PI(4,5)P2/Chol (60/17/3/20)、POPC/DOPC/POPS/PI(4,5)P2/Chol (37/20/20/3/20) の所望のモル比で 10 mL ガラス管に組み合わせます<br />
手記:総脂質の最終量は500μgです。
- 窒素の乾燥流を使用して有機溶媒を蒸発させます。脂質混合物を高真空(凍結乾燥)システムに3時間放置して、溶媒の残留微量を除去します.
手記:これにより、乾燥した透明なフィルムが得られます。
- 脂質フィルムを1 mLのクエン酸緩衝液(10 mMクエン酸三ナトリウム、150 mM NaCl、pH 4.6)に再懸濁します。脂質懸濁液を60°C(この温度は、混合物中の最も高い融解脂質の相転移温度より約10°C高い)で水浴中で30分間インキュベートし、5分ごとに激しくボルテックスします
手記:これにより、大きなマルチラメラ小胞(MLV)が形成されます。懸濁液を転移温度より上に保ちます。
- 直径50 nmの細孔径ポリカーボネートメンブレンを装備した押出機(この場合は60°C)を、転移温度(ここでは40〜50°C)より高く30分間予熱します。
- MLV懸濁液を予熱した押出機にロードし、混合物をポリカーボネート膜に31回穏やかに通して、小さなユニラメラベシクル(SUV)を形成します。温度を遷移温度より高く保ちます。
- SUV懸濁液を2mLのプラスチック反応容器に移し、クエン酸緩衝液(ステップ1.4を参照)を加えて、最終容量を2mLにします><。
手記:これにより、最終的な脂質濃度は 250 μg/mL になります。
2. 水晶センサーの取り扱い
>注:クォーツセンサーは常にピンセットで取り扱ってください。
- ポリテトラフルオロエチレンホルダーに挿入した4つのセンサーを2%SDS溶液中で≥30分間インキュベートし、超純水で広範囲に洗浄してSDSを完全に除去し、乾燥アルゴンまたは窒素の流れを使用して乾燥させます。
- プラズマ洗浄システムを使用して、汚染物質を完全に除去します。ドライセンサーをプラズマ洗浄チャンバーに挿入し、チャンバーを排気し、酸素で3倍に洗い流します。プラズマクリーナーの電源を入れます。次のプロセスパラメータを使用します:1 x 10-4 Torr圧力、高無線周波数(RF)電力、および10分のプロセス時間。機械の電源を切り、センサーを取り出します。
3. マイクロバランスの操作
>注:4つの温度制御フローチャンバーを並列構成にし、ペリスタルティックポンプに接続し、流量を80μL / minに設定したマイクロバランスシステムを使用しました。オープンフローモードでは、バッファーはフィーダーリザーバーから受入タンクにポンプで送られました。ループモードでは、受入タンクをフィーダーリザーバーに接続して閉ループを生成しました。温度は20°Cに設定しました。
- プラズマ洗浄されたセンサーをピンセットを使用して、4つのフローチャンバーに慎重にドッキングします。漏れの原因となる可能性のあるチャンバーやチューブへの圧力やねじれを避けてください。
- クエン酸バッファー(10 mM クエン酸三ナトリウム、150 mM NaCl、pH 4.6)でシステムをオープンフローモードで 10 分間
でフラッシュします。
手記:これにはちょうど3.2 mLのバッファーが必要ですが、余分なバッファー(10 mL)を使用することをお勧めします。
- プログラムを起動します。ソフトウェアを使用して、周波数と散逸のベースラインが安定するまで、ソフトウェアを使用して最初の基本音(n = 1st)と倍音(n = 3rd-13th)の周波数と散逸の変更の記録を開始します(これには約40〜60分かかります)
手記: 周波数ノイズレベル(ピークツーピーク)は0.5Hz未満で、散逸については0.1・10-6未満で、最大ドリフト(水溶液中)は周波数で1 Hz / h、散逸で0.3・10-6 / hである必要があります。
- ベースラインが安定したら、SUV懸濁液をクエン酸緩衝液(小さなチューブに2 mL)で塗布します。反応容器を使用して、デッドボリュームの1.5mLを除去します。次に、ループフローモードでシステムを閉じます。周波数/散逸シフトをさらに10分間記録します。
手記:この間、小胞はSiO2表面に広がり、融合して連続した二重層を形成します(図1、図2、図3のステップ2)。センサーの表面へのSUVの吸着は2相であり、散逸の周波数の最小値と最大値が一般的です。26 〜 29 Hz(表1を参照)からの特性周波数シフト(脂質組成による)を伴う安定した新しい周波数/散逸ベースラインは、表面上に連続した二重層を示しています。
- SLB が安定している場合(ステップ 3.4 を参照)、ランニングバッファー(10 mM HEPES、150 mM NaCl、pH 7.4)を使用して、必要な Ca2+ 濃度(実験に応じて 50 μM から 1 mM CaCl2 の範囲)のオープンフローモードで 40 分間システムを平衡化します。
- タンパク質(ここではAnxA2)をCa2+を含むランニングバッファーに添加します(ステップ3.5を参照)。平衡定常状態に達するまで、ループフローモードでタンパク質の適用を実行します(図1、図2、および図3のステップ3)
手記:タンパク質濃度は1〜400nMの範囲であり得る。タンパク質の吸着は、質量(タンパク質)の吸着を反映した濃度依存的な周波数シフトを引き起こします。
- オープンフローモードで、ランニングバッファー中の Ca2+ イオンを 5 mM EGTA でキレート化することにより、結合タンパク質を解離します (図 1 および図 2 のステップ 4).
手記:SLBベースラインへの周波数と散逸の回復は、タンパク質結合の完全な可逆性を示しています。会合解離サイクルを繰り返すことで、異なる濃度やタンパク質を比較することができます。