1. OL系統(OL)細胞の採取と培養
>注:これらの手順は、無菌条件下で層流フードで実行する必要があります。
- 振とうした翌日に、表1に従ってボッテンシュタイン・サトウ(BS)培地を準備します。
- コーティングされたペトリ皿を滅菌蒸留水で3回すすぎます。
- 主にOL系統細胞を含むフラスコの上清を採取し、いくつかのミクログリア細胞も含み、コーティングされていない100mmシャーレにプレートします.
手記:このステップにより、皿表面への差動高速接着により、ミクログリア細胞を除去できます。
- ペトリ皿を加湿インキュベーターで37°C、5%CO2未満で15分間インキュベートします。
- 各T150フラスコに25 mLの温かく調製した培地を入れ、加湿インキュベーターで5% CO2の37°Cで2回目の振とうまでインキュベートします。
- ペトリ皿から上清を新しいコーティングされていない100mmペトリ皿に移し、残留ミクログリア細胞の接着を可能にします。
- ペトリ皿を加湿インキュベーターで37°C、5%CO2未満で15分間インキュベートします。
- 非接着性OL系統細胞を含む上清を取り除き、50mLチューブに移します(50mLチューブの場合は2つのシャーレから上清)。ミクログリアを盛り付けたペトリ皿を捨てます。
- 上清を423 x gで5分間遠心分離します。上清を慎重に取り除き、細胞ペレットを1 mLのBS培地で再懸濁します。すべてのペレットを共通の50 mLチューブにプールし、BS培地で容量を10 mLに調整します。
- 顕微鏡で細胞をカウントして細胞密度を測定します.
手記: 細胞密度は 3 x 105 細胞/mL から 5 x 105 細胞/mL の間である必要があります。
- 細胞密度が4 x 105細胞/mL以上の場合は20 mLのBSを添加して最終容量を30 mLに、細胞密度が4 x 105細胞/mL未満の場合はBSを10 mLのみ追加して最終容量を20 mLにしてください。
- プレコートされた100 mmシャーレを2つまたは3つ、10 mLの細胞懸濁液でプレートします。加湿インキュベーターで37°C、5%CO2未満でインキュベートします。
- 2時間後にすべてのBS媒体をリフレッシュすることにより、ペトリ皿から破片を取り除きます。
手記: 透明化の前後に顕微鏡で培養物を検査し、細胞密度と破片除去の効率を確認します。
- 加湿インキュベーター内のBS培地で37°C、5%CO2.
で2日間インキュベートします
手記:顕微鏡で培養物を調べます。合流点は 70% から 80% である必要があります。
2. OCMの生産
>注:これらの手順は、無菌条件下で層流フードで実行します。
- 表2に従ってNB-B27lowミディアムを準備します。
- 10 mLの温かいNB-B27low培地で培地を更新します。加湿インキュベーターで37°C、5%CO2未満で2日間インキュベートします。
- OCM、すなわちOL分泌因子を含む上清を採取します。0.22 μm filter.
を使用して OCM をフィルター滅菌します。
手記:OCMは4°Cで最大2ヶ月間保存してください。
>表1:ボッテンシュタイン・サトウ(BS)メディアの準備。
| ボッテンシュタイン・サトウ(BS)メディア | 最終濃度 |
| ダルベッコのモディファイドイーグルミディアム | |
| ペニシリン-ストレプトマイシン | 100 IU/mL |
| apo-トランスフェリンヒト | 100 μg/mL |
| BSA(ウシ血清アルブミン) | 100 μg/mL |
| インスリン | 5 μg/mL |
| PDGFの | 10 ng/mL |
| プロゲステロン | 62 ng/mL |
| プトレシン二塩酸塩 | 16 μg/mL |
| 亜セレン酸ナトリウム | 40 ng/mL |
| T3 (3,3',5-トリヨード-L-チロニンナトリウム塩) | 30 ng/mL |
| T4(L-チロキシン) | 40 ng/mL |
>表2:NB-B27lowおよびNB-B27メディアの準備。
| NB-B27 ローメディア | 最終濃度 |
| 神経基礎 | |
| B27サプリメント | 0.5倍 |
| L-グルタミン | 0.5 mM |
| ペニシリン-ストレプトマイシン | 100 IU/mL |
| NB-B27 のメディア | 最終濃度 |
| 神経基礎 | |
| B27サプリメント | 1倍 |
| L-グルタミン | 0.5 mM |
| ペニシリン-ストレプトマイシン | 100 IU/mL |