動物モデルを含むすべての手順は、地元の施設動物管理委員会とJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
1. 組織の準備
- 灌流の前日に、0.1 Mリン酸緩衝液pH 7.4に4%ホルムアルデヒドを調製します。4°Cで保存してください。
- 深く麻酔したマウス (3.5% イソフルラン) を左心室を介して 10 ml の氷冷リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) で経心灌流し、次に 40 ml の氷冷ホルムアルデヒド (流速 5 ml/分) で灌流します。脳を解剖し、同じ固定液で4°Cで24時間ポストフィックスします。
- 脳を10%(4°Cで24時間)と30%のショ糖(脳が沈むまで、約48時間)に連続して移します。凍結するには、凍結保護された脳を-25°Cのイソペンタンにゆっくりと沈め、組織から泡が出なくなるまで浸します。-80°Cで保存してください。
- 厚さ40 μmの冠状切片を凍結ミクロトーム(ブロック温度-25〜-16°C)で切断します。切片を24ウェル細胞培養プレートのウェルを含む不凍液に順次移します(図1を参照)。-20°Cで保存してください。
2. 免疫染色
>注:切片はフリーフローティングで処理され、通常はキャリアプレートとメッシュインサートを備えた6ウェルプレートで処理されます。例外として、ブロッキング、抗体インキュベーション、およびアビジン-ビオチン複合体(ABC)反応は、メッシュインサートのない12ウェルまたは24ウェルプレートで行われます(染色するスライスの数にもよりますが、ウェルあたり0.5〜1 mLで十分です)。これらの手順では、細いブラシを使用してセクションを移動します(新しい溶液ごとにすすいでください)。すべてのインキュベーションは、連続攪拌(最大150rpm)で行われます。
- 免疫組織化学(ABC法)
- 不凍液から切片をトリスバッファー生理食塩水(TBS)に移し、十分にすすいで(4°CでO / Nを1回、室温[RT]で各10分間5回)、不凍液を完全に除去します。
- 内因性ペルオキシダーゼ活性を消光するには、TBS-Tween 20(TBS-T)で1.5%H2O2に30分間インキュベートします。必要に応じて、セクションをバブリングして再水没させることに注意してください。TBSで3回、各15分間すすぎます。
- オプション:その間、加熱キャビネットと2 N HClを37°Cに予熱します。DNAを変性させるには、切片を2 N HCl中で37°Cで30分間インキュベー
トします。
- オプション:0.1 Mホウ酸緩衝液pH 8.5、RTで切片を10分間中和します。移載中に、ペーパータオルのセクションを含むメッシュインサートを短時間綿棒で拭き取り、HClの残留物を取り除きます。TBSで2回、各15分間すすぎます。
- TBSplusでインキュベートして組織を透過化し、RTで1時間非特異的抗体結合部位をブロックします。
- TBSplusで希釈した一次抗体、O/Nで4°Cでインキュベートし、TBSで3回、各15分間すすぎます。
- TBSplusで希釈したビオチン化二次抗体を室温で3時間インキュベートし、TBSで3回、各15分間すすぎます。その間に。。。
- 製造元のプロトコル(TBS-Tで1%A + 1%B)に従ってABC複合体を調製します。使用前にRTで30分間放置してください。AB試薬で切片をRTで1時間インキュベートし、TBSで3回、各15分間すすぎます。
- 6ウェルプレートまたは12ウェルプレートあたり50 ml 0.5 mg / ml 3,3′-ジアミノベンジジン(DAB)をTBS-T中に調製し、2つに分割し、ウェルあたりそれぞれ4 mlまたは2 mlをピペットで使用します。セクションをDAB溶液に移します(注意!DABは有毒です。サプライヤーが提供する特定のMSDSに従ってください、つまり、白衣と手袋を着用し、化学ドラフトを使用してください)。
- 残りの25 mLのDAB溶液に0.5 mL 1% H2O2を加え、上記の容量を各ウェルに混合し、ピペットでピペットで動かして、ペルオキシダーゼ反応を開始します。12分間インキュベートします。TBSで3回、各15分間すすぎます。
- ゼラチンでスライドにセクションを取り付け、O/N.を恒久的な封入剤で覆います。
- オプション:カバースリップを置く前に対比染色します.
手記:バックグラウンドが高いためにS/N比が低い場合は、AB試薬とのインキュベーション後にH2O2処理を繰り返します(ステップ2.1.8)。
- マルチプル免疫蛍光
- 単一または同時の複数の免疫蛍光
- 不凍液からTBSに切片を移し、十分にすすいで(4°CでO / Nを1回、室温で10分間各5回)、不凍液を完全に除去します。
- オプション: ステップ 2.1.3 から 2.1.4 まで。
- TBSplusでインキュベートして組織を透過化し、非特異的な抗体結合部位をRTで1時間ブロックします。
- 一次抗体カクテル(例:ラットα-BrdU(ブロモデオキシウリジン)、モルモットα-DCX(ダブルコルチン)、ヤギα-GFP(緑色蛍光タンパク質))をTBSplus、O / Nで希釈し、4°Cでインキュベートします。TBSで各15分間3回すすぎます。
- 蛍光色素標識二次抗体(例:ローダミンレッドαラット、Alexa-647 αモルモット、Alexa-488 α-ヤギ、すべてロバ由来)をTBSplusで希釈し、室温で3時間、または4°CでO / Nでインキュベートします。これからは、セクションを光から保護します。TBSで3回、各15分間すすぎます。
- 切片をゼラチンでスライドに取り付け、一晩風乾します(O / N)。水性封入剤で覆います。
- 同じ宿主動物種由来の一次抗体を用いた逐次多重免疫蛍光法
- ステップ2.2.1.1〜2.2.1.3として。
- 最初の一次抗体(例:ウサギα-抗原A)でO/Nをインキュベートし、4°CでO/Nします。TBSで3回、TBS-Tで1回、それぞれ10分間すすぎます。
- 最初の蛍光色素標識二次抗体(例:Rhodamine Red-conj. donkey α-rabbit)で3時間RTでインキュベートします。これからは、セクションを光から保護します。TBSで3回、TBS-Tで1回、各10分間すすぎます。
- 一次抗体と同じ宿主由来の10%正常血清(例:ウサギ血清)で3時間RTインキュベートし、最初の二次抗体上のオープンパラトープを飽和させます。TBSで3回、TBS-Tで1回、各10分間すすぎます。
- TBSplusで、一次抗体の宿主(例:α-rabbit IgG(H+L))に対する50 μg/mlの非標識一価Fabフラグメントとインキュベートし、4°Cで2番目の二次抗体O/Nが認識できるエピトープをカバーします。
- TBSで少なくとも3回、TBS-Tで1回、それぞれ10分間すすぎます。転送中に、ペーパータオルのセクションを含むメッシュインサートを短時間綿棒で拭き取り、Fabの残りを取り除きます。
- 2番目の一次抗体(例:ウサギα-抗原B)でO/Nを4°Cでインキュベートし、TBSで3回、TBS-Tで1回、それぞれ10分間すすぎます。
- 2番目の蛍光色素標識二次抗体(例:Alexa-488-conj. ロバα-ウサギ)でインキュベートし、3時間RTします。TBSで各15分間3回すすぎ、上記のようにマウントしてカバースリップします
手記:異なる宿主種由来の抗体で抗原を標識するには、ステップ2.2.2.2に抗原を追加し、ステップ2.2.2.3にそれぞれの二次抗体を追加します。