動物サンプルを含むすべての手順は、適切な動物倫理審査委員会によって審査され、承認されています。
1. ウシ椎間板の解剖
- テール全体を水道水でよくすすいで、表面の汚れや毛を取り除きます.
手記:遠位端が無傷の場合、IVDの所望のサイズに応じて、尾ごとに最大9個の椎間板(IVD)(尾骨1-9)を実験に使用できます。15〜20 mmの望ましい直径を考慮して、実験には12個のウシの尾と1尾あたり5個のIVDを使用しました。
- 1%ベタジン溶液が入った箱にテール全体を10分間浸し、テールを滅菌ガーゼで短時間乾燥させ、滅菌ドレープの上に置きます
手記:椎間板の解剖中は、脱水症状を防ぐために、リンガー溶液湿式ガーゼで尾部を加湿します。.テール(または残りのセグメント)を濡れたガーゼで包んで、全体の解剖手順が完了するまで保管してください。
- メス(No.20)を使用して、尾側脊椎から軟部組織をできるだけ完全に除去し、IVDの識別を容易にします。骨除去プライヤーで椎骨の棘突起と横突起を取り除きます.
手記:希望の直径のIVDを選択します。今回の研究では、直径範囲が15〜20mmのIVDが使用されました。
- 各椎体の中央を骨ペンチで横方向に切断し、個々の運動セグメントを取得します。モーションセグメントをペトリ皿に入れ、ガーゼをリンガー溶液で濡らします。
- 触診とモーションセグメントを優しく動かすことにより、IVDと椎骨を特定します。IVDの成長プレートにバンドソーを使用して、IVDの両側に1つずつ、2つの平行なカットを行います。IVDから椎骨に向かって約0.5〜1mmの安全距離で、椎間板(軟)に隣接する骨端板部分(硬質)の凸状部位に触れて見つけることにより、成長板の位置を特定します。椎骨を切断しながら、バンドソーの刃がリンガー溶液で冷却されていることを確認してください。
- リンガー液で濡らした清潔なガーゼで清潔なペトリ皿でIVDを移します.
手記:ガーゼは、IVDの腫れを防ぐために湿らせ、濡れすぎないようにする必要があります。
- メスの刃を使用して、椎体(赤/ピンクの骨)、成長板(白い軟骨)をこすり落とし、端板をそのまま残します(黄ピンク)。荷重手順のために、2つのサーフェスを平らで平行にします。削ったIVDをガーゼをリンガー液で濡らした新鮮なペトリ皿に移します.
手記:IVDを保持してこすり落としながら手を保護するためにチェーンメイルグローブを着用してください。
- キャリパーでディスクの高さと直径を測定します。ジェット洗浄システムを使用して、リンガー液で椎骨の血栓を洗浄します。
- IVDを50 mLのプラスチックチューブ(チューブ1本につき1本)に移します。IVDごとに25 mLのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)+ 10%ペニシリン/ストレプトマイシン(P / S)を加え、室温のオービタルシェーカーで15分間振とうしておきます。
- 上清を吸引し、IVDあたり10 mLのPBS + 1%P / Sを2分間追加して、IVDをすすぎます。
>2. IVDの培養とローディング
- ディスクをIVDチャンバーに移し、IVD培地(ダルベッコのModified Eagle Medium(DMEM、生理学的グループには4.5 g / L高グルコースDMEM、病理学的グループには2 g / L低グルコースDMEM)+ 1% P / S + 2%ウシ胎児血清+ 1% ITS(5 μg / mLインスリン、6 μg / mLトランスフェリン、 および 5 ng/mL セレン酸) + 50 μg/mL アスコルビン酸-2-リン酸 + 1% 非必須アミノ酸 + 50 μg/mL 初代細胞用抗菌剤) をインキュベーターに入れ、37 °C、湿度 85%、CO2 5% のインキュベーターに入れます。
- 実験グループに従って、バイオリアクターシステム内でディスクを4日間培養します。病理学的グループでは、0.32-0.5 MPa、5 Hzで2時間/日の変性負荷条件を維持します。生理学的対照群では、0.02-0.2 MPa、0.2 Hzの負荷プロトコルを2時間/日使用します。
手記: ローディング手順では、IVDを5 mLのIVD培地が入ったチャンバーに配置します。容量は、バイオリアクターのローディングチャンバーのサイズによって異なります。ローディング手順の合間に、IVDを7 mLのIVD培地を入れた6ウェルプレートに入れて、自由に膨潤回復させます。
- 実験期間中の椎間板の高さの変化を分析するには、IVD 解剖後 (ベースライン) と、自由腫脹期間後および実験期間中の動的負荷後に毎日、キャリパーで椎間板の高さを測定します。