>1. セキュリティ上の注意
>注:この方法は、生狂犬病ウイルス(RABV)と不活化ワクチンの両方に適用できます。
- 適切な実験室の実践と安全手順を使用してください。
- 使い捨てコート、手袋、マスク、眼鏡などを含む適切な個人用保護具(PPE)を着用してください。
- 生きたウイルスが滴定されたら、クラスIIの生物学的安全キャビネットを使用してください。
- サンプルと接触する物質(試薬、洗浄液など)は感染性物質とお考えください。
- 汚染された物質を漂白剤溶液(次亜塩素酸ナトリウムの2,5%)に30分間浸して除染することにより、汚染された物質を処理します。
- 化学物質は、優れた実験室の慣行に従って取り扱ってください。
>2. 事前準備
- 可能な限り分析グレードの試薬を使用してください。
- コーティングバッファー/炭酸塩バッファー、パッシベーションバッファー、希釈剤、およびクエン酸バッファー(表1)の新鮮な溶液を調製し、0.45または0.22μmフィルターでろ過し、使用前に4°Cで1日間保存して分析純度を維持します。
- 使用の30分前に試薬を室温(+18°C〜+25°C)に到達させ、使用前に穏やかに混合して均質化します。
>3. マイクロプレートの感作
>注:大量の免疫グロブリンに結合するように最適化された96ウェル吸着免疫測定プレートを使用してください(例:材料の表を参照)。
- 各ウェルに、炭酸バッファーで希釈したモノクローナル抗体(mAb-D1)200 μLを加えます
手記:約1 μg/mLの最適濃度が実験的に決定されており、精製したmAb-D1の約1/2000希釈に相当します。この推奨濃度は、各mAb-D1バッチで示されており、ポジティブコントロールで定期的に検証する必要があります。
- プレートを粘着フィルムで覆い、加湿雰囲気下でマイクロプレートを37°Cで3時間インキュベートします。
- ウェルの内容物を慎重に吸引し、2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- マイクロプレートを裏返し、吸収紙の上で室温で5分間乾燥させます。
4. マイクロプレートの不動態化
- 各ウェルに、パッシベーションバッファー300μLを加えます。
- プレートを接着フィルムで覆い、37°Cで30分間インキュベー
トします。
- 慎重に吸引し、ウェルの内容物を2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- マイクロプレートを反転させ、吸収紙の上で室温で1分間乾燥させます
手記:マイクロプレートはすぐに使用することも、-20°Cで密封して使用まで最大3か月間保存することもできます。
5. ELISAアッセイ
>注:参照ワクチンの管理曲線を確立するために、ステップ5.3は必要ありません。テストしたワクチンを滴定するには、ステップ5.1から5.6のすべてが必要です。
- 増感マイクロプレートの洗浄
- 各ウェルに300 μLの洗浄バッファーを加えます。
- 慎重に吸引し、ウェルの内容物を2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- 手順5.1.1と5.1.2をさらに5回繰り返して、増感プレートを広範囲に洗浄します。
- マイクロプレートを反転させ、吸着紙の上で室温で1分間乾燥させます。
- 対照曲線の参照ワクチンの希釈
- 参照ワクチン(検証抗原Lot 09)を、10 μg/mLの狂犬病ウイルス糖タンパク質の濃度に対応する1 mLの蒸留水に再構成します。.
- 希釈液中で再構成した参照ワクチンを10倍に希釈して調製し、1 μg/mLの狂犬病ウイルス糖タンパク質に到達させます。
- 表1に示すように、この参照ワクチンの6回の連続2倍希釈液を希釈液で調製します。
- 200 μLの希釈剤を二重に分配し(ウェル1H/2H)、ブランクコントロールとして使用します。
- 各参照ワクチン希釈液のウェルあたり200 μLを二重に分配します(ウェルG1/G2からA1/A2)。
- 試験したワクチンの滴定のための希釈液
- 試験したワクチンを希釈液中で10倍に希釈して調製します。
- 表2に示すように、試験したワクチンを希釈液中で7回2倍段階希釈液で調製します。
- 試験した各ワクチン希釈液(ウェルH3/H4からA3/A4)のウェルあたり200 μLを二重に分配します。
- ELISAプレートのインキュベーション/洗浄
- マイクロプレートを接着フィルムで覆い、37°Cで1時間インキュベー
トします。
- フィルムをはがし、慎重に吸引し、各ウェルの内容物を2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- 各ウェルに300 μLの洗浄バッファーを加えます。
- 慎重に吸引し、各ウェルの内容物を2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- ステップ5.4.3と5.4.4を5回繰り返して、未結合の抗原を除去し、コーティングされた抗体(mAb D1)に結合したGタンパク質三量体を保存します。
- マイクロプレートを裏返し、吸収紙の上で室温で1分間乾燥させます。
- ペルオキシダーゼ標識mAb-D1の結合
- ペルオキシダーゼ標識mAb-D1の推奨希釈倍率(1/2000)のウェルあたり200 μLを希釈液(約1 μg/mL)に分配します。推奨濃度は各mAb-D1バッチで示されており、ポジティブコントロールで定期的に検証する必要があります。
- マイクロプレートを接着フィルムで覆い、37°Cで1時間インキュベー
トします。
- フィルムをはがし、慎重に吸引し、各ウェルの内容物を2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- 各ウェルに300μLの洗浄バッファーを加えます。
- 慎重に吸引し、各ウェルの内容物を2,5%次亜塩素酸ナトリウム溶液を含むレシピエントに移します。
- ステップ 5.5.4 と 5.5.5 を 5 回繰り返して、未結合のペルオキシダーゼ標識抗体 (mAb D1) を除去します。
- マイクロプレートを裏返し、吸収紙の上で室温で1分間乾燥させます。
- 基質-発色剤を用いた啓示
- 基質-発色剤溶液のウェルあたり200μLを分配します。
- マイクロプレートをフィルムで密封し、室温で30分間暗所でインキュベートします。黄橙色は、結合したペルオキシダーゼ標識抗体(mAb D1)の量に比例する強度で発生します。
- ウェルあたり50μLの停止溶液を加えて反応を停止します。
- マイクロプレートの底部を慎重に拭き、分光光度計にセットして、使用済みのすべてのウェル(ネガティブコントロール(ブランク)、参照ワクチン、および試験済みワクチン)の492 nmでの光学濃度(OD)を決定します。
- 解析のために OD データを .xls または .xlsx ファイル形式で収集します。
>表 1.アッセイで使用されるバッファー。
ます
)
| バッファーと試薬 | 準備 |
コーティングバッファー
(炭酸塩緩衝液 50mM pH=9.6) | 炭酸ナトリウム50 mM(Na 2 CO 3-10H 2 O)を重炭酸ナトリウム50 mM(Na2CO3-10H 2O)を、目的のpH(重炭酸ナトリウムの約1/10体積)になるまで加え |
| パッシベーションバッファー | 0.3% ウシ血清アルブミン (BSA、フラクション V)、5% スクロース、炭酸塩緩衝液 50 mM pH 9.6 |
| 10x リン酸緩衝生理食塩水 pH=7 (PBS 10x) | NaCl 80 g、KCl 2 g、Na2PO 4-12H2O 11.33 g、KH2PO4 2g 1Lの蒸留水中。4N NaOHでpH=7を調整 |
| 洗浄バッファー | 0.05% Tween (1x PBS) |
| 希釈 剤 | 0.5% ウシ血清アルブミン (フラクション V)、0.05% Tween in 1x PBS (BSA による酸性化のため pH を 7 に調整 |
クエン酸緩衝液 pH-5.6
(ペルオキシダーゼ基質用) | 11.67 gクエン酸三ナトリウム-2H2O(Na3C6H5O7-2H 20)、2.17 gクエン酸-1H20 1Lの蒸留水 |
| 基質-発色剤溶液 | 50 mg オルトフェニレンジアミン錠、0.1% 過酸化水素 30% (110 vol)、25 ml クエン酸緩衝液 pH 5.6 |
ソリューションを停止しています
(4N硫酸) | 80mlの冷却蒸留水に10mlのH2SO4 36N。希釈は氷浴で行う必要があります |