動物モデルを含むすべての手順は、地元の施設動物管理委員会とJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
1. 術前の準備:
- ナノリットルのインジェクター用に設計された 3.5 ナノリットルのガラス キャピラリー ピペットを使用して、手術の数日前にウイルス注射用のプルガラス針を準備します。製造元の指示に従って、各ピペットを 2 段階のニードル プラーで引っ張り、2 針テンプレートを作成します。
- マイクロハサミで約1〜2 mmの余分なガラスを切り取って、針テンプレートの先端を洗練します。顕微鏡キャリブレーションスライドを使用して顕微鏡下でおおよその開口部サイズを測定し、30〜40μmの開口部の針を分離します。
- 針を30°に配置した状態で、マイクロピペット面取り機を使用して、30〜40μmの開口部と45°の面取り角度を持つチップを作成します。キャリブレーションスライドのバーニアスケールを使用して、開口幅を確認します。柔軟な針アタッチメント付きの注射器を使用してガラス針に水とエタノールを通し、破片を洗い流し、黒いマーカーで一定の間隔で針に印を付けます。
針- を70%エタノールで洗浄した蓋付きのペトリ皿に入れ、紫外線または紫外線の下でバイオセーフティフードで30分間滅菌します。
- 手順の直前に冷凍庫から適切な量を取り出すことにより、高効率逆行性輸送(HiRet)レンチウイルスを調製します。
注:適切な容量には、注入に必要な量(注射あたり1 μL×注射回数)と、ピペッティングとローディングの損失を考慮した少量の追加容量が含まれます。使用しないときは、ウイルスを氷の上に輸送して保管してください。 - インジェクターをマイクロポンプに差し込み、バーニアスケール付きのマイクロマニピュレーターに配置して準備します。
- ガラス針を準備するには、柔軟な針を備えた注射器で赤い油などの色付きの染料を慎重にロードします。針に気泡が残らないようにしてください。針を取り扱うときは無菌技術を使用し、先端に触れないようにしてください。
- ガラス針をインジェクターに挿入し、針がワッシャーに正しく装着され、インジェクターキャップがしっかりとねじ込まれ、スチール製インジェクター針がガラス針の長さの約3/4に伸びていることを確認します。ウイルスは後のステップで針にロードできます。
2. 麻酔と手術部位の準備
- デジタル体重計で動物の体重を量ります。術前の体重を記録して、必要な麻酔薬の量を決定し、手術後の体重を監視できるようにします。このプロトコルでは、約200〜250 gの雌スプレイグ・ドーリーラットを使用しました。
- イソフルラン吸入または注射されたケタミン/キシラジン溶液(k / x)のいずれかを使用してラットを麻酔します。ここでは、ケタミンを 67 mg/kg で腹腔内注射し、キシラジンを 6.7 mg/kg の用量で
注射します。- 足をしっかりとつまんで適切な麻酔面を確認します。反射的離脱が発生した場合は、続行する前にさらに数分待ってください。
注:また、ひげ、目、呼吸数を観察して、意識の兆候がないか確認してください。ひげがけいれんしたり、軽く触れたときに目がまばたきしたり、呼吸が速くて浅い場合は、麻酔面が深くなるまで待ってプロトコルを続行します。また、椎弓切除術および注射手術全体を通してこれらの兆候を監視してください。動物が浅い麻酔面を示す場合は、元のk / x投与量の1/2に等しいケタミンのみのブースターショットを投与します。 - 腰から肩甲骨の下角までの背側正中線に沿ってラットを剃ります。動物の皮膚をぴんと張って引っ張ると、より簡単かつ正確に剃ることができます。
- 両目に眼科用軟膏を塗ります。
- 剃った部分に消毒剤を塗布して、その部位を滅菌します。最初のスクラブでは、滅菌ガーゼを5%ヨウ素溶液に浸し、髪の毛や破片をすべて拭き取ります。これに続いて、70%エタノールに浸した滅菌ガーゼで一方向にスワイプし、領域に2回接触しないようにします。これと同じ手法をヨウ素とエタノールに浸したガーゼを交互に2回使用します。
3. 手術野と器具の準備
メ
- ス、ロンジャー、ラット歯鉗子、ばねはさみ、止血剤、中点湾曲鉗子、リトラクターまたは加重フックを含むオートクレーブ手術器具のセットを準備し、滅菌ラップを開封して無菌野を作成します。
- 滅菌手術用手袋のパッケージを開き、滅菌手袋ラップをテーブルの上に置きます。これを、滅菌ラップの汚染を防ぐために、使用済みツールの追加滅菌フィールドとして使用してください。
- #10メスの刃を無菌フィールドに落とします。止血剤でブレードをハンドルに固定します。滅菌生理食塩水、4.0クロムキャットガット縫合糸、および焼灼器、滅菌ガーゼ、滅菌綿先アプリケーター(筋肉出血用)、ゲルフォームまたはボネワックス(骨出血用)などの出血を制御する材料を手の届いた場所に配置します。
- 動物を回収し、滅菌布の上に置きます。膀胱の下にガーゼを置き、尿を集めます。腹部の下に丸めたタオルでターゲット領域を支えます。可能であれば、特に長時間の処置の場合は、滅菌布の下に外科用加熱パッドを置きます。
注:生存手術中は無菌性が重要です。手袋をはめた手の無菌性を維持するために70%エタノールのスプレーボトルを手元に置いておくと、器具の無菌性が損なわれる場合、または個々の手術の合間にビーズ滅菌器を使用してください。
4. 脊柱を露出させ、椎弓切除部位を特定する
- 最後の肋骨を指で軽く押して、腰椎または L1 椎骨の位置を特定し、皮膚切開を行う領域を特定します。これを目印として、L1のすぐ下の終わりの#10手術用メスで3〜4cmの皮膚切開を行い、筋肉を露出させます。メスの刃でやさしく広げてしっかりと押して、皮膚をぴんと張って、きれいに切開します。
- 必要に応じて、鉗子とハサミで表層脂肪を切って広げます。(対象椎骨によっては、筋肉の表面に大きな脂肪パッドがある場合とない場合があります。
- メスの刃の平らまたは指で棘突起を感じます。多くの場合、正中線領域は、両側に白い筋膜の「V」で輪郭が描かれます。ネズミの歯鉗子で上部の突起にしっかりとつかむスペースを確保するために吻側に小さな切り込みを入れ、次に、できるだけ突起に近づけて長くて深い切り込みを2回行います。切り傷の最も深いところでは、椎骨の背側表面がメスの刃で感じられます。
視- 認性を高めるために、リトラクターまたは加重フックで外側の筋肉を脇に保持します。メス、バネハサミ、またはロンガーで突起の周りの筋肉をきれいにして、頭の形を決定します。
注:脊髄組織は骨よりも発達の早い段階で成長を停止するため、脊髄は脊柱の全長を伸ばさないことに注意してください。これは、ターゲットの脊椎レベルが別の名前の椎骨の下にある可能性があることを意味します。 - 胸部またはT11および隣接するT12およびT13突起を見つけます。
注:正しい椎骨レベルを標的とするための支援は、ラット脊髄アトラスおよび非常に類似した椎骨構造を有するマウスのランドマークを概説する以前の研究に見られます6,33。T9などの吻側棘突起を邪魔せずに残して、正中線のランドマークを与えます。
5.椎弓切除術の実施
- 標的領域が正しく特定されたら、T11-T13の背側の椎弓切除術を行います。椎骨をそっと広げて椎間靭帯を露出させ、椎間靭帯は骨の最初の噛みつきのためにロンガーを挿入するのに良い部位です。ロンジュールを半閉じた位置に保持して、細かいコントロールを高めます。
- ロンジャーで小さな噛みつきをとることによって、棘突起と椎骨の背側を取り除きます。脊髄を傷つけたり、硬膜を乱したりしないように注意してください。ラットの歯鉗子で少し持ち上げると、脊髄が椎骨から引き離され、脊髄組織に当たる傾向が減ります。
- 正中線の血管を観察できるように、正中線から骨を取り除きます。脊髄組織がはっきりと見え、破片のない窓を残してください。
- 鉗子で脊髄にそっと触れます。一部の動物は、麻酔面が深くても反射的にジャンプすることがあります。注射中のジャンプを防ぐために、リドカインなどの麻酔剤を脊髄に直接数滴塗布します。
安定- 鉗子を棘突起、吻側および尾側に椎弓切除窓に固定することにより、動物を脊椎ホルダーに固定します。脊椎ホルダーを使用して動物の腹部を持ち上げ、呼吸運動の影響を打ち消します。これにより、針の安定性が向上し、適切な注入深さが確保されます。
6. ウイルスのロードとインジェクターの位置決め
パラ
- フィルムに約 5 μL をピペッティングし、先端がドロップの内側になるように針を配置して、ウイルスをインジェクターにロードします。
- マイクロポンプを使用して、20〜100 nL/sの速度で最大4 μLのウイルスを回収します。
針の- 先端が詰まらないように、針から少量のウイルスを注入および放出するようにコントローラーを設定します。実験室用ワイプで余分なウイルスを拭き取ります。
注:スチール針付きのハミルトンシリンジは、プルガラスピペットの代わりに使用できます。 - バーニアスケールが見えるようにマイクロマニピュレーターを配置し、脊髄の正中線に針を配置します。
注:正中線は、脊髄の前面を走る大きな血管によって位置づけられることがあります。ただし、これは個々のラットで異なる可能性があり、正中線のターゲティングは、無傷の棘突起と比較することによって確認する必要があります。 - マイクロマニピュレーターのバーニアスケールを使用して、針を横方向に0.8mm向けます。
- 硬膜に穴を開けるのではなく、へこまむまで針を脊髄まで下げます。素早くひねる動作を使用して、硬膜が1.5mmの深さまで沈むまで針で硬膜に穴を開
けます。
7. 脊髄へのウイルスの注入
- 針が所定の位置に配置されたら、400 nL/分の速度で注入するようにインジェクターをプログラムします。色素フロントの進行を観察して、ウイルスが脊髄に侵入していることを確認します。脊髄組織の明らかな漏れや膨らみがあってはなりません。漏れが観察された場合は、射出速度を200 nL/minに下げることでこれを軽減できる場合があります。
- 注射が終了したら、ウイルスの拡散を促進するために、針を脊髄内で2〜5分間(注射量に応じて)置いてください。
- ゆっくりと針を抜き、次の注射部位に移動します。L1-L4脊髄組織の長さに沿って約1 mm間隔で等間隔で配置された6つの部位のそれぞれに1 μLのウイルスを注入します。適切に機能し続ける限り、各注射に同じ針を使用できます。
8.創傷閉鎖と術後のケア
- 脊椎ホルダーから動物を取り外し、外側の筋肉を広げるために使用するレトラクターまたはフックを取り出します。閉じる前に、傷口にすべての破片がないことを確認してください。
- 4.0クロムキャットガット縫合糸を使用して筋肉を縫合します。内部の皮膚刺激の可能性を減らすために、結び目の近くで縫合糸を切断します。
- 9 mmの巻いたクリップを使用して、皮膚をステープルで留めます。最適な治癒を可能にするために、ホチキス止めする前に皮膚の端を並
べます。- 動物を水対流加温パッドの上に置き、目覚めるまで監視します。
- 5〜10 mLの滅菌生理食塩水を皮下注射して水分を補給し、感染を防ぐためにセファゾリンなどの抗生物質を補充します。動物が歩行可能になったら、ホームケージに戻し、最初の鎮痛剤を与えます。ラットに痛みや苦痛の兆候がないか監視し、施設の動物管理および使用委員会(IACUC)が承認した痛みを軽減するための手順に従って治療します。