サンプル採取を含むすべての手順は、研究所のIRBガイドラインに従って実行されています。
1. 推定誘導神経前駆細胞(iNPC)コロニーの単離
- iNPCコロニーをピッキングする1日前に、48ウェルプレート1枚をラミニンでコーティングします:ラミニンをダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)で1μg/mlに希釈し、溶液300μlをプレートに加え、4°Cで24時間保持します。1日後、プレートからラミニンを吸引し、200 μlの神経誘導培地(1:1 DMEM/F-12:Neurobasal、1x N2、1x B27、1% GlutaMAX、10 ng/mlヒト白血病阻害因子、3 μM CHIR99021、2 μM SB431542)をウェルに加えます。
- 1回ピッキングするコロニーを含む6ウェルプレートをDPBSで洗浄し、6ウェルプレートのウェルごとに2mlの神経誘導培地を追加します。コロニーを機械的に選択します:細い針を使用してコロニーの周りをこすり、周囲の細胞を取り除きます。200 μLのピペットマンを50 μLにセットし、それぞれのピペットチップを使用してコロニーをピッキングします。
- ラミニンでコーティングされた48ウェルプレートの1つのウェルにそれぞれ1つのコロニーを移し、ピペッティングを10回上下させることで、機械的にシングルセル懸濁液を生成します。ROCK阻害剤Y27632を最終濃度10 μMで細胞に添加します。
- 48ウェルプレート上の細胞を37°C、5%CO2で2日間増殖させます。細胞が80〜90%の密度に達するまで、2日おきに培地を交換します(約3〜4日)。