方法論記事

筋萎縮性側索硬化症のIn Vitroモデルにおけるシナプスカルシウムダイナミクスの蛍光イメージング

2025年6月17日

この記事について

要約

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出典:Krishnamurthy, K. et al. 筋萎縮性側索硬化症のモデルにおけるシナプス機能のリアルタイム蛍光測定。J. Vis. Exp. (2021)

このビデオは、遺伝的にコードされたカルシウムバイオセンサーを発現するALS変異ニューロンのシナプス活動を監視するためのリアルタイムカルシウムイメージングを示しています。本稿では、イメージングのためのニューロンの準備、カルシウムダイナミクスの刺激、およびニューロンのシナプス活動を反映する細胞内カルシウムレベルのリアルタイムの変化を測定するための蛍光記録の手順を概説しています。

プロトコル

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1. Gcamp6mカルシウムトランジェント

  1. トランスフェクト一次げっ歯類皮質ニューロンの蛍光イメージングは、500 ngのGcamp6m.
    注:必要に応じて、赤色または遠赤色の範囲の蛍光タグを含む目的のプラスミドを持つニューロンを共トランスフェクションします。
  2. 低塩化カリウム(KCl)人工脳脊髄液(aCSF)(表1)とニューロンをトランスフェクション後15分間、トランスフェクション後48時間インキュベートし、その後、ディッシュをイメージングプラットホームにマウントします。
  3. フルオレセインイソチオシアネート(FITC)フィルター(488 nm)と20倍または40倍の対物レンズを使用して、GCaMP6m蛍光を可視化します。
  4. イメージングフィールドを選択し、パーフェクトフォーカスを合わせます。次に、明視野、FITC、および蛍光マーカーチャネルを使用して、ニューロンの境界をマークする単一の静止画像を撮影します。
  5. 集録ソフトウェアで「今すぐ実行」を開始します。ベースライン記録を5分間実行し、その後、50 mM KCL(表1)を含むaCSFで灌流します。
    注:このイメージングの目標は、誘発されたカルシウム過渡現象を測定することです。ニューロンが刺激前の期間中に基礎発火活動とカルシウムフラックスを持っている場合、そのニューロンはデータ解析に使用されません。代わりに、安定したバックグラウンド蛍光を持つ細胞のみが使用されます。カルシウム過渡現象の場合、刺激後の期間を60分まで延長することもできますが、追加の連続的な高KCl灌流の有無にかかわらず可能です。
  6. 実験を保存し、共焦点ソフトウェアを使用してデータを解析します。実験はこの時点で停止することができ、分析は後で行うことができます.
    注:細胞が目的のタンパク質の発現のためにトランスフェクションを必要としない場合、このプロトコルは、カルシウム過渡現象を調べるためにin vitroの任意の時点で行うことができます。カルシウム過渡現象の測定を確認するための対照細胞の試験に続いて、実験者は、バイアスを最小限に抑えるために、試験された各皿の遺伝的または薬理学的条件を知らされるべきです。

2.画像解析

  1. 共焦点ソフトウェアでタイムラプス画像を開きます。
  2. タイムラプスシリーズの画像をコマンドシリーズで整列させる:Image |プロセッシング |現在のドキュメントを整列します[最初のフレームに揃える] を選択します。
  3. 画像フレームの右側にある豆の形をしたアイコンであるROI選択ツールを使用して、神経突起に沿った関心領域(ROI)を選択します。また、背景の蛍光強度を表すROIをマークします.
    注:ROIは、明視野静止画像で示されるニューロンの軌跡に沿って明確に分離された点の領域を選択することによって選択されます。ニューロンごとに少なくとも 5 つの ROI が分析のために選択されます。バックグラウンドROIは、神経突起を含まない視野の領域で選択されます。
  4. 次のコマンドシリーズを使用して、選択したROIの生の蛍光を経時的に測定します。 時間測定
    1. Time Measurementパネルの上部でMeasure機能を開始してください。経時的な生の蛍光のグラフ表現と定量的データの両方が生成されます.
      注:各データポイントは、その特定の測定された時点に関連付けられたフレームのROIの生の蛍光を表します。
  5. 生の蛍光強度をスプレッドシートソフトウェアにエクスポートします。

表1:人工脳脊髄液(aCSF)バッファーの組成。

低KCL aCSFバッファー (pH 7.40 to 7.45)
試薬濃度
HEPES10 mM
NaCl140 mM
KCl5 mM
グルコース10 mM
CaCl2 2H2O2 mM
MgCl2 4H2O1 mM
高 KCL aCSF バッファー (pH 7.40 から 7.45)
試薬濃度
HEPES10 mM
NaCl95 mM
KCl50 mM
グルコース10 mM
CaCl2 2H2O2 mM
MgCl2 4H2O1 mM

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
20x air objectiveNikon
40x oil immersion objectiveNikon
B27 supplementThermo Scientific17504044Neuronal growth supplement
BD注射器(針なし)、50mLThermo Scientific13-689-8重力灌流アセンブリの一部
バイオセーフティ細胞培養フードBakerSterilGARD III SG403A無症候性細胞の培養、トランスフェクション、および色素ローディング
ベータメルカプトエタノールミリポアシグマM3148神経培養の培養および維持用
ウシ血清アルブミンミリポアシグマA9418神経細胞培養物調製用
塩化カルシウム二水和物ミリポアシグマ223506 aCSF溶液の成分
細胞培養二酸化炭素インキュベーターThermo Scientific13-998-123ニューロンの培養および維持用
共焦点顕微鏡ニコンエクリプス Ti +A1R コア蛍光イメージング用
CoolSNAP ES2 CCDカメラ画像取得用メトリクス
D-グルコースミリポア シグマG8270aCSF溶液の成分
FITCフィルターキューブニコン77032509イメージング用 Gcamp カルシウム過渡現象
ガラス底シャーレ (厚さ #1.5)CellVisD35-10-1.5-Nイメージング対応培養皿 HEPES
上のニューロンの成長用ミリポアシグマH3375aCSF溶液の成分
高KCl人工脳脊髄液(aCSF) イメージング用。
馬の血清ミリポアシグマH1138ニューロンの培養と維持用
ラミニンサーモサイエンティフィック23017015ニューロン培養物の調製用
リーボビッツのL-15 メディウムサーモサイエンティフィック11415064ニューロンの培養物の調製用
リーボビッツのL-15 ミディアム、フェノールレッドなしサーモサイエンティフィック21083027ニューロンの調製用培養物
L-グルタミン (200 mM)Thermo Scientific25030149ニューロン培養サプリメント
リポフェクタミン 2000 トランスフェクション試薬Thermo Scientific11668019ニューロントランスフェクション用
低KCl人工脳脊髄液(aCSF) イメージング用。
塩化マグネシウムミリポアシグマ208337aCSF溶液の成分
Microsoft Excelデータ解析/正規化用マイクロソフト
Nalgeneフィルターユニット、0.2μm PESThermo Scientific565-0020aCSF溶液用フィルターユニット
神経基礎培地Thermo Scientific21103049の培養とメンテナンスに神経細胞培養
NIS-Elements 先端研究ニコン 画像キャプチャおよび解析用ソフトウェア
Nunc 15 mL コニカルチューブThermo Scientific339650神経細胞培養液および緩衝液の調製用
Nunc 50 mL コニカルチューブThermo Scientific339652神経細胞培養液および緩衝液の調製用
OptiprepMillipore SigmaD1556神経細胞培養物の調製用
パパイン・ミリポア・シグマP4762神経細胞培養物の調製用
ペニシリン-ストレプトマイシン (10,000 U/mL)Thermo Scientific15140122神経細胞培養物の細菌汚染を防ぐため
灌流システムワーナー・インスツルメンツSF-77BaCSF
灌流チューブの交換用コールパーマーUX-30526-14灌流アセンブリの一部
pGP-CMV-Gcamp6mプラスミドAddgene40754用カルシウム過渡現象ポリ
D-リジン臭化水素酸塩ミリポアシグマP7886底シャーレ用コーティング剤
塩化カリウムポアシグマP3911aCSF溶液の成分
ミリポアシグマS5761aCSF溶液成分
塩化ナトリウムミリポアシグマS9888aCSF溶液成分
ステージトップインキュベーター東海ヒット イメージング期間中の生ニューロンのインキュベーション用
TRITC フィルターキューブニコン77032809イメージング用 FM4-64
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