1. 内皮細胞の播種
1.成体のSprague DawleyラットからRBMECの初代培養物を入手(または商業的に入手)してください。
2.ラット脳内皮細胞増殖培地を用いて、100 cmフィブロネクチン(50 μg/ml)コーティングシャーレでRBMECを培養します。合流に達するまで 2 日ごとに媒体を交換します。
3.80〜90%のコンフルエントに達したら、5 mLのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で細胞を渦巻きながら穏やかに洗浄します。次に、細胞を1 mLの温かい0.25%トリプシン-エチレンジアミン四酢酸(EDTA)溶液にさらし、37°Cに平衡化して分離します。
4。細胞が剥離して分散するまで、細胞を37°Cで2〜5分間インキュベートします。 注: 培養皿をタップして細胞を剥離します。顕微鏡で細胞を観察し、皿の表面から細胞が完全に剥離していることを確認します。
5.トリプシンを中和するために、5 mlの完全培地をペトリ皿に加えます。分離した細胞を含む培地をピペットで取り出し、15 mLの遠心チューブに集めます。
6.内皮細胞を含む培地を220 x gで5分間遠心分離します。
7。上清を吸引し、細胞を含むペレットを保存します。ペレットをピペットで上下に穏やかに混合することにより、3〜5 mlの新鮮なラット脳内皮細胞増殖培地に懸濁します。その後、自動セルカウンターまたは血球計算盤を使用して細胞をカウントします。
{{}}8.細胞懸濁液を、ウェルあたり10,000〜15,000細胞の範囲の播種密度を持つ0.7平方cm/ウェルのプレコート済み8ウェル滅菌チャンバースライドシステム(50 μg / ml)に移します。コンフルエンスに達するまで37°Cで細胞を増殖させます 注: ウェスタンブロットやその他の実験を行うには、実験に応じて10 cmの細胞培養皿または特別な皿で細胞を増殖させることができます。
2.酸素とグルコースの欠乏-再酸素化 In Vitro モデル
1.低酸素細胞培養システムを使用して、RBMECに対するOGD-Rの影響を研究します(図1を参照)。製造元の指示に従って、実験を開始する前に低酸素細胞培養システムをセットアップし、キャリブレーションします。
2.コンフルエントチャンバースライド(ステップ1.8)を37°Cインキュベーターから取り外します。チャンバースライド内の培地全体を脱酸素化されたグルコースを含まないダルベッコ修正イーグルス培地(DMEM)と交換し、95%窒素と5%二酸化炭素を入れた低酸素チャンバーに37°Cで2時間置いて、OGD状態を表します。
3。細胞をインキュベーターに戻し、酸素95%、二酸化炭素5%、37°Cで新鮮なラット脳内皮細胞完全培地を提供し、37°Cでさらに1時間インキュベートします。
注:このステップは、再酸素化の状況を表しています。