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動物サンプルを含むすべての手順は、適切な動物倫理審査委員会によって審査され、承認されています。
1. カルシウム染料のローディング
- カルシウム色素は、個々の研究者の好みに基づいて選択してください。ここでは、Fluo-8AMまたはFluo-4AMを使用します。しかし、この方法は他の色素にも適用できます:DMSO中のカルシウム色素を1 mM溶液および1%ブロック共重合体(プルロン酸-127など)に溶解し、最終容量50 μLまで溶解し、10分間超音波処理します。
- 最終濃度10 μM、0.01%ブロック共重合体を脳スライス用にaCSFに溶液を添加します。
- 成体動物の場合(>12週間)、色素(50μL)を直接脳切片にピペットで移し、75分間保持して、色素が深層に浸透しやすくします。
- 色素インキュベーション中に水中スライスの適切な酸素化を確保するために、2.5mLのaCSFで希釈したカルシウム染料を充填した密閉蓋(直径2.5cm、高さ3.5cmの円形ジャー)を備えたガラスローディングチャンバーを調製します。95% O2/5% CO2 で連続的に酸素化します。泡立たないでください。
- 色素をロードした後、組織をaCSFで洗浄し、インキュベーションシステムに移し、実験に使用する準備ができるまで温度をゆっくりと15〜16°Cに下げます。
2. 電気生理学的記録とイメージング
- 顕微鏡下の水中記録チャンバーに組織を置き、室温(~22°C)または生理学的温度(~35°C)のいずれかで4〜5mL/minの流速で酸素化aCSFを灌流します。U字型の金またはプラチナワイヤーにナイロンまたは金の糸を伸ばして接着したカスタムメイドの「ハープ」を使用して、ティッシュを所定の位置に保持します。
- 電気生理学の場合:
- マイクロピペットプーラーを使用して1.5 mm(内径1.19 mm)のホウケイ酸ガラスから記録ピペットを調製し、5〜6 MΩの最終抵抗を達成します。
- ピペットに3〜4μLの内部溶液を入れ、CCDカメラを使用して赤外線微分干渉コントラスト(IR-DIC)下で細胞を可視化します。細胞内溶液は、実験結果を達成するために、各実験に合わせて慎重に調整する必要があります。
- マイクロマニピュレータを使用して、ピペットホルダーの吸引ポートからプラスの圧力を細胞の膜に加えられたままピペットを配置します。ILMが網膜から除去されているため、事前の膜掻き取りは必要ありません。ピペットをセルに取り付けたら、ピペットに穏やかな負圧を加えてギガオームシールを実現します。次に、短時間の負圧で細胞膜を破裂させます。
- 全セル電流クランプまたは電圧クランプ記録は、必要に応じて標準的な手法を使用して行います。
- カルシウムイメージング:
- Fluo-4の単一励起波長の場合、励起光を460〜490 nmのバンドパスフィルターでフィルタリングし、放出された光を515〜550 nmのバンドパスフィルターでろ過します。高速デジタルカメラを使用して、最速かつ最も感度の高い録音を行います。必要に応じて画像を取得します。
- 蛍光の変化を時間の関数として測定します (Fluo-4) のいずれかで
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