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1. 体壁の準備
注:第3幼虫の体壁の準備(体壁の筋肉を神経支配するNMJの研究用)は、前述のように行われましたが、いくつかの変更が加えられました。
- 解剖
- フライストックとクロスを25°Cで5〜6日間、標準的な手順で飼育します。
- 細い鉗子を使用して、バイアルまたはボトルから這う3番目の幼虫を選びます。
- リン酸塩緩衝生理食塩水(PBS)が入った小さなシャーレで幼虫を洗い、食物粒子を取り除きます。
- 1匹の幼虫をシルガードディスクに置き、氷のように冷たいPBSを数滴浸します。氷のように冷たいPBSを使用すると、幼虫を気絶させるのに役立ち、操作が容易になります。解剖全体を通して、調製物が乾燥するのを防ぐために、調製物が常にPBSに浸されていることを確認してください。
- 幼虫の背側を上にして配置し、2つの気管路が解剖顕微鏡で見えるようにします(図1A)。鉗子を使用して微細なピンをつかみ、気門の後端で幼虫をピン留めします(図1B)。別のピンで、口のフック近くの前端にあるキューティクルに穴を開けます。幼虫をゆっくりと縦に伸ばし、固定します(図1B)。
- マイクロダイセクションハサミを使用して、ピンの近くの後端をつまんで小さな開口部を作ります。切開部は、キューティクルを通過するのに十分なほど表面的である必要があります。
- はさみの底刃の先端を切開部に配置し、2つの気管路の間の背側正中線の全長に沿って切り込みます(図1C)。切断するときは、腹側体壁の筋肉を損傷しないように、はさみの刃を少し上に向けてください。
- 後方に配置されたピンの少し前方に小さな水平切開を行います(図1C)。前方に配置されたピンの少し後方に別の同様の切開を行います(図1C)。切開部はキューティクルを通過する必要があります.
手記:ステップ1.1.7と1.1.8の3つの切開を合わせると、"
"のようになるはずです。つまり、幼虫の体の背側に左右のフラップが生成されるはずです。
- 鉗子で内臓を丁寧にきれいにします。PBSを数滴強力に追加すると、臓器が幼虫の体から移動し、臓器を簡単に取り除くことができます。幼虫の体を突くと、体壁の筋肉に損傷を与えるため、避けてください。
- 幼虫の体を広げて開き、角を固定します(図1D)。ピン留めするときは、体壁を水平と垂直の両方に伸ばして、均等に張力がかかった長方形を形成します(形状については図1Gを参照)、その過程で体壁の筋肉を引き裂かないように注意してください。
- 残っている内臓の除去を終了します(図1E)。
- 固定と透過化
- ピンで固定された体壁をBouin's Solutionの数滴に浸します。氷上で15分間インキュベートします。あるいは、代替の固定剤として4%パラホルムアルデヒド(PFA)を使用してください。30分間インキュベートします。
- リン酸緩衝生理食塩水とトリトン(PBT)で3回すすぎます。
- 細い鉗子を使用して、ピンを慎重に取り外し、体壁の角をシリコン処理した0.65mlの微量遠心チューブに移します。
- PLAの準備ができるまで、体壁を4°CのPBTで保管します。最適な結果を得るには、解剖後1日か2日以内に体壁の免疫染色を開始してください.
手記:試薬を節約し、アッセイ中にすべての体壁が等しく処理されるようにするために、異なる遺伝子型を1本のチューブに入れることができます。遺伝子型は、体壁の角を異なる方法で切断することで区別できます(たとえば、図1Fを参照)。
2. 免疫組織化学
注:3番目の幼虫の体壁の免疫染色は、前述のように行われましたが、いくつかの変更を加えました。
手記:すべてのステップは、特に明記されていない限り、室温で穏やかに攪拌して行ってください。
- ブロッキング
- 体壁をPBTで3回、それぞれ10分間洗浄します。
- 1% ウシ血清アルブミン (BSA) で 1 時間ブロックします。
- 免疫染色
- 目的の2つのタンパク質に対するマウスおよびウサギの一次抗体(1% BSAで希釈)と体壁を室温で2時間、または4°Cで一晩インキュベートします。この場合は、1:10マウスの抗Dlg(Dlg=円板大)と1:250のウサギの抗HtsM(HtsM:Hu-li tai shao mutant)を使用します。マウスまたはウサギで作られていないマーカーに対する抗体も含めることができます - 例えば、1:200ヤギ抗Hrp(Hrp=西洋ワサビペルオキシダーゼ)を使用してニューロン膜を描写します。
- PBTで3回、各10分間洗浄します。
- 蛍光色素標識二次抗体とインキュベートして、マーカー(1% BSAで希釈)を室温で2時間、または4°Cで一晩検出します。PLAシグナルは後で赤色蛍光色素で可視化されるため、マーカーを検出するために別の蛍光色素を使用する必要があります(例えば、1:200フルオレセインイソチオシアネート(FITC)標識抗ヤギ抗体を検出するには、1:200フルオレセインイソチオシアネート(FITC)標識抗ヤギ抗体を使用します。感光性試薬を使用しているため、この時点から先はチューブを暗くしてください.
手記:このキットを使用すると、マウスで産生した一次抗体とウサギで産生した一次抗体の間でPLAを行い、共焦点顕微鏡で赤チャンネルにシグナルを可視化することができます。必要に応じて、他の動物種で産生された一次抗体を用いてアッセイを行い、シグナルを他のチャネルで可視化することを可能にする他のキットもご用意しています。
3. 近接ライゲーションアッセイ
注:特に明記されていない限り、すべてのステップを室温で穏やかに攪拌して実行してください。
- PLAプローブ
- 体壁をPBTで3回、それぞれ10分間洗浄します。
- PLAプローブ(1% BSAでそれぞれ1:5希釈)と37°Cで2時間インキュベートします。この場合、40 μlのPLAプローブanti-mouse MINUS、40 μlのPLA probe anti-rabbit PLUS、120 μlの1% BSAを使用して、5〜10個の体壁に適切な浸漬と混合を確保します。PLAプローブを最大1:25に希釈しても、適切なS/N比が得られます(つまり、この実験の場合)。
- 結紮
- 体壁をウォッシュバッファーAで5分間ずつ2回洗浄します。
- ライゲーション溶液(ライゲーションバッファー中のリガーゼを1:40に希釈)と37°Cで1時間インキュベートします。この場合、5 μlのLigase、40 μlの5 Ligationバッファー、155 μlの高純度水を使用して、5-10の体壁を適切に浸漬し、混合します。
- 増幅
- 体壁をウォッシュバッファーAで2回、各2分間洗浄します。
- 増幅溶液(増幅バッファー中のポリメラーゼの1:80希釈)と37°Cで2時間インキュベートします。この場合、2.5 μlのポリメラーゼ、40 μlの5 Amplificationバッファー、157.5 μlの高純度水を使用して、5〜10の体壁を適切に浸漬および混合します。
- イメージングの準備
- 体壁をウォッシュバッファーBで2回、それぞれ10分間洗浄します。
- 0.01x Wash Buffer Bで1回、1分間洗浄してください。
- マウントする前に、数滴のマウント溶液で少なくとも30分間平衡化するか、4°Cで一晩保存してください。
- 細い鉗子を使用して、体壁をキューティクルを下に向けてプラットフォームスライドに慎重に移します。ボディウォールを一列に並べ、同じ向きで1滴または2滴のマウンタント内に配置します。気泡が発生しないように注意しながら、22 mm x 40 mmのカバースリップを製剤の上に置き、スライドを透明なマニキュアで密封します。
- スライドは、共焦点イメージングの準備が整うまで、-20°Cの暗所で保管します。