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微小電極アレイを用いたマウス脊髄切片における神経回路の評価

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

出典:Iredale, J. A., et al. Recording Network Activity in Spinal Nociceptive Circuits Using Microelectrode Arrays. J. Vis. Exp. (2022).

このビデオは、マウス脊髄切片のニューロンネットワーク活動を研究するための微小電極アレイベースのアッセイを示しています。まず、スライスの表在性後角(SDH)からの電気生理学的活動が記録されます。次に、カリウムチャネル阻害剤を導入して脱分極を延長し、ニューロンネットワーク全体で同期したリズミカルな活動をもたらします。

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

サンプル採取を含むすべての手順は、研究所のIRBガイドラインに従って実行されています。

1. in vitro電気生理学

  1. 脊髄切片の調製と記録のための溶液の調製
    1. 人工脳脊髄液
      手記：人工脳脊髄液(aCSF)は、界面インキュベーションチャンバーで使用され、記録開始まで、および実験中に薬物の灌流剤および希釈剤としてスライスが保存されます。詳細な構成については、表1を参照してください。
  2. 118 NaCl、25 NaHCO3、10グルコース、2.5 KCl、1 NaH2PO4、1 MgCl2、および2.5 CaCl2を含むaCSFを調製します。これには、CaCl2を除く上記の必要量を2 Lの蒸留水に加えます。
  3. 上記の溶液をカルボゲン(95%O2、5%CO2)で5分間泡立て、CaCl2.
    を加えます 手記：このステップにより、CaCl2の沈殿が防止され、溶液が曇らないようにすることができます。実験中の薬物適用では、aCSF中の薬物ストック溶液を所望の最終濃度に希釈します。

2. ショ糖置換人工脳脊髄液

>注:ショ糖置換aCSFは、解剖および脊髄スライス中に使用されます。名前が示すように、スクロースはNaClの代わりに使用され、浸透圧を維持しながらこれらの手順中のニューロンの興奮を軽減します。詳細な構成については、表1を参照してください。

  1. 250スクロース、25NaHCO3、10グルコース、2.5KCl、1NaH2PO4、1MgCl2、および2.5CaCl2を含むスクロース置換aCSFを調製します。CaCl2を除く上記すべての必要量を300mLの蒸留水に添加します。
  2. 溶液をカルボゲンで5分間泡立ててから、CaCl2を加えます。
  3. 溶液を-80°Cの冷凍庫で約40分間、または溶液がスラリーを形成するまで保存します。固体の凍結を避け、スラリーの一貫性で使用してください。

3. 微小電極アレイの準備

>注:MEAの接触面は、親水性にするための前処理が必要です。

  1. 実験の前に、MEAをウシ胎児血清(FBS)またはウマ血清(HS)で30分間よく満たします。
  2. FBSまたはHSを取り外し、蒸留水が泡立たなくなるまで、MEAを蒸留水で約5回洗浄します。ウェルにCSFを充填し、すぐに使用できます。

>4. 急性脊髄スライスの準備

  1. 100 mg / kgケタミン(i.p.)でマウスに深く麻酔をかけ、大きな手術用ハサミを使用してマウスの首を切ります。
  2. ヒップのレベルで皮膚に小さな切り込みを入れて、腹部の上の皮膚を取り除きます。カットの両側の皮膚を吻側に引っ張り、すべての皮膚が取り除かれるまで、つまり胸郭の上部から骨盤の上部まで(腹側と背側の両方)に引っ張ります。
  3. 体を氷の上に置き、腹側アプローチを使用して、すべての内臓を取り除き、胸骨の外側の肋骨を切断することにより、脊柱を露出させます。
  4. 腹側胸郭、両方の肩甲骨(約T2で切り取られる)、および下肢と骨盤(仙骨のほぼ上部で切り取られる)を切除します。
  5. 脊柱と肋骨の準備物を、氷冷したショ糖aCSFを含む解剖浴に移します。下部の背中の筋肉と取り付けられた上部肋骨にピンを通して、製剤の四隅すべて(腹面を上向きに)ピンで固定します。
  6. ロンゲールで椎骨の腹面を覆うすべての筋肉と結合組織を取り除き、T12からL2の椎体のほぼ下にある腰仙骨拡大の上の椎骨領域を特定します。
  7. 腰仙骨拡大領域の尾側にある椎体を切除して、脊柱管内にある脊髄へのアクセスを提供します。
  8. 湾曲したスプリングハサミを使用して、椎体を吻側に持ち上げて引っ張りながら椎弓根を両側に切り込み、椎骨の腹側と背側を分離して脊髄を露出させます。
  9. 椎体を切除して腰仙骨の肥大を明らかにしたら、脊髄を固定している残りの根をスプリングハサミで慎重に取り除き、臍帯が浮かぶまでします。
  10. 腰仙骨の肥大の上下に吻側と尾側の切り傷で脊髄を分離し、脊髄の標的領域が「自由に浮かぶ」ようにします><。 手記：好ましいスライスの向きによって、その後のセクショニングのためにコードがどのように取り付けられるかが決まります(図1)。
  11. 横方向のスライスの場合は、腰仙部を取り付けられた根で持ち上げ、中央に浅いチャネルが切られたプレカットポリスチレン(発泡スチロール)ブロック(1 cm x 1 cm x 1 cm)に置きます。シアノアクリレート接着剤(材料の表を参照)を使用して、ブロックとコードを切片作成プラットフォームに取り付け、氷冷したショ糖aCSF(スラリー)を含む切断槽に入れます
    手記： 浅いチャネルは、背側が露出し、脊髄の胸部端がブロックの下部にある状態で、脊髄を固定して方向付けするのに役立ちます。
  12. 矢状スライスの場合は、切片作成プラットフォームにシアノアクリレート接着剤の細い線を置き、取り付けられた根で腰仙骨の拡大を持ち上げ、接着剤のラインに沿ってコードを配置し、一方の側面が接着剤の中にあり、もう一方の側面が上を向いていることを確認します。氷冷したショ糖aCSF(スラリー)が入ったカッティングバスに入れます。
  13. 水平スライスの場合は、セクショニングプラットフォームにシアノアクリレート接着剤の細い線を置きます。付着した根で腰仙骨の拡大を持ち上げ、腰仙骨の拡大を接着剤のラインに沿って配置し、腹側表面が接着剤の中にあり、背側表面が上を向いていることを確認します。付属のルートを使用してコードを配置します。氷冷したショ糖aCSF(スラリー)が入ったカッティングバスに入れます。

5. 微小電極アレイの記録

>注:次の手順では、脊髄切片でのMEAベースの実験の記録データの使用方法について詳しく説明します。実験に応じて、いくつかのMEAデザインを使用することができます。これらの実験で使用したMEAの設計の詳細を表2と図2に示します。EgertらとThiebaudらによって、それぞれ平面および3次元(3D)MEAの詳細な設計情報が公開されています。どちらのMEAタイプも、60個の窒化チタン電極と、窒化ケイ素絶縁層、窒化チタントラックおよびコンタクトパッドで構成されています。

  1. 実験セットアップ
    1. コンピュータとインターフェースボードの電源を入れ、録音ソフトウェアを起動します。
    2. 組み立て済みの録画テンプレートをロードします(図3A)。レコーダータブでその日のファイルに名前を付けます。
    3. 実験期間中、aCSFをカルボゲン(5%CO2、95%O2)で連続的に泡立てます。
    4. 蠕動ポンプによって制御される灌流システムをオンにします。インレットラインをaCSFに、インレットエンドを廃棄物ビーカーに入れます。灌流ラインを aCSF でプライミングします。
    5. 4-APおよびその他の薬物溶液を調製するには、ストックを50 mLのaCSFで必要な最終濃度(例:4-APの場合は200 μM)に希釈します。
  2. 4-アミノピリジン(4-AP)活性
    1. インキュベーション後、aCSFを充填した先端の大型パスツールピペットを使用して、インキュベーターから1つのスライスを移します。
    2. スライスをMEAウェルに入れ、aCSFを追加します。
    3. 細い短毛の絵筆を使用して、スライスを60電極の記録アレイ上に配置します。特に3Dアレイを使用している場合は、電極を絵筆で接触させたり、電極を横切って組織を引きずったりしないでください。
      手記：MEAのレイアウトに応じて、これは正確な位置決めのために顕微鏡の助けを借りるかどうかにかかわらず行うことができます。
    4. スライスを配置した後、組織の上に加重ネットを配置して組織を所定の位置に保持し、MEA電極との良好な接触を促進します><。 手記： スライスは、ネット配置後に再配置が必要な場合があります。
    5. MEAを録音ヘッドステージに配置します(図2A、B)。
    6. 倒立顕微鏡(倍率2倍)を使用して電極上の組織の位置を確認し、できるだけ多くの電極が表在性背角(SDH)の下にあることを確認します。これらの電極は、分析中にノイズを差し引いたりアーティファクトを記録したりするために重要であるため、少なくとも2〜6個の電極がスライスに接触しないようにしてください(図2E)。
    7. カメラの電源を入れ、デバイスに接続して、分析中に使用するためにMEAを基準としたスライスの参照画像を撮影します。
    8. 記録ソフトウェアでDAQ(データ集録)を開始し、すべての電極がクリアな信号を受信していることを確認します
      手記：信号にノイズが多い場合は、ヘッドステージのクリップを外し、MEA接点パッドと金スプリング接点の両方を70%エタノールで清掃します(ラボ用ワイプを使用して、清掃後にパッドと接点が乾いていることを確認してください)。それでも信号にノイズが多い場合は、記録ソフトウェアで誤動作している電極をオフにするか、後で分析中に除外するためにメモしておいてください。
    9. 灌流インレットラインとアウトレットラインをMEAウェル(以前はaCSFで満たされていた)に取り付け、灌流システムをオンにします。流量(理想的には毎分4〜6バス容量)を確認し、流出がスーパーフューセートのオーバーフローを防ぐのに十分であることを確認してください。
    10. 組織を 5 分間平衡化した後、ろ過されていない生のベースライン データを 5 分間記録します。
    11. 灌流インレットラインを aCSF から 4-AP 溶液に移動し、4-AP によって誘発されるリズミカルな活動が定常状態に達するまで 12 分間待ちます (薬物が浴に到達するまで 2 分、活性がピークに達してからプラトーになるまで 10 分)。
    12. 4-APによる5分間の活性を記録します。その後の録音に備えて、薬物をテストしたり、4-APの安定性を確認し
      13. たりしてください。

>表1:人工脳脊髄液の組成。

名 名 名 名 名 名 名 名 名
ケミカルaCSF(mM)aCSF(g / 100 mL)ショ糖置換aCSF(mM)ショ糖置換aCSF(g / 100 mL)高カリウムaCSF(mM)高カリウムaCSF(g / 100 mL)
塩化ナトリウム(NaCl)1180.690--1180.690
炭酸水素ナトリウム(NaHCO3)250.210250.210250.210
グルコース100.180100.180100.180
塩化カリウム(KCl)2.50.0192.50.0194.50.034
リン酸二水素ナトリウム(NaH2PO4)10.01210.01210.012
マグネシウムクロライド(MgCl2)10.0110.0110.01
塩化カルシウム(CaCl2)2.50.0282.50.0282.50.028
蔗糖--2508.558--

>表2:微小電極アレイのレイアウト。

微小電極アレイレイアウト
微小電極アレイモデル60MEA 200/30iR-TI60-3DMEA 100/12/40iR-Ti60-3DMEA 200/12/50iR-Ti60MEA 500/30iR-TI
平面または3次元(3D)平面3D(3D)3D(3D)平面
電極グリッド8×88×88×86×10
電極間隔200μm100μm200μm500μm
電極径30μm12μm12μm30μm
電極高さ(3D)該当なし40μm50μm該当なし
実験横スライス横スライス射手 + 水平射手 + 水平

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Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
図1:脊髄スライスの向き、取り付け方法、切断方法。 (A)横方向のスライスには、支持溝が切り込まれた発泡スチロールの切断ブロックが必要です。脊髄は支持溝のブロックに寄りかかっており、コードの背側はブロックの反対側を向いています。ブロックとコードは、シアノアクリレート接着剤で切断ステージに接着されます。(B)矢状スライスは、切断ステージにシアノアクリレート接着剤の細い線を配置し、次に接着剤の上に脊髄をその側面に配置することによって調製されます。(C)水平スライスは、切断ステージにシアノアクリレート接着剤の細い線を置き、次に脊髄腹側を下にして接着剤の上に配置することによって調製されます。

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Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
利益相反は宣言されていません。

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
4-アミノピリジンシグマ・アルドリッチ275875から5G
100%エタノールサーモフィッシャーAJA214-2.5LPLの
CaCl2 1Mバンクシア・サイエンティフィック0430/1L
カルボノックス(カルボゲン - 95%O2、5%CO2)コアガス219122
湾曲したロングハンドルスプリングはさみファインサイエンスツール15015-11
カスタムメイドのエアインターフェースインキュベーションチャンバー
ウシ胎児血清サーモフィッシャー10091130
フォーセプスデュモン#5ファインサイエンスツール11251から30
グルコースサーモフィッシャーAJA783-500G
馬の美容液サーモフィッシャー16050130
倒立顕微鏡ツァイスアクシオバート10
KClのサーモフィッシャーAJA383-500G
ケタミンセバKETALAB04
大型手術用ハサミファインサイエンスツール14007-14
Loctite 454インスタント接着剤ボルトと工業用品L4543Gの
MATLABMathWorksのR2018bの
MEA、3次元マルチチャネルシステム60-3DMEA100/12/40iR-Ti、60-3DMEA200/12/50iR-Ti60個の窒化チタン(TiN)電極と1個の内部参照電極が8x8の正方形グリッドに整理されています。電極の直径は12μm、高さは40μm(100/12/40)または50μm(200/12/50)で、等間隔に100μm(100/12/40)または200μm(200/12/50)の間隔があります。
MEAヘッドステージマルチチャネルシステムMEA2100-HS60
MEAインターフェースボードマルチチャネルシステムMCS-IFB 3.0 マルチブート
MEAネットマルチチャネルシステムアラHSG-MEA-5BD
MEA灌流システムマルチチャネルシステムPPS2
MEA、平面マルチチャネルシステム60MEA200/30iR-Ti、60MEA500/30iR-Ti60個の窒化チタン(TiN)電極と1個の内部参照電極、8x8の正方形グリッド(200/30)または6x10の長方形グリッド(500/30)のいずれかに編成されています。電極の直径は30μmで、等間隔に200μm(200/30)または500μm(500/30)の間隔があります。
MgCl2サーモフィッシャーAJA296-500G
顕微鏡カメラ動機Moticam X Wi-Fiの
マルチチャンネルアナライザーソフトウェアマルチチャネルシステムV 2.17.4
Multi Channel ExperimenterソフトウェアマルチチャネルシステムV 2.17.4
NaClサーモフィッシャーAJA465-500G
NaHCO3サーモフィッシャーAJA475-500G
NaH2PO4サーモフィッシャーACR207805000
ロンゲールファインサイエンスツール16021-14
小さな春ばさみファインサイエンスツール91500から09
小さな手術用ハサミファインサイエンスツール14060から09
蔗糖サーモフィッシャーAJA530-500G
瞬間接着剤シアノアクリレート系接着剤
テトロドトキシンアブカムAB120055
除振テーブルニューポートVH3048W-オプト
振動ミクロトームライカVT1200 S
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