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方法論記事

トランスジェニック線虫におけるプリオン様タンパク質の細胞間拡散をモニタリングするためのタイムラプスイメージング

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2025年7月8日

この記事について

要約

出典: Nussbaum-Krammer, C. I., et al. Investigating the Spreading and Toxicity of Prion-like Proteins Using the Metazoan Model Organism C. elegans. J. Vis. Exp. (2015)

このビデオは、赤色蛍光タンパク質でタグ付けされたプリオン様タンパク質を発現するC.エレガンスのin vivoイメージングの手順を示しています。このプロトコールでは、アガロースパッド上に線虫を固定化して、タイムラプス共焦点顕微鏡法を行い、細胞内および細胞間のタンパク質の凝集と輸送を明らかにします。この手法は、神経変性疾患に関連するタンパク質凝集を研究するために重要です。

プロトコル

1. In vivoタイムラプスイメージングによるプリオン様タンパク質の細胞内拡散のモニタリング

>注:標準的な方法に従ってC.エレガンスの野生型(WT)(N2)およびトランスジェニック系統を育て、栽培温度を慎重に管理してください。

  1. プリオン様タンパク質を発現するC.エレガンスのトランスジェニック系統を作製し、単量体の赤色蛍光タンパク質(mRFP)をタグ付けします。
  2. 標準的な方法に従って、産卵または漂白によって同期した個体群を準備します。
    1. 産卵による同期
      1. 10〜20匹の妊娠した成虫を皿に移し、1〜2時間産卵させます。
    2. 漂白による同期
      1. 妊娠した成人の同期していない集団を収集し、アルカリ性次亜塩素酸塩溶液(250 mM水酸化ナトリウム(NaOH)および1:4(v / v)希釈した市販の漂白剤を水(H2O))で漂白します。.卵をM9緩衝液(21 mM Na2HPO4・7H2O(リン酸二ナトリウム七水和物)、22 mM(リン酸二水素カリウム)KH2PO4、86 mM塩化ナトリウム(NaCl)、1 mM MgSO4・7H2O(硫酸マグネシウム七水和物)、dH2Oを最大1 Lまで加える)で卵を2回(218 x gで1分間)洗浄します。
      2. 20 °Cで一晩(O/N)穏やかな攪拌を行いながらM9緩衝液で孵化させます。食糧源がない場合、ワームの発生はL1段階で停止し、同期した個体群が残ります。OP50 E. coli細菌を播種した新鮮な線虫増殖培地(NGM)プレートにL1を移し、子孫を所望の年齢まで発育させます。
  3. 2%アガロースパッド(H2O中)を顕微鏡スライド上に調製します。
    1. スペーサーとして使用するために、ラベリングテープを全長にわたって貼り付けた2つの顕微鏡スライドを準備します。それらの間に3番目の顕微鏡スライドを置きます。
    2. 2%アガロースをH2Oに溶解し、クリーンスライドに1滴ピペットで移します。
    3. 寒天滴の上に、他の3つのスライドに対して垂直に4番目のスライドを置きます。それをそっと押し下げて、パッドをラベリングテープと同じ厚さに平らにします。
    4. 1分間乾かしてから、スペーサーを取り外し、スライドをそっと引き離します。寒天パッドはそのうちの1つにくっつきます。
  4. ~10 μl の麻酔薬 (M9 バッファー中の 2 mM レバミゾール) をパッドにピペットで移し、プラチナ ワイヤー ピックを使用して ~10 匹を移します。カバースリップ(~22 x 22 mm)で覆い、1時間以内に画像を撮影します。
  5. あるいは、長期間にわたって映画を取得するため、または動物の動きの可能性をさらに減らすために、麻酔薬とビーズ固定の組み合わせを使用します。
    1. 記載されているように10%アガロースパッド(M9バッファー中)を調製し、3 μlのナノスフィアサイズ標準溶液(ポリスチレンビーズ、100 nm)と3 μlの麻酔薬(M9バッファー中の4 mMレバミゾール)に線虫を加えます。カバースリップでやさしく覆います。乾燥を防ぐため、カバーガラスをVALAP(ワセリン、ラノリン、パラフィンワックスの等量の混合物)で密封します。
  6. 共焦点顕微鏡を使用して固定化された線虫を画像化.
    注:結果は、EM-CCDカメラとMetaMorphなどの顕微鏡自動化および画像解析ソフトウェアを備えたスピニングディスクAF共焦点顕微鏡を使用して取得されますが、以下の詳細を概説していますが、他の同等の共焦点イメージングシステムも使用できます。
    1. 63Xまたは100X / 1.4NAオイル対物レンズを使用し、ワームを含む顕微鏡スライドを顕微鏡スライドホルダーに入れます。
    2. ソフトウェアを起動します。mRFPイメージング用のレーザー出力とフィルターを調整します。561 nmレーザーを10 %のパワーで使用し、蛍光フィルター>600 nmで使用します。
    3. 「MultiDimensional Acquisition」を開きます。「メイン」タブで、「タイムラプス」と「ジャーナルの実行」(ハードウェアオートフォーカス:オフ)のチェックボックスをオンにします。
    4. 「保存」タブで、ファイルを保存するディレクトリフォルダを選択または作成します。ファイルに名前を割り当てます。
    5. 「Wave Length」タブで、適切な照明を選択し、露出とゲインを調整します。「YokoQuad Red」(またはmRFPイメージングの同等の照明設定)を、個々のサンプルに応じて、露光が100〜300ミリ秒、カメラゲインが100〜300の「YokoQuad Red」(またはmRFPイメージングの同等の照明設定)を使用します(ライブ画像を使用して評価)。
    6. 「タイムラプス」タブで、「タイムポイント数」=301、「期間」=5分、「時間/インターバル」=1秒を選択します。
    7. 「ジャーナル」タブで、ジャーナル:「AFC SET Z HOLD」と「AFC Return to Z HOLD」、タイプ:「スペシャル」(2回)、初期ポイント:「時点の開始」と「終了時点」を選択します。このオートフォーカスオプションは、同じセクションを長時間にわたって撮影するために重要です。
    8. 設定が完了したら「取得」を押すと、タイムラプス動画は別々のTIFFファイルとして保存されます。

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開示事項

利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
試薬
ナノスフィアサイズ標準 100nmサーモサイエンティフィック3100エー
レバミゾールシグマL-9756
備品
Sorvall Legend XTR冷蔵遠心分離機、120VACサーモサイエンティフィック75004521http://www.coleparmer.com/Product/Thermo_Scientific_Sorvall_Legend_
XTR_Refrigerated_Centrifuge_120
VAC/EW-17707-60
96ピンリプリケータサイオノミックスhttp://www.scinomix.com/all-products/96-pin-replicator/
HiGro大容量、インキュベーションシェーカーデジラボhttp://www.digilabglobal.com/higro
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スピニングディスクAF共焦点顕微鏡ライカhttp://www.leica-microsystems.com/products/light-microscopes/life-science-research/fluorescence-microscopes/details/product/leica-sd-af/
Falcon 4M60カメラテレダイン・ダルサhttp://www.teledynedalsa.com/imaging/products/cameras/area-scan/falcon/PT-41-04M60/
ソフトウェア
MetaMorph 顕微鏡自動化および画像解析ソフトウェア分子デバイスhttp://www.moleculardevices.com/products/software/meta-imaging-series/metamorph.html
浜松SimplePCI画像解析ソフトウェアマイヤー・インスツルメンツhttp://meyerinst.com/imaging-software/hamamatsu/index.htm
イメージJNIHのhttp://rsbweb.nih.gov/ij/download.html
ImageJ 用の wrMTrck プラグインhttp://www.phage.dk/plugins/wrmtrck.html
C.エレガンス株
N2 (WT)カエノーラブディティス遺伝学センター(CGC)http://www.cgc.cbs.umn.edu/strain.php?id=10570
シリーズ

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