人間の福祉に関する制度的、国内的、国際的なガイドラインに準拠して実施され、地元の施設審査委員会によって審査されています。
1. 末梢血単核細胞(PBMC)の単離
- 試薬の調製
- PBS/EDTAを調製する:リン酸緩衝生理食塩水(PBS)を調製し、2 mMエチレンジアミン四酢酸(EDTA)を補充します。この溶液を0.2μmフィルターでろ過して滅菌します。PBS / EDTAを4°Cで保存し、室温まで温めてから使用してください。
- 染色緩衝液の調製:リン酸緩衝生理食塩水(PBS)と2%ウシ胎児血清(FBS)、10 mM 4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジンエタンスルホン酸(HEPES)、および2 mMエチレンジアミン四酢酸(EDTA)を補給します。この溶液を0.2μmフィルターでろ過して滅菌します。
- ブラッドコーンから血液を収集
手記:血液コーンには、病院からの血小板フェレーシス後に収集された白血球成分が含まれています。血液をヘパリンまたはEDTAチューブに採取する場合は、血液をPBSで1:1の比率で希釈し、手順1.3に進みます。バフィーコートを受け取った場合は、バフィーコートをPBSで1:2の比率で希釈し、手順1.3に進みます。
- コーンの両端をカットして、血液が50mlのチューブに流れ出るようにします><。
コーンには通常10mlの血液が含まれていることに注意してください。
- 30 mlのPBS / EDTAを含む鈍い端のシリンジを使用してコーンを洗浄し、50 mlのチューブに集めます。.
- PBS / EDTAで血液をさらに希釈して、最終容量を80 mlにします。.
- 密度遠心分離によるPBMCの単離
- 15 mlのFicollをそれぞれ4本の新鮮な50 mlチューブに分注します。
- 25 mlの血清ピペットを使用して、希釈した血液20 mlをFicoll層に加えます。.50 mlチューブを45の角度で保持し、間相を乱さないように注意してください。.
- チューブをブレーキなしで805 x gで30分間、20°Cで遠心分離します。
- プラズマ層を取り外し、プラズマ層のすぐ下にあるPBMCのリングをパスツールピペットで収集します。PBMCの4本のチューブを2本の50mlチューブに組み合わせます。PBMCの下の透明層を収集しないように注意してください。
- PBMCのチューブあたり50 mLの最終容量にPBS/EDTAを添加し、ブレーキ付きで548 x gで10分間、20°Cで遠心分離します。
- 上清を吸引し、各チューブ内のペレットを25 mLの染色バッファーで再懸濁し、1本の50 mLチューブに結合します。
- 367 x gでブレーキ付きで5分間、4°Cで遠心分離します。
- 上清を吸引し、ペレットを10 mLの染色緩衝液で再懸濁します。
2. 磁気分離による単球濃縮
- セル番号の決定
- PBMC細胞懸濁液20 μlをトリパンブルー20 μlと混合し、サイトメーターを使用して生細胞の数をカウントします。
- セル懸濁液を367 x gで遠心分離し、ブレーキをかけて4°Cで10分間保存します。
- 上清を完全に吸引し、細胞ペレットを染色バッファー80μlあたり107細胞の濃度に再懸濁します。
- 磁気ラベリング
- 107細胞あたり20 μlのCD14マイクロビーズを加え、よく混合し、2 - 8 °Cで15分間インキュベー
トします。
- 107細胞あたり1 mLの染色緩衝液を加えて細胞を洗浄し、ブレーキ付き367 x gで10分間、4°C遠心分離します。
- 上清を完全に吸引し、染色バッファー50μlあたり107細胞の濃度で細胞ペレットを再懸濁します。
- 磁気分離
- 最大2 x 10 8個の合計セルに対して中サイズの列を使用します。
手記:データシートで推奨されている総セル数とCD14+セル数に応じて、適切なカラムとセパレータを選択してください。
- カラムを適切なセパレーターの磁場に置き、500 μlの染色バッファーですすいでカラムを調製します。
- 細胞懸濁液をカラムにピペットで移し、カラムを通過する非標識細胞を15 mLチューブで回収します。
- 新しい15 mLチューブをカラムの下に交換し、500 μlの染色バッファーでカラムを3回洗浄します。洗浄の合間に新しい染色バッファーを追加する前に、カラムリザーバーが空であることを確認してください。
- カラムをセパレーターから取り外し、新しい15 mLチューブの上に置きます。
- 1 mLの染色バッファーをカラムにピペットで移します。プランジャー(キットに付属)をカラムにしっかりと押し込んで、磁気標識されたセルをすぐに洗い流します。
- 新しいカラムで溶出した画分を使用してステップ2.3.2から2.3.6を繰り返し、CD14+細胞の純度を上げます。ビーズは、ステップ3.2で培養中に自動的に細胞から放出されることに注意してください。
3. 樹状細胞の異なる活性化状態への分化
- 試薬の調製(エンドトキシンレベルはすべての試薬で0.1 EU / ml未満である必要があります)
- 細胞培養培地の調製:RPMI 1640に10%ウシ胎児血清(FBS)、1%非必須アミノ酸(NEAA)、および0.05 mM 2-メルカプトエタノール(2ME)を添加。この溶液を0.2μmフィルターでろ過して滅菌します。
- サイトカインの調製:無菌条件下で、IL-4およびGM-CSFを細胞培養グレードの水でそれぞれ0.25 mg/mlの濃度に再構成します。サイトカインを200 μLの微量遠心チューブに分注し、-80°Cで保存します。
- ビタミンD3ストックの調製:無菌条件下で、細胞培養グレードの水にビタミンD3を100 mMの濃度に再構成します。ビタミンD3を1.5 mLの微量遠心チューブに分注し、-20°Cで保存します。
- デキサメタゾンストックの調製:デキサメタゾンを細胞培養グレードの水に無菌条件下で10 mMの濃度に再構成します。デキサメタゾンを1.5 mLの微量遠心チューブに分注し、-20°Cで保存します。
- LPSの調製:無菌条件下で、細胞培養グレードの水でリポ多糖(LPS)を1 mg / mlの濃度に再構成します。LPSを1.5 mLの微量遠心チューブに分注し、-20°Cで保存します。
- 異なる moDC の生成
- 0.3 - 0.5 x 106/ml の濃度の CD14+ 単球 4 セットに、200 ng/ml の GM-CSF と 200 ng/ml の IL-4 を 6 ウェルプレートで添加します。これは0日目であり、各6ウェルの培地の容量は2 mLであることに注意してください。
- 組織培養インキュベーターで細胞を37°C、5% CO2でインキュベー
トします。
- 4日目に培地850 μlを培養液から取り出し、300 x gで5分間、4 °Cで遠心分離します。上清を吸引し、2x (200 ng/ml のGM-CSFおよび200 ng/ml のIL-4)を含む細胞培養培地1 mLにペレットを再懸濁します。この細胞混合物を培養物に戻します。GM-CSFおよびIL-4に添加した2倍の濃度は、1 mLの培地を培養物に戻すと1倍になることに注意してください。
- 5日目に、培地1 mLあたり1 μlのビタミンD3ストックと1μlのデキサメタゾンストックを2セットに加えて、寛容性moDCを生成します。ビタミンD3の最終濃度は100 nM、デキサメタゾンは10 nMであることに注意してください。GM-CSFとIL-4の添加は5日目には必要ありません。
- 6日目に、200 ng/mlのGM-CSFと200 ng/mlのIL-4をすべてのセットに加えます。
- 6日目にGM-CSFとIL-4のみで処理したセットの1つに1μg/mlのLPSを添加して、成熟したmoDCを生成します。
- 6日目に1セットのLPSを寛容原性moDCに加えて、LPS寛容性moDCを生成します。
- 7日目に、フローサイトメトリーまたはその他の研究のために培養皿をPBS、EDTAで洗い流すことにより、さまざまな種類のmoDCを回収します。非接着性細胞のみが採取されることに注意してください。未成熟moDC、成熟moDC、寛容性moDC、およびLPS寛容性DCのCD14+単球からの収量の割合は、それぞれ約90%、50%、60%、および60%であり、献血者とFBSロットの間で異なることに注意してください。