$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
>注:図1A、Bは、メインチャネルまたはコンパートメント、ウェル、およびマイクログルーブの位置を含む、事前に組み立てられた環状オレフィン共重合体(COC)チップの概略図を示しています。コンパートメント化されたチップは、食品着色料の単離によって実証されるように、コンパートメント内に明確な流体微小環境を確立できます(図1C)。
1. hSCニューロン用マルチコンパートメントチップのコーティング
>注:図2Aは、コーティング手順の概要を示しています。
- ポリ-L-オルニチンを細胞培養グレードの蒸留水に溶解して、20 μg/mLのワーキング溶液のチップあたり600 μLの溶液を調製します。
- ウェルからチップを調製した後に残った残りのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)を吸引します。吸引するときは、ピペットの先端がチャネル開口部から離れていることを確認してください.
手記:マイクロ流体チャネルは、この手順全体にわたって充填されたままにする必要があります。チャネル/コンパートメントから液体を吸引せず、ウェルからのみ吸引してください。
- 150 μLのポリ-L-オルニチン作業溶液を右上のウェルにロードします。90秒間、または液体が右下のウェルに充填し始めるまで待ちます。150μLの培地を右下のウェルに加え、液体がマイクログルーブを通過するまで5分間待ちます。
- 150 μLの培地を左上のウェルに加えます。90秒待ってから、左下のウェルに150μLを加えます。チップのホルダーをパラフィルムで包み、4°Cで一晩置きます
手記:または、チップとホルダーを37°Cに1時間置きます。
- ウェルから培地を吸引し、ピペットの先端がチャネル開口部から離れるようにします。150 μLの滅菌水を右上のウェルに加えます。90秒待ってから、右下のウェルに150μLを加えます。液体がマイクログルーブを通過するまで5分間待ちます。
- 左上のウェルに150μLの滅菌水を加え、90秒待ってから、左下のウェルにさらに150μLを加えます。
- 手順1.5〜1.6を繰り返します。
- ラミニンを2°C〜8°Cでゆっくりと解凍し、10 μg/mLの作業溶液を調製します。
- ラミニン作業溶液150μLを右上のウェルにロードします。90秒間、または液体が右下のウェルに充填し始めるまで待ちます。150μLを右下のウェルにピペットで移します。ラミニンがマイクログルーブを通過するまで5分間待ちます。
- 150 μLのラミニンを左上のウェルに加えます。90秒待ってから、左下のウェルに150μLを加えます。チップをホルダー内で37°Cで2時間インキュベートします。
- チップをPBS(Ca2+およびMg2+なし)ですすいでください。PBS150μLを右上のウェルにロードします。90秒間、または液体が右下のウェルに充填し始めるまで待ちます。150 μLのPBSを右下のウェルに加え、PBSがマイクログルーブを通過するまで5分間待ちます。
- PBS150μLを左上のウェルにピペットで移します。90秒後、150μLを左下のウェルにピペットで
移します。
- チップからPBSを吸引し、次にチップをNSCメディアですすいでください(材料の表を参照)。150μLの培地を右上のウェルにロードします。90秒後、または液体が右チャネルを通過して右下のウェルに入ったら、右下のウェルに150μLを加えます。メディアがマイクログルーブを流れるまで5分間待ちます。
- 150 μLの培地を左上のウェルに加え、さらに150 μLを左下のウェルに加えます。チップを5% CO2を含む37°Cインキュベーターでインキュベートし、NSCを播種する準備ができるまでチップをプレコンディショニングします
手記:チップは、必要に応じて一晩中事前にコンディショニングすることができます。
2. マルチコンパートメントチップへの NSC のシード
>注:このプロトコルは、ヒト胚性幹細胞から始まった以前の出版物とは異なり、市販のNSCを使用しました。このプロトコルでは、神経幹細胞はプラスチックチップに直接播種され、そこでニューロンに分化します。細胞は、最大2回の継代でNSCとして(分化せずに)増殖させ、さらに使用するために液体N2のバイアルに保存することができます。このプロトコルでは、1または2を通過した後、液体N2に保存されたNSCバイアルを使用します。図2Bは、コーティング手順の概要を示しています。
- NSCは製造元の指示に従って解凍してください。
手記:この手順は、H9 から派生した NSC に適用されます。他の細胞株では、細胞密度の最適化が必要です。
- 血球計算盤を使用して細胞濃度をカウントし、NSC培地を使用して調整して、1mLあたり7 x 106細胞の濃度を取得します。
- チップの各ウェルから培地を吸引します。メインチャネルからメディアを吸引することは避けてください。
- 細胞溶液5 μLを右上のウェルにピペットで移し、続いて5 μLを右下のウェルにピペットで移します(合計70,000細胞)。セルがメインチャネルの開口部に向かってピペットで移動していることを確認します。顕微鏡を使用して、細胞がチャネルに入ったことを確認します。細胞がチップの底に付着するまで5分待ちます.
手記:一方または両方のコンパートメントを使用してセルをロードできます。
- ~150 μL の NSC 培地を右上のウェルにピペットで移し、次に 150 μL を右下のウェルにピペットで移します。左側で繰り返します。適切な加湿容器内で5%CO2、37°Cでインキュベートします。
- 48時間後、ウェルからNSC培地を吸引し、各トップウェルと各ボトムウェルに150μLを添加して神経分化培地と交換します。
- 適切な加湿容器内の5% CO2、37°Cインキュベーター内でニューロンを培養します。