方法論記事

ラット小脳顆粒ニューロン培養物からのミクログリアの選択的除去

2025年7月8日

この記事について

要約

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出典:Jebelli, J., et al. Selective Depletion of Microglia from Cerebellar Granule Cell Cultures Using L-leucine Methyl Ester. J. Vis. Exp. (2015)

このビデオは、初代ラットの神経細胞培養からミクログリアを選択的に除去する技術を示しています。小脳顆粒ニューロンは、増殖するグリア細胞を排除するために代謝拮抗剤で処理されます。さらに、リソソーム標的化剤で処理して、培養物からミクログリアを枯渇させます。

プロトコル

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サンプル採取を含むすべての手順は、研究所のIRBガイドラインに従って実行されています。

1. 器具、培地、食器の準備

  1. 2つのステンレス鋼の実験室解剖はさみと2つのステンレス鋼の実験室鉗子を準備します。すべての器具をオートクレーブし、紫外線(UV)光の下で培養フードO / Nに入れて滅菌します。
  2. 500 mLの最小必須培地(MEM)培養培地(10% Fetal Bovine Serum [FBS]、20 mM KCl、25 mM NaHCO3、30 mM D-グルコース、2 mM L-グルタミン、100 U/mlペニシリン、100 μg/mlストレプトマイシン、6 μg/mlアンピシリン)を調製し、滅菌をろ過します。4°Cで数ヶ月間保存してください。
  3. 厚さ14mmのカバースリップ1を含む24枚のウェル培養プレートを調製します。カバースリップをオートクレーブし、100 mg/Lポリ-d-リジン(PDL)でコーティングします。UVライトはO / Nを滅菌します。

>2. 小脳顆粒細胞(CGC)培養液の調製

  1. 250 mg のグルコース、300 mg のウシ血清アルブミン [BSA]、955 mg のリン酸緩衝生理食塩水 [PBS] (Ca2+ および Mg+ フリー)、および 1 ml の 3.8% MgSO4·7H2O を含むオートクレーブ滅菌 UV 光処理滅菌 dH2O 中の「溶液 A」(100 mL)を調製します。
  2. 9 mlの溶液Aで希釈した1 mlの5 mg / mlトリプシンを含む「溶液B」(10 ml)を調製します。.
  3. 1,000ユニットのDNase、0.5 mgの大豆トリプシン阻害剤、100 μlの3.8% MgSO4·7H2Oを含む「溶液C」(10 mL)を調製し、溶液Aで10 mLに希釈します。
  4. 3.2 mlの溶液Cを含む「溶液D」(20 ml)を調製し、溶液Aで20 mlに希釈します。
  5. EBSS、25 mM NaHCO3、3 mM MgSO4·7H2O、および4% BSA、pH 7.4を含むBSA/Earle's Balanced Salt Solution(EBSS)溶液を調製します。
  6. L-ロイシンメチルエステル(LME)を調製するには、純粋なLMEを5 mLのMEM培地に添加して最終濃度を150 mM LMEにした後、ベンチトップpHメーターを使用して溶液をpH 7.4に戻し、28 mmポリエーテルスルホン(PES)0.2 μmシリンジフィルターを使用してろ過滅菌します。

3. CGCの培養

  1. 生後4〜7日のラットの子犬から小脳を収集します。氷の上に5mlの溶液Aが入ったシャーレにすぐに入れます。
  2. 小脳から余分な溶液を注ぎ、組織をペトリ皿の蓋に入れます。
  3. よく燃え上がったかみそりの刃で、少なくとも3つの異なる方向に組織を細かく刻みます。
  4. みじん切りにしたティッシュを溶液Bに加え(限られた組織が失われるように、ペトリ皿を溶液ですすいでください)、37°Cの水浴に5分間入れます。
  5. 溶液D(20 ml)をチューブに加えてトリプシンを中和し、振とうし、65 x gで5分間遠心分離します。
  6. 上澄みを注ぎます。
  7. 4 mLの溶液C.Triturateに、直径が小さくなる3つの炎状ガラスピペットで(各約10回)よく再懸濁し、懸濁液ができるだけ均一になるまでします。
  8. このホモジネートをBSA/EBSSの上にゆっくりと穏やかに数滴加えます。BSA/EBSSを通って沈み始めた場合は、さらに回転させるか、溶液Cを少し追加します。ホモジネートは、BSA/EBSSの上の層に配置する必要があります。振らないでください。100 x gで5分間遠心します。
  9. 上清を取り除き、ペレット(軟質)を1 mLのMEM培地に再懸濁します。
  10. 血球計算盤とプレートを使用して、500 μlのMEM培地に800,000細胞/カバースリップで細胞をカウントします。6% CO2 を含む 37 °C のインキュベーターに入れます。
  11. 翌日(準備の24〜36時間後)に培地を交換します。細胞周期阻害剤アラビノフラノシルシチジン(AraC)を10 μM含有するMEM培地の溶液を調製します。
    1. 各カバースリップについて、250 μlの古い培地を新しい24ウェルプレートに保持し、残りを吸引し、250 μlの通常のMEM培地を加え、これを吸引して細胞を洗浄します。次に、250 μlの古い培地を細胞に戻し、250 μlのAraC含有培地を補充します
      手記:細胞はin vitro(DIV)で6日間使用できます。

4. ミクログリアを選択的に枯渇させる (6 DIV で実行)

  1. 純粋なLMEを5 mLの別個のMEM培地に添加して、最終濃度150 mM LMEを得ます。
  2. 溶液をpH 7.4に戻し、28 mmポリエーテルスルホン(PES)0.2 μmシリンジフィルターを使用してフィルター滅菌します。
  3. MEM培地で溶液を50 mM(2 x LME)の濃度に希釈し、コントロール培養用の通常のMEM培地とともに37°Cの水浴に10分間置きます。
  4. MEM培地の半分 (250 μl) をCGC培養物から取り出し、37 °Cで保存します。
  5. 細胞を 2 x LME (250 μl) 含有 MEM 培地、すなわち 1:1 に希釈してウェル濃度 25 mM にするか、LME を含まない予熱 MEM 培地 (250 μl) で細胞を処理 (コントロール培養用)。
  6. 細胞を37°Cで6%CO2を含む加湿雰囲気で1時間インキュベートします。
  7. 温めた新鮮なMEM培地で細胞を2回洗浄してLME含有培地を除去し、保持した培地と同量の温めた新鮮なMEM培地を対応するウェルに交換します。
  8. 培養物をインキュベーターに戻し(37°Cで6%CO2で加湿)、24時間休ませてからさらに処理します。

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開示事項

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利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
鉗子シグマ・アルドリッチF4142湾曲した端部は小脳の除去を容易にします
マイクロ解剖ハサミシグマ・アルドリッチS3146まっすぐで鋭い先端は、げっ歯類のP4-7の解剖を容易にします
L-ロイシンメチルエステル塩酸塩シグマ・アルドリッチ7517-19-3
EBSSソリューションシグマ・アルドリッチE7510-500ミリリットル
ポリ-D-リジンシグマ・アルドリッチ27964-99-4カバースリップは使用の1日前にコーティングしてください
ウシ血清アルブミン(BSA)シグマ・アルドリッチA9418の
リン酸緩衝生理食塩水(PBS)シグマ・アルドリッチP4417
DNaseシグマ・アルドリッチD5025
大豆トリプシン阻害剤シグマ・アルドリッチT6414
シリーズ 型

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