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方法論記事

近接ライゲーションアッセイを用いたショウジョウバエ幼虫のタンパク質間相互作用の検出

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2025年7月8日

この記事について

要約

出典:Wang, S., et al.近接ライゲーションアッセイを用いた、ショウジョウバエ幼虫の神経筋接合部におけるIn situタンパク質間複合体の検出。J. Vis. Exp. (2015).

このビデオでは、近接ライゲーションアッセイ(PLA)を使用して、ショウジョウバエ神経筋接合部(NMJ)でのタンパク質間相互作用の可視化を示しています。体壁を単離した後、相互作用するタンパク質を一次抗体とPLA標識二次抗体でプローブします。相互作用するタンパク質が近接しているため、コネクターオリゴヌクレオチドによるプローブのライゲーションが促進され、環状DNAが形成され、ローリングサークル増幅によって増幅されます。蛍光プローブは増幅されたDNAに結合し、NMJでのタンパク質間相互作用の可視化を可能にします。

プロトコル

1. 体壁の準備

注:第3幼虫の体壁の準備(体壁の筋肉を神経支配するNMJの研究用)は、前述のように行われましたが、いくつかの変更が加えられました。

  1. 解剖
    1. フライストックとクロスを25°Cで5〜6日間、標準的な手順で飼育します。
    2. 細い鉗子を使用して、バイアルまたはボトルから這う3番目の幼虫を選びます。
    3. リン酸塩緩衝生理食塩水(PBS)が入った小さなシャーレで幼虫を洗い、食物粒子を取り除きます。
    4. 1匹の幼虫をシルガードディスクに置き、氷のように冷たいPBSを数滴浸します。氷のように冷たいPBSを使用すると、幼虫を気絶させるのに役立ち、操作が容易になります。解剖全体を通して、調製物が乾燥するのを防ぐために、調製物が常にPBSに浸されていることを確認してください。
    5. 幼虫の背側を上にして配置し、2つの気管路が解剖顕微鏡で見えるようにします(図1A)。鉗子を使用して微細なピンをつかみ、気門の後端で幼虫をピン留めします(図1B)。別のピンで、口のフック近くの前端にあるキューティクルに穴を開けます。幼虫をゆっくりと縦に伸ばし、固定します(図1B)。
    6. マイクロダイセクシ....

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結果

figure-results-1
図1:3番目の幼虫の体壁の準備。(A-F) 体壁の解剖を表す概略図。 (A) 1匹の幼虫をシルガード円板に置き、その背側を上にして2つの気管路が見えるようにします。(B) 幼虫の前端と後端を細かいピンで留めます。 その過程で幼虫を縦に伸ばします。(C) 幼虫の体の背側に3つの切開をします。切開が完了すると、「I」のようになるはずです。 (D) 幼虫の体を広げて角を固定し、その過程で体壁を水平方向と垂直方向に伸ばして均等に張力のかかった長方形を形成します。(E) 残っている内臓をすべて掃除します。(F) 体壁の角を切って遺伝子型を区別するさまざまな方法の例を示しています。(G) <.......

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開示事項

利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
鉗子(細かい#5)アルメディックA10-704
シルガードディスク世界の精密機器SYLG184エラストマーベースと硬化剤を10:1の比率で混合します。30分に設定します。型に注ぎます(例:12ウェル細胞培養プレートを使用します)。少なくとも24時間硬化させてください。解剖するときは、60x15mmのシャーレ蓋に接着してください。
微細ピン(先端径0.0125mm)ファインサイエンスツール26002-10
マイクロダイセクションハサミ(超極細)ファインサイエンスツール15200から00
プラットフォームスライド22x22mmのカバースリップ2枚を透明なマニキュアで顕微鏡スライドに接着し、間に<20mmの隙間を空けてサンプルを取り付けます。
W1118ブルーミントンショウジョウバエストックセンター3605
HTS01103ブルーミントンショウジョウバエストックセンター10989ストックはGFPバランサー上で再バランスされ、GFPシグナルの不在に基づいてホモ接合変異体を選択できるようになりました。
1x PBS(リン酸緩衝生理食塩水):3mM NaH2PO4、7mM Na2HPO4、130mM NaCl、pH 7.0NaH2PO4 (Caledon Laboratories - 8180-1)、Na2HPO4 (Caledon - 8120-1)、NaCl (Caledon - 7560-1)
Bouinのソリューションシグマ・アルドリッチHT10132
4% PFA(パラホルムアルデヒド):1x PBS中の4% PFAPFA(アナケミアサイエンス - 66194-300)。解決策の作り方については、doi:10.1101/pdb.rec9959 Cold Spring Harb Protoc 2006を参照してください。
1x PBT(リン酸緩衝生理食塩水とトリトン):1x PBS、0.01%トリトントリトンX-100(シグマ・アルドリッチ-T8787)
1% BSA(ウシ血清アルブミン):1x PBT中の1% BSABSA(バイオショップカナダ - ALB001)。4°Cで保存してください。
マウスアンチDLG(ディスク大)Developmental Studies Hybridoma Bank (発達研究ハイブリドーマバンク4F31% BSAで1:10の希釈度で使用してください。
ウサギ抗HtsM(Hu-li tai shao)Lynn Cooley博士(イェール大学)によって提供されました。1% BSAで1:250の希釈度で使用してください。
ウサギ抗Pak(p21活性化キナーゼ)ニコラス・ハーデン博士(サイモンフレーザー大学)によって提供されました。1% BSAで1:500の希釈度で使用してください。
マウス対Wg(翼なし)Developmental Studies Hybridoma Bank (発達研究ハイブリドーマバンク4D41% BSAで1:5希釈して使用してください。
ヤギ抗HRP(西洋ワサビペルオキシダーゼ)ジャクソン免疫研究〒123-065-0211% BSAで1:200の希釈度で使用してください。
FITC標識ロバ抗ヤギジャクソン免疫研究〒705-095-0031% BSAで1:200の希釈度で使用してください。
Duolink In Situ PLA プローブ アンチマウス MINUSシグマ・アルドリッチDUO92004
Duolink In Situ PLA プローブ 抗ウサギ PLUSシグマ・アルドリッチDUO92002
Duolink In Situ 検出試薬 レッドシグマ・アルドリッチDUO92008
1 x Wash Buffer A: 0.01M Tris, 0.15M NaCl, 0.05% Tween 20, pH 7.4シグマ・アルドリッチDUO82049Tris(Caledon Laboratories - 8980-1)、NaCl(Caledon - 7560-1)、Tween 20(Fisher Scientific - BP337)
1 x Wash Buffer B: 0.2M Tris, 0.1M NaCl, pH 7.5 (1 x 洗浄バッファー B: 0.2M Tris, 0.1M NaCl, pH 7.5シグマ・アルドリッチDUO82049トリス(Caledon Laboratories - 8980-1)、NaCl(Caledon - 7560-1)
0.01x 洗浄バッファー B: 2mM Tris、1mM NaCl、pH 7.5シグマ・アルドリッチDUO82049トリス(Caledon Laboratories - 8980-1)、NaCl(Caledon - 7560-1)
Duolink In Situ 埋込剤 (DAPI付きシグマ・アルドリッチDUO82040
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