1. 抗体の精製
>注:社内抗体の平衡化バッファーは、25 mM Tris、100 mM NaCl、pH 7.5です。使用した溶出バッファーは0.1 M酢酸です。バッファーと樹脂(プロテインA)は、精製された特異的抗体に依存しています。カラム容量は、樹脂のベッド高さに相当します。使用する移動相の量は、カラム容量で決まります。
- 精製システムの初期化
- 精製システムに付属のソフトウェアを開きます。マニュアルの指示に従って、カラムを平衡化バッファーと平衡化バッファーで 2 mL/分の流速で 40 分間平衡化します。平衡化後、手動実行を停止します。
- フラクションコレクターに、精製された抗体溶出液を回収するために15 mLのコニカルチューブを、高塩洗浄時のフロースルーを回収するために50 mLのコニカルチューブを配置します。フラクションコレクターが開始位置にリセットされていることを確認するには、実行を開始する前にフラクションコレクターを開閉します。フラクションコレクターは7°C.
に維持されます。
手記:フラクションコレクターは、15 mL チューブと 50 mL チューブの両方について、設定のフラクションコレクタータブで手動でリセットできます。
- サンプル注入
手記: 以下の手順で用いる採取細胞培養液は、全自動マイクロバイオリアクターで培養したチャイニーズハムスター卵巣細胞から得られたものです。
- 0.22 μmのろ過済みハーベスト細胞培養液を、ノズル端がキャップされている空の12 mLシリンジに加えます。
- ノズルを下に向けてシリンジを持ち、プランジャーの小さな部分が入るまでシリンジプランジャーを挿入します。液体が漏れていないことを確認し、ノズルを上にしてシリンジを回し、キャップを取り外します。
- ノズルを上に向けてシリンジを保持したまま、細胞培養液がノズルの先端に来るまでシリンダーを押して空気を排出します。シリンジノズルを精製システムの手動注入ポートに挿入し、ひねって締めます。
- すべてのサンプルが注入され、付属の10 mLの大容量サンプルループに見えるようになるまで、プランジャーを押し下げます。
- 保存したメソッドファイルを開きます。結果ファイルを必要な場所に保存し、プロンプトが表示されたらファイル名を指定します。サンプルが大ボリュームのサンプルループに注入された後にヒットラン。
- 精製メソッドの実行
- 保存したメソッドを選択し、装置ソフトウェアのプロンプトが表示されたら[実行]をクリックします(ステップ1.2.5).
手記:システムは、次の手順を実行するように設定されています。機器の実行中は、ユーザーは何もする必要はありません。
- 3カラム容量(CV)の平衡バッファーでカラムを平衡化し、流速2 mL/分で平衡化します。カラムが平衡化されると、システムは大容量サンプルループを使用して、1 mL/分の流速でサンプルをカラムに注入します。
- 280 nmでのUV信号の低下は、サンプルのロードが終了したことを示します。UVシグナルが25 mAUを下回るまで、2 mL/minの流速でカラムを平衡化バッファーで洗浄します。
- pH 7.5 で 1 M NaCl を含む 25 mM Tris の CV を 4 個使用し、2 mL/分の流速で 2 次高塩洗浄を行います。システムフラクションコレクターは、塩洗浄中にカラムから外れたタンパク質/DNAを50 mLチューブに収集します。
- 5CVの溶出バッファーを1 mL/minの流速で適用し、抗体をカラムから溶出します。溶出液を UV シグナルに基づいて 15 mL チューブに集めます。UV 280信号が35 mAUを超えると、収集が開始されます。信号が50mAUを下回ると収集が終了します。これをピークカットといいます.
手記:ピークカットにより、溶出プロファイルの正規化が保証され、タンパク質凝集体を含む可能性のある溶出ピークテーリングが回避されます。
- 3 CVs of Equilimation Bufferを使用してカラムを洗浄します。ランは洗浄ステップ後に終了します。
- 溶出後すぐに精製したタンパク質を1 M Tris塩基を用いて~5.5のpHに中和します。280 nmおよび260 nmの微量UV-Vis分光光度計を使用してタンパク質濃度を測定し、4°Cで保存します。