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1. 固定細胞におけるMRC(ミトコンドリア呼吸鎖)複合体サブユニットとTFAM(ミトコンドリア転写因子A)のフローサイトメトリー測定
- 培養期間の終わりに、細胞解離試薬を添加して細胞を剥離(~106)し、その後、ペレット化して細胞を15mLチューブに集めます。リン酸緩衝生理食塩水(PBS)(1x)で300 × gで5分間遠心分離することにより、細胞を2回遠心分離して細胞を洗浄します。
- 1.6%パラホルムアルデヒド(PFA)(15mLチューブ中の1.6%PFA1 mL)に細胞を室温(RT)で10分間固定し、PBS(1x)で300 × gで5分間遠心分離することにより、PBS(1x)で2回遠心分離して細胞を洗浄します。
- 氷冷した90%メタノール(15 mLチューブ中の90%メタノール1 mL)を-20°Cで20分間細胞に浸透させます。
- 0.3 Mグリシン、5%ヤギ血清、および1%ウシ血清アルブミン(BSA)-PBS中のフラクションVを含むブロッキングバッファー(1x)(15 mLチューブに1 mLのブロッキングバッファー)でサンプルをブロッキングします。PBS(1x)で2回遠心分離して細胞を洗浄します。
- 複合体Iサブユニットの測定用の抗NDUFB10(1:1,000)、複合体IIサブユニットの測定用の抗コハク酸デヒドロゲナーゼ複合体フラビンタンパク質サブユニットA(SDHA、1:1,000)、複合体IVサブユニットの測定用の抗COX IV(1:1,000)、Alexa Fluor 488(1:400)と結合した抗TFAM(ミトコンドリア転写因子A)抗体と30分間インキュベートします。Alexa Fluor 488 (1:400) と結合した抗 TOMM20 抗体 (ミトコンドリア外膜 20 トランスロカーゼ) で同数の細胞を別々に染色します (15 mL チューブに 1 mL の一次抗体溶液を注入します。抗体の詳細については、材料表を参照してください)。
- 細胞をPBS(1x)で1回、300 g×遠心分離して5分間洗浄し、二次抗体(1:400)をNDUFB10、SDHA、およびCOX IVのチューブに加え、これらの溶液で細胞を30分間インキュベートします。
- 細胞をPBS(1x)で1回、300 g× gで5分間遠心分離し、上清を吸引し、チューブ内に約100 μLを残します。細胞ペレットを300 μLのPBS(1x)に再懸濁します。細胞を氷上の暗所に置いた1.5mLの微量遠心チューブに移します。
- フローサイトメーター(青色レーザー3個、赤色レーザー1個構成)で細胞を解析します。530/30 バンドパス フィルターを使用して、フィルター 1 (FL1) の信号を検出します。