動物モデルを含むすべての手順は、地元の施設動物管理委員会とJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
1. PDLNからのシングルセル分離
- 滅菌済みの250 μm金属メッシュを、ラック内の15 mLコニカルチューブの上に置きます。メッシュを1mLのRPMIですすいでください。
- リンパ節を金属メッシュに移し、ピンセットを使用してメッシュを通してそれらを研削します。金属メッシュに1mLのRPMIを塗布して、細胞をチューブに洗い流します。さらに3回繰り返して、メッシュを削除します。
- チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットを約5 mLのRPMIに再懸濁します。チューブにRPMIを充填します。
- チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットを約5 mLのRPMIに再懸濁します。チューブにRPMIを充填します。
- チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットを2mLのRPMIに再懸濁します。細胞懸濁液2 mLを、細胞ストレーナーキャップ付きの丸底チューブ5 mLに移します。細胞懸濁液を細胞ストレーナキャップに塗布します。
2. フローサイトメトリー
- PDLNからの細胞懸濁液を433 x gで5分間、4°Cで遠心分離し、上清を捨てます。
- 100 μL のフローサイトメトリー染色バッファー (FACS バッファー) で細胞を染色します: 0.75 μg/100 μL FITC 標識 CD4 抗体、0.60 μg/100 μL APC-H7 標識 CD8 抗体、0.30 μg/100 μL PE 標識 CD25 抗体、5 μL (1: 20) APC 標識 Nrp1 抗体。チューブを氷上で40分間インキュベートします。
- 各チューブに200μLのFACSバッファーを加えます。チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。もう一度繰り返します。
- 細胞ペレットを500 μLの透過化固定バッファー(PFB)に再懸濁することにより、細胞を固定および透過処理します。
手記: PFBは、固定/透過濃縮液1部と固定/透過希釈液3部を混合して調製します。
- チューブを冷蔵庫で4°Cで一晩保管します.
手記:1時間のインキュベーションも機能します。
- チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットを500 μLの透過化洗浄バッファー(PWB)に再懸濁します。チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
手記:PWBは、Permeabilization Buffer(10x)を蒸留水で1:10に希釈することによって調製されます。
- 100 μLのPWB中に以下の細胞内抗体を染色します:0.30 μg/100 μL PE-Cy7-conjugated Foxp3 antibody, 4 μL (1: 25) PacificBlue-conjugated Helios antibody.チューブを氷上で1時間インキュベートします。
- 各チューブに500μLのプリント配線板を添加します。チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットを500μLのプリント配線板に再懸濁します。チューブを433 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットを300μLのFACSバッファーに再懸濁します。
- フローサイトメーターで細胞を解析します。
- [Side Scatter-Area]、[Height]、および [Width (幅)] と [Forward Scatter (領域)、Height (高さ)、および Width (幅)] に基づいて 1 つのセルをゲートします。分析のために 100 万のイベントを実行します。
- 実験のFCSファイルをエクスポートし、フローサイトメトリーアナライザーソフトウェアを使用して分析します。