1. 皮質脳オルガノイドの生成(図1)
>注:プロトコルのこのセクションのすべてのステップは、特に明記されていない限り、クラス2バイオセーフティフードで行われます。
- ヒト多能性幹細胞(hPSC)からの2D神経外胚葉コロニーの誘導2D培養(-1〜3日目)
- 誘導する前に、ヒト胚性幹細胞(hESC)認定の基底膜マトリックスにhPSCコロニーを20%〜30%の密度で6ウェルプレートに播種します。この密度を達成するには、60%コンフルエントの6ウェルプレートの1ウェルから6ウェルプレートの3ウェルにhPSCコロニーを継代します。
- 基底膜マトリックスコーティングの場合、基底膜マトリックスをプレーンな基礎媒体で1:50の比率で希釈します。6ウェルプレートの1 mL/ウェルを均一に沈殿させ、室温(RT)で1時間インキュベートした後、吸引します。
- 分化前に、無血清細胞培養培地2 mLでhPSCコロニーを1日間維持します。
- hPSCの分化の日には、4倍から10倍の倍率で明視野顕微鏡を使用してhPSCコロニーを検査し、検出可能な分化がない健康なコロニーを確認します
手記:健康なhPSCは、大きな核、非常に小さな細胞質、および目立つ核小体を持つ細胞とタイトエッジコロニーを形成します。分化したiPSCコロニーは、特にコロニーの外縁周辺または中心で、上記のhPSCコロニーと明確な形態学的違いを示します。
- 表1に示す試薬を添加して、分化に必要なN2培地を調製します。使用前にこの培地をRTに持って行きます。
- RTにしたら、6ウェルプレートの各ウェルから無血清細胞培養培地を吸引し、5 mLの血清ピペットで穏やかに添加した2 mLのN2培地と交換します。
- デカペンタプレッグ(SMAD)阻害剤、SB-431542(10μM)およびLDN 193189(100 nM)に対する母親のデュアルサプレッサーを追加します。
手記:SMAD阻害剤は、培地を各ウェルに入れた後にN2培地に添加することも、無血清細胞培養培地を置き換える前に必要な量のN2培地に添加することもできます。阻害剤は、プレートを穏やかに渦巻かせるか、培地と阻害剤を含むチューブを3〜4回反転させることにより、培地に均一に組み込むことができます。
- SB-431542(10 μM)およびLDN 193189(100 nM)を添加した新鮮なN2培地を、次の2日間、各ウェルに毎日追加します
手記:SB-431542およびLDN 193189化合物を溶解し、細胞毒性を予防するために使用されるジメチルスルホキシド(DMSO)への細胞の長期曝露を減らすために、新鮮なN2培地を添加します。
- 誘導された2D神経外胚葉コロニーからの3D神経外胚葉スフェロイドの生成(3日目から7日目)
- ステップ1.2.2-1.2.8に従ってdispaseを使用して、誘導された神経外胚葉コロニーを持ち上げます。
- まず、2 mLのN2培地を6ウェルプレートから取り出し、HBSSで1回洗浄して、すべてのN2培地が除去されていることを確認します
手記:N2培地は、ディスパーゼの酵素活性を妨害し、ウェルからの神経外胚葉コロニーの適切な剥離を妨げる可能性があります。
- 2.4 unit/mL dispase 1 mL を各コロニー含有ウェルに加えます。
- ウェルを37°Cで20〜25分(最大30分)インキュベートします。コロニーの剥離を定期的にチェックしてください
手記:小さなコロニーは20分以内に分離することがあります。30分経過しても立ち往生しているコロニーは無視してください。
- インキュベーション後、1 mLのN2培地をウェルに加えてディスパーゼ酵素の活性を停止し、広口径のP1000ピペットチップまたは滅菌ハサミでカットした改良型P1000ピペットチップを使用してコロニーを15 mLチューブに移します(広口径のP1000チップになります)。
- コロニーの塊が重力でチューブの底に沈むのを待ちます.
手記:このプロセスには約1分かかります。
- 塊が沈んだら、標準のP1000ピペットチップで上清を慎重に取り除き、1 mLの新しいN2培地と交換します。この洗浄ステップを3回繰り返して、ディスパーゼを完全に除去します.
手記:残っているディスパーゼは、神経外胚葉スフェロイドの均一な形成を防ぎ、細胞死を誘発します。
- 洗浄後、細胞塊を3 mLのN2培地に再懸濁し、6ウェルプレートの1ウェルに移し、40 ng/mLの塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF)を加えます
手記: 多数の神経外胚葉コロニーが剥離した場合、これらのコロニーを6ウェルプレートの2つ以上のウェルに播種して、スフェロイドの融合を防ぐことができる。コロニーのディスパーゼ剥離の24時間後、スフェロイドが形成されたかどうかを確認します。
- スフェロイドを次の3〜4日間同じ培地に保持しますが、神経外胚葉細胞の増殖を促進し、自己組織化し、神経上皮を誘導および拡大するために、毎日各ウェルに新鮮なbFGF(40 ng / mL)を追加します><。
手記:スフェロイドを高密度で播種すると、培地が黄色に変わる可能性が高く、2日ごとに新しいbFGF(40 ng/mL)と交換する必要があります。ただし、これは推奨されず、代わりに、この問題を回避するために、各ウェルで維持するスフェロイドの数を減らす必要があります。スフェロイドは、神経上皮が明らかな場合、3日後に基底膜マトリックスに埋め込むことができます。神経上皮が明らかでない、または強く見えない場合は、スフェロイドを別の日維持し、再度確認してください。
>表 1: N2 中程度。この表は、N2培地の調製に必要な試薬を示しています。
| メディアコンポーネント | 濃度 |
| DMEMニュートリエントミックスF12 10x 500 mL(DMEM/F-12) | |
| N2サプリメント 5 mL (100x) | 1%で供給 |
| B 27サプリメント10 mL | 2%で補充 |
| MEM非必須アミノ酸溶液(100x) | 1%で補充 |
| ペニシリン-ストレプトマイシン(10,000 U/mL) | 1%で補充 |
| 2-メルカプトエタノール 50mL(1000x ) | 0.1%で補足 |