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方法論記事

一次元パターン化した神経細胞培養の外部興奮

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2025年7月8日

この記事について

要約

出典:Stern, S., et al. External Excitation of Neurons Using Electric and Magnetic Fields in One- and Two-dimensional Cultures. J. Vis. Exp. (2017)

このビデオは、一様で一方向の電場でラインパターンのニューロン培養を刺激する技術を示しています。

プロトコル

1. 蛍光色素によるニューロン培養における自発的または誘発的な活動のイメージング。

  1. 50 μL DMSO(ジメチルスルホキシド)に50 μgのカルシウム感受性蛍光色素(材料/試薬の表を参照)の溶液を調製します。
  2. 10 HEPES、4 KCl、2 CaCl2、1 MgCl2、139 NaCl、10 D-グルコース、45スクロース(pH 7.4)を含む細胞外記録溶液(EM)を調製します。
  3. 2 mLのEMでニューロン培養物を8 μLのカルシウム感受性蛍光色素溶液と1時間インキュベートします。光から保護し、ゆっくりと回転させて、色素が細胞に均一に広がるようにします。
  4. イメージングする前に、溶液を新しいEMと交換してください。蛍光イメージングを図1に示します。
  5. 顕微鏡の視野内の任意の関心領域(ROI)の強度を定量化できるカメラとソフトウェアを使用して、カルシウム蛍光イメージング用の光学フィルターを備えた蛍光顕微鏡(励起ピーク488nm、発光ピーク520nm)で画像化します。

2. 文化の電気刺激

>注:電気刺激の基本的な設定を図2に示します。神経細胞培養物を約14日間培養したカバースリップをペトリ皿に蛍光顕微鏡で入れます。ニューロンの電気的活動は、カルシウム感受性色素を使用して画像化され、培養物の外側に配置された2対の浴電極を介して電圧が印加されます。電極は信号発生器によって駆動され、その出力はデュアルチャネルアンプによって増幅されます。刺激の電圧制御は、電界ベクトルが直接決定されるため、ベクトルの追加と組み合わせが簡単に行えるため、より標準的な電流制御よりも好まれます。これには、電界の均一性を慎重にチェックする必要がありますが、電圧制御の場合、サンプル全体に対して実行できます。電圧制御を使用する場合は、グランドループを避けるように注意し、電界の均一性を確認する必要があります。

  1. 均一な電界による電気刺激には、一対の平行電極ワイヤを使用します。
    1. 厚さが0.005インチ(127μm)のオーダーの白金製の電極を使用してください。13 mmのカバーガラスと一緒に使用する場合は、2つの電極間の距離が約11 mmであることを確認し、電極を培養物の1 mm上に配置します
      注意: 電極ホルダー(図3A)を作成するには、ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)を使用します。PTFEに細い穴を開けて電極を挿入します。デバイスは、電極が露出している上端が溶液と接触しないように、細胞外溶液よりも高くする必要があります。絶縁には、電極リード線の露出する可能性のある部分にエポキシ接着剤を使用します。
    2. 電解を避けるためにDC部品を含まない、デューティサイクルが50%の矩形パルス形状を使用してください。パルス持続時間を10μsから4msの間で変化させ、培養物を焼くことなく効果的な刺激を引き起こします。振幅が± 22 Vのオーダーであることを確認します(3を参照)。矩形パルスは、電極に並列に接続されたオシロスコープで観察できます.
      手記:目的の波形を簡単にプログラミングするには、市販の波形編集ソフトウェアを使用してください(材料リストを参照)。目的の波形をグラフィカルに入力し、波形発生器に送信します。
  2. 電界の均一性をテストするには、プローブ電極を使用します。少なくとも1 mm x 1 mmのグリッドを使用して、プローブを電極間の領域に移動させ、電位を測定できるようにします。
    1. 電位を測定します。電界を計算するには、figure-protocol-1を使用します。電極の1つを基準電極として使用します。100 μs から 4 ms の間で変化するパルス幅で電界を測定し (100 μs のパルス幅の例については3B を参照)、刺激持続時間の範囲内で磁場が均一であることを確認します。
      手記:パルス幅が1msの場合に測定された電界の均一性の例については、3Dを参照してください。

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結果

figure-results-1
図1:同期ネットワークバースト中に画像化されたカルシウム過渡現象のトレース例。実験前にカルシウム色素で染色したニューロンの画像。イ. A の ROI の強度と時間のトレースと、トレースの色が A の ROI の境界の色を表します。3つのROI内で同期された強度の大幅な増加は、ネットワークバーストを表します[図2を挿入]

figure-results-2
図2:神経細胞培養の磁気刺激に使用されたセットアップの概略図。上部には、ニューロンリング培養物の5mm上に同心円状に配置されている磁気コイル(青い円...

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開示事項

利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
塩化カルシウム , 1Mフルーカ21098細胞外記録ソリューション。
D-(+)-グルコース、1Mシグマ・アルドリッチ65146めっき媒体、細胞外記録液。
ヘペス、1ヶ月シグマ・アルドリッチH0887-J細胞外記録ソリューション。
KCl、3か月メルク1049361000細胞外記録ソリューション。
塩化マグネシウム , 1Mシグマ・アルドリッチM1028細胞外記録ソリューション。
NaCl、4Mバイオラボ19030591細胞外記録溶液。
ショ糖、1Mシグマ・アルドリッチS1888細胞外記録ソリューション。
電極ワイヤーAMシステムズ、カールスボーWA767000ニューロン培養の電気刺激。
信号発生器BK評価4079電気信号の整形。
増幅器ホームメード信号発生器から電極への信号の電圧増幅。
電源行列MPS-3005 LK-3スパッタリング装置への電源供給
プラチナ線 0.005インチ厚;A-Mシステムズ、ワシントン州カールスボー767000ニューロン培養の電気刺激。

タグ

神経細胞培養刺激電場印加カルシウムイメージング法蛍光顕微鏡法双極正方波平行線電極活動電位記録シナプス伝達解析一次元パターニング均一電場興奮