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方法論記事

α-シヌクレイン凝集体で処理したニューロンの免疫染色

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2025年7月8日

この記事について

要約

出典:Panattoni, G., et al. Exogenous Administration of Microsomes-associated Alpha-synuclein Aggregates to Primary Neurons As a Powerful Cell Model of Fibrils Formation. J. Vis. Exp. (2018)

このビデオは、α-シヌクレイン(αS)凝集体で処理されたニューロンの免疫染色を示しています。ニューロンは最初にαS凝集体で処理されます。その後、それらを固定し、透過処理し、ブロッキング溶液で処理します。一次抗体を添加し、続いて蛍光標識二次抗体と核染色剤を添加します。次に、サンプルをマウントし、顕微鏡で観察します。

プロトコル

1. ニューロンの治療

>注:治療はディビジョン(DIV)7で行われています。すべてのステップは、無菌状態で細胞培養フードの下で行われます。DIV 7における皮質ニューロン培養密度の例を図1に示します。

  1. 3つの異なる疾患トランスジェニックマウスの脊髄から得られたプールミクロソーム関連αS凝集体は、元のホモジナイゼーションバッファー[250 mMスクロース、20 mM HEPES(4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジンエタンスルホン酸)、10 mM KCl(塩化カリウム)、1.5 mM MgCl2((塩化マグネシウム)、2 mM EDTA(エチレンジアミン四酢酸)からなる)を使用して、1 μg/μL溶液を有する。 および希釈のための1xホスファターゼ/プロテアーゼ阻害剤]。
  2. 培地(2% B27、10xゲンタマイシン、および2 mMグルタミン)を含む24ウェルプレートのポリD-リジンカバースリップでニューロン培養を行います。培地の1/3を取り出し、2%B27、1xゲンタマイシン、および2mMグルタミンを含む新しい培地と穏やかに交換します。
  3. プールされたミクロソーム関連α-シヌクレイン(αS)凝集体1 μgを細胞培地に加えます。ニューロンを37°Cのインキュベーターに戻します。
  4. 1週間、3日ごとに、新鮮な培地の1/3を追加します。メディアを交換しないでください。追加するだけです。
  5. 治療の1週間後、培地の1/3を取り出し、2%B27、10μg/mLのゲンタマイシン、および2mMのグルタミンを含む新しい培地と穏やかに交換します。3日ごとに繰り返します。
  6. 治療の2週間後にニューロンを固定します(DIV 21)。

2. 免疫蛍光

  1. リン酸緩衝生理食塩水(PBS)1xおよび5%ショ糖溶液中の2%パラホルムアルデヒドで、化学ヒュームフードの下で振とうせずに室温(RT)で15分間ニューロンを固定します。
  2. 固定液を取り外してください。PBS 1x、3回で短時間洗います.
    手記:一次ニューロンはポリリジンカバースリップにしっかりと付着しないため、すべての洗浄手順を穏やかに行ってください。
  3. 0.3%の非イオン性界面活性剤をPBS 1x中のRTで5分間ニューロンを透過化します。
  4. PBSで1回、3回簡単に洗います。
  5. ニューロン
  6. を3%ウシ胎児血清(FBS)とPBS 1xでRTで30分間インキュベートし、眼窩シェーカー上の非特異的結合部位をブロックします。
  7. オービタルシェーカーで、PBS 1x, O/Nの3% FBSに溶解した適切な一次抗体とニューロンをインキュベートします。
    注:syn303(1:1,000)、マウスαS(1:200)、pser129-αS(1:1,000)、およびTau(1:10,000)抗体を使用しました。
  8. 抗体溶液を取り出し、PBS 1xで短時間3回洗浄します。
  9. NPS中の3% FBSに溶解した適切な蛍光二次抗体とニューロンを、オービタルシェーカー上の暗闇のRTで1時間インキュベートします。
  10. 抗体溶液を取り出し、PBS 1xで短時間3回洗浄します。
  11. DARPI(4′,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール)溶液(PBS 1x中0.1 μg/mL)で、オービタルシェーカーの暗闇で15分間、ニューロンを
  12. 染色します。
  13. 抗体溶液を取り出し、PBS 1xで短時間3回洗浄します。
  14. カバースリップを色あせ防止封入剤を使用してスライドに取り付けます。

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結果

figure-results-1
図 1.皮質ニューロン培養。皮質ニューロン培養のDIV 7における密度を示す代表的な画像。画像は倒立型光学顕微鏡、10倍対物レンズで撮影されました。スケールバー = 100 μm。

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開示事項

利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
蔗糖シグマ・アルドリッチ84097から1キロ
ヘペスシグマ・アルドリッチH0887-100ミリリットル1M pH=7-7.6
EDTAのシグマ・アルドリッチ0390-100ミリリットルpH=8 0.5M
塩化マグネシウムシグマ・アルドリッチM8266-100G
炭酸ナトリウムシグマ・アルドリッチS7795-500G
炭酸水素ナトリウムシグマ・アルドリッチS5761-500G
メタノールシグマ・アルドリッチ322415から6X1L
KClのシグマ・アルドリッチP9541-500G
cOmpleteミニロシュ11836170001プロテアーゼ阻害剤
フォスストップロシュ4906837001ホスファターゼ阻害剤
BCAタンパク質アッセイキットユーロクローンEMPO14500
Criterion TGX 4-20% ステインフリー、18ウェルバイオラッド5678094
サポートニトロセルロースメンブレンバイオラッド16200970.2μm
ブロッティンググレードブロッカーバイオラッド1706404無脂肪粉乳
SuperSignal West Pico 化学発光基質テルモフィッシャーサイエンティフィック34077
硝酸シグマ・アルドリッチ100441100065パーセント
ガラスカバースリップテルモフィッシャーサイエンティフィック1014355118NR118mm×
ポリ-D-リジンシグマ・アルドリッチP7280
ハンクのバランスの取れた塩溶液テルモフィッシャーサイエンティフィック14170-500ミリリットル
ペニシリン/ストレプトマイシンテルモフィッシャーサイエンティフィック1514012210,000 U/mL、100 mL
ダルベッコのモディファイドイーグルのミディアムテルモフィッシャーサイエンティフィックD5796-500ミリリットル
トリプシン-EDTAテルモフィッシャーサイエンティフィック154000540.50パーセント
B27テルモフィッシャーサイエンティフィック1750404450倍
グルタマックステルモフィッシャーサイエンティフィック〒35050-038100倍
DNAseシグマ・アルドリッチD5025
ウシ胎児血清ユーロクローンEC50182L
グルタミン酸シグマ・アルドリッチ1446600から1G
ゲンタマイシンテルモフィッシャーサイエンティフィック1571010 mg / ml
ニューロベースルミディアムテルモフィッシャーサイエンティフィック〒10888-022
シトシンアラビノシド(AraC)シグマ・アルドリッチC3350000
VECTASHIELD退色防止封入剤ベクターラボラトリーズH-1000
ダピテルモフィッシャーサイエンティフィック62247
90 Tiローターベックマン該当なし超遠心ローター
オプティマL-90K超遠心分離機ベックマン該当なし
Syn-1抗体、クローン42BDバイオサイエンス610786アンチマウスWB:1:5000
Syn303バイオレジェンド824301マウス防止IF:1:1000
タウ抗体シナプス系314002ウサギ耐性IF:1:10,000
pser129-αS 抗体藤原らからの贈り物、参考文献19アンチウサギWB:1:5000
pser129-αS 抗体アブカムAB51253アンチウサギIF:1:1000
マウスαS(D37A6)XP細胞シグナル伝達4179アンチウサギIF 1:200
Alexa Fluor 555標識抗ウサギ抗体テルモフィッシャーサイエンティフィックA27039 (英語
Alexa Fluor 488標識抗マウス抗体テルモフィッシャーサイエンティフィックA-11029
マイクロソン XL-2000ミソニックスソニケーター
ウルトラボトル(オークリッジボトル)、PCB、16x76mm、アセンブリ、ノリルキャップ、ベックマンタイプサイエンスサービスEUS4484超遠心チューブ
AXIO Observer 倒立型光学顕微鏡ツァイス該当なし
TCS SP2 レーザー走査型共焦点顕微鏡ライカ該当なし
倒立型落射蛍光顕微鏡ニコン該当なし
トリトン x-100シグマ・アルドリッチ100〜500ML非イオン性界面活性剤
型 サプリメント の 抗体 名 )

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