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動物サンプルを含むすべての手順は、適切な動物倫理審査委員会によって審査され、承認されています。
1. 全細胞パッチクランプ録音
- 最初の組織切片を、クレブス溶液の連続流に浸した記録チャンバーに移します。軽量を使用してセクションを取り付け、対物レンズを水没させます。
- 顕微鏡で線条体領域を特定し、GFP陽性(再プログラム)ニューロンを検索します。形態が広範囲で、繊維束や血管で覆われていないニューロンを選択します。
- パッチング用のホウケイ酸ガラスピペット(3〜7MΩ)を調製し、次の細胞内溶液(mM単位)を充填します:122.5グルコン酸カリウム、12.5 KCl、0.2 EGTA、10 HEPES、2 MgATP、0.3 Na3GTP、および8 NaClをKOHでpH 7.3に調整します。
- ガラスピペットを記録電極に取り付け、溶液に浸します。電極の抵抗を再確認してください。次に、ピペットでゆっくりとセルに近づき、電極にわずかな正圧を保ちながら、先端を詰まらせないようにします.
注意:電極を下降させる間は細胞を追跡し、細胞内の蛍光を漂白しないように注意してください(つまり、蛍光ランプが必要ない場合はオフにします)。
- 電極の陽圧を使用して周囲の組織を注意深くすすぎ、電極で細胞に近づきます。電極をセルの真上に配置して、電極が膜に触れるまで下降します。電極と細胞膜の間にギガΩシールを作り、負圧パルスで膜を破裂させて全細胞パッチを作成します
注意:再プログラムされたニューロンは敏感です。パッチングには注意し、Giga-Ωシールに到達したり、細胞膜を開いたりするときには、負圧をかけすぎないように注意してください。また、高齢の動物にパッチを当てるには、結合組織が厚く、ニューロンを視覚化するのが難しいため、練習と忍耐が必要です。
- 電流クランプモードで慣らした直後の静止膜電位を確認し、分析のために書き留めてください。
- 電流クランプでは、セルを-60mVから-80mVに維持し、-20pAから+90pAまで500msの電流を注入し、活動電位を誘導するために10pA刻
みで注入します。