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方法論記事

TGF -β誘発性浸潤を測定する回転楕円体アッセイ

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10.3791/3337

2011年11月16日

この記事について

サマリー

定量的形質転換成長因子(TGF)-β誘導性3次元コラーゲンゲル内侵入を測定するアッセイが記載されている。このアッセイでは、乳がんの開発のさまざまな段階を表現する細胞株のMCF10Aシリーズ、を活用しています。このメソッドは、他の細胞株で使用できるように採用することが可能と侵略の他の潜在的な活性化剤または阻害剤を調査するために使用される可能性があります。

要約

TGF -βは、初期段階の腫瘍抑制因子として作用するが、後の段階の1,2で浸潤や転移を刺激することによって、乳がんの進行の役割を反対している。また、TGF -βは、頻繁に乳癌において過剰発現し、その発現は予後不良と転移3,4と相関している。 TGF -β誘導の侵入はよく理解されていないメカニズム。

TGF -βはTGF -βII型(TβRII)とI型(TβRI)受容体を介してその細胞応答を誘発する。 TGF -βによって誘導されるヘテロ複合体形成時には、TβRIIはTβRIをリン酸化する。活性化TβRIはすなわちSmad2およびSmad3、受容性Smad(R - Smadの)をリン酸化することによって、その細胞内の標準的なシグナル伝達経路を開始します。これらの活性化R - Smadは核に蓄積し、標的遺伝子5の転写を調節であるSmad4とヘテロ複合体を形成。以前にDに加えていくつかの他の非のSmadシグナル伝達経路の活性化の傍接したのSmad経路、受容体の活性化の結果は、例えば、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ(MAPK)は6パスウェイ。

乳癌の異なる段階におけるTGF -βの役割を研究するために、我々は、MCF10A細胞システムを利用していました。このシステムは、自発的に不死化MCF10A1(M1)乳房上皮細胞7から構成され、H - RASは、マウス8で前癌病変を生成するM1 -派生MCF10AneoT(M2)、、およびから設立されたM2 -派生MCF10CA1a(M4)を、変換M2異種移植片およびフォーム肺9に転移する能力を持つハイグレードの癌腫。このMCF10Aシリーズは、異なる遺伝的背景によってバイアスされていない悪性の異なるグレードの細胞の応答を研究する可能性を提供しています。

TGF -β誘発性浸潤の分析のために、我々はホモタイプMCF10Aスフェロイド培養細胞のembeを生成試験管内 (図1) における 3次元コラーゲンマトリックスにdded。このようなモデルは、密接に回転楕円体10の内部に外側と静止あるいは壊死細胞上でアクティブと浸潤細胞で、その結果、酸素や栄養素の勾配を確立することによりin vivoでヒトの腫瘍に似ています。回転楕円体ベースのアッセイはまた、単層培養11時薬剤耐性を向上を再現することが示されている。このMCF10 3Dモデルのシステムでは、私たちは悪性腫瘍のさまざまな段階で乳がん細胞の浸潤特性に関するTGF -βシグナル伝達の影響を調査することができました。

プロトコル

1。メトセル溶液(500ml)の準備

  1. マグネチックスターラーを含む500mlのボトルにメチルセルロースのオートクレーブ6グラム。
  2. 20分間血清(60℃)なしで予熱DMEM/F12 250ml中にメチルセルロースを溶解する。
  3. 10%ウマ血清を含むDMEM/F12 250mlの(RT)を追加します。混ぜて一晩(4℃)。
  4. 遠心分離(5000グラム、2時間、4℃)でソリューションをクリアします。
  5. 新しいチューブ(ストック溶液の90〜95%程度)に透明な高粘度液を取る。
  6. 4℃、使用するまでC。

2。スフェロイド培養

  1. 20パーセントメトセル溶液(10mlメトセル、40 mlの増殖培地)を調製する。
  2. PBSで細胞を2回洗浄、37℃で0.1%トリプシンとインキュベートセルを追加° C
  3. 増殖培地中で細胞を再懸濁し、細胞を数えます。
  4. 20%メトセルにmlあたり10 000細胞の懸濁液を準備します。
  5. 96ウェル丸底のために細胞懸濁液を追加します。uspensionプレート(ウェルあたり100μl)。
  6. 翌日、サスペンションプレートの回転楕円体の形成を確認してください。スフェロイドは1-3日後に使用できるようになります。

3。コラーゲンの調製

  1. 氷上に8mlのコラーゲン、1mlの10倍PBS、1 mlの0.1 N NaOHおよび3滴0.1NのHClの溶液を調製します。 pHがpH指示薬ストリップ上の解の一部をスポッティングを7.4かどうかを確認します。範囲外の場合pHを調整する。
  2. 96ウェルプレートのウェル内で中和コラーゲン溶液50μlを加え
  3. コラーゲンが固化されるまで37℃でインキュベート(90分)。
  4. 氷の上メトセル - コラーゲン-リガンド溶液を調製:コラーゲン溶液のそれぞれのリガンドピペット1部のために。コラーゲンTGF -βの20ngのあたりのmlを加える。異なるレイヤー上のメトセルと拡散で希釈した後、TGF -βの最終濃度は、ボルテ​​ックスで5 ng / mlのミックスになります。 METHOCEL -ソリューションの1部を追加。ボルテックスにより混和する。

4。回転楕円体を埋め込む鼎

  1. 200μlのピペットに、カットオフ先端から約5 mmを持っている200μlの先端を置きます。ピペットを使用すると、ワンスフェロイドを吸うと慎重に空のプレートに培地を分注する。回転楕円体の先端の内側にとどまる場合観る。回転楕円体は、白いドットとして表示されます。プランジ​​ャーを解放せずに、100μlのコラーゲンメトセルの混合物を吸い取ると、コラーゲンコート96ウェルにコラーゲンの混合物中の回転楕円体を分注する。各条件に12回転楕円体に対してこれを行います。
  2. コラーゲンは37℃で少なくとも30分を凝固させて° C
  3. 200μlの先端で空気の泡を取り除く。
  4. DMSOに溶解した1.6%の血清と阻害剤と培地50μlを追加。 SB - 431542のためにストック溶液の4μlの(10mM)を培地1mlに追加します。拡散した後、阻害剤の最終濃度は10μMとなる。 TGF -βおよび阻害剤は​​、実験の過程であり続けるでしょう。 40X倍率を用いて顕微鏡下でスフェロイドの写真を撮ります。
  5. 4の後にTGF -βおよび/または阻害剤による刺激の8時間は、40倍の倍率を用いて顕微鏡下でスフェロイドの写真を撮る。
  6. 2日後に侵入する回転楕円体の面積を測定し、スタートエリアを引きます。の面積を測定する回転楕円体:Adobe Photoshopの拡張(図2A)の回転楕円体からの映像やクイック選択ツール(図2B)を選択し[開く。 "プラス"(+)記号(図2C)の円にマウスポインタの形が変化。回転楕円体の上にカーソルをドラッグしながら、Photoshopは回転楕円体の境界を認識します。 ( - )ツールバーの[記号回転楕円体の外側の領域が選択されている場合は、この地域は、Altキーを押すかによって示される負の選択ツールを使用して、選択から除外することができます。 ( - )"マイナス"の円にカーソルが変化記号と誤って選択した領域の上にカーソルをドラッグすることによっては、このエリアは、選択(図2D)から削除されます。必要に応じて、複数の領域はSHを押すことで選択できます。IFTのボタン。より正確に動作するように、マウスポインタのサイズは、ツールバーにあるブラシの直径(図2E)を変えることによって調整することができます。全体の回転楕円体が選択されている場合、選択の面積は、メニューバーの分析- MEASUREを介して、またはCtrl + Shiftキー+ M(図2F)を押すことによって計算されます。測定の記録ウィンドウには、ファイル名とピクセル単位で選択の領域だけでなく、他のデータ(図2G)を示すが表示されます。複数の選択が測定されている場合、最初の行はすべての領域の合計を示しています。個々の選択の測定は、下記の行で表示されます。すべての測定のデータはテキストフ​​ァイルにエクスポートし、Excelで開くことができます。

5。代表的な結果:

MCF10A1(M1)、正常な乳房上皮細胞とスフェロイドアッセイの例、H - RASはMCF10AneoT(M2)細胞を形質転換し、M2由来MCF10CA1a(M4)は、図3に示します。 M1細胞はなくだけ弱い侵攻を示した刺激が、TGF -βによる刺激により有意に優れて侵入した。対照的に、M2は、刺激の添加なしに効率的にすでに侵入したM1 -派生RAS -変換、およびこれをさらにTGF -β治療時に4〜5倍に増加した。 M4の細胞が両方でとTGF -βを添加していない、最強の侵略を示した。

次に、私たちは化学物質の阻害剤を使用して、この回転楕円体モデルではTGF -βによって誘導される侵攻を妨害する可能性があるかどうかを検討した。この目的のために我々は、SB - 431542、ATPのアナログとTβRIのキナーゼ活性の選択的阻害剤だけでなく、アクチビン型IB受容体(ActRIB)とアクチビン受容体様キナーゼ(ALK)7〜12を使用していました 。予想通り、SB - 431542は強力M1のTGF -β誘発性浸潤、そのTGF -β誘発性浸潤を示すM2とM4の細胞(図4)、TβRI-キナーゼ依存を抑制した。さらに、スフェロイドの基底侵攻も強く基礎侵攻もDEがいることを示唆し、阻害されたTGF -βで独立。

図1
3D回転楕円体アッセイの図1。フローチャート。最初に、細胞はU字型サスペンションプレートの非接着性の条件下で播種されています。細胞はmultcellularスフェロイドにaggregrateとコラーゲンマトリックスに埋め込むことができます。このコラーゲンマトリックス中に、彼らは侵入することができます。

図2
図2:Adobe Photoshopを使用してスフェロイドの面積の定量化が拡張。 (A)回転楕円体の画像が使用wongly含まれる領域の回転楕円体(D)除去の領域を選択する回転楕円体の上にカーソルをドラッグしてクイック選択ツールのAdobe PhotoshopのExtendend(B)の選択(C)で開かれますのより正確に領域を選択するには、クイック選択ツールのブラシの大きさの負のクイック選択ツール(E)調整(F)の選択測定は、コマンド(G)測定記録の例を記録する。

図3
図3。自発的に不死化MCF10A1(M1)(A)のスフェロイドのTGF -β誘発性浸潤、MCF10AneoT(M2(B)とその転移性微分MCF10CA1a(M4)(C)。M1、M2およびM4スフェロイドが埋め込 ​​まRAS -変換示されるようにコラーゲンに48時間のためにTGF -βの5ng/mlで処理した。AC代表画像は埋め込 ​​みの一日で撮影し、二日後。D相対侵入が2日目マイナス0日目に面積の差として定量した。結果が表現されているとして平均値± SDは、13から脚色。

図4a
図4b
図4基礎とTGF -βによって誘導される回転楕円体の侵入は、Bを阻害されるY SB - 431542。 M1、M2とM4球状体がコラーゲンに埋め込まれ、示されるように5ng/ml TGF -βおよび/または10μMSB - 431542で処理した。 2日間()後に採取した代表的な写真。相対的な侵略は、2日目マイナス0日目(B)上の領域の差として定量化した。結果は平均± SDは、13から脚色として表現されています。

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ディスカッション

我々はMCF10A1細胞とその悪性誘導体はTGF -β依存的にコラーゲンマトリックス内に侵入した回転楕円体モデルを確立した。最初に、スフェロイドは、メチルセルロースの存在下で96ウェル丸底サスペンションプレートに形成されています。もちろん、またU字型のポリ- HEMAコートしたプレートは、この目的のために使用することができます。細胞はメチルセルロースのない状態で死んでしまうので、メチルセルロースは、絶対に、このステップが必要です。我々は細胞がこの因子はコラーゲンの培地オペアンプの上部に追加されたときにTGF -βにあまりよく応答することがわかったので、TGF -βはコラーゲン-メトセル混合物に直接追加されます。 DMSOはicecoldコラーゲンメトセルの混合物に沈殿物しかし、それは、コラーゲンに直接ではなくDMSOに溶解した化学物質の阻害剤を添加することをお勧めします。したがって、我々は、コラーゲンの上に培地中でこれらの化合物を加える。

その後、細胞はコラーゲン3 dimensに埋め込まれているそれらはコラーゲンマトリックスに侵入できるようにional環境。異なるMCF10A1細...

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謝辞

我々は、細胞株のための試薬とフレッドMillerのケン岩田(OSIファーマシューティカルズ、ニューヨーク、アメリカ)(バーバラアンカルマノスがんIntitute、デトロイト、米国)に感謝しています。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
試薬の名前 会社 カタログ番号 コメント(省略可能)
メチルセルロースシグマアルドリッチ M0512
PureCol 高度なニッピ 5005 - B
pH指示薬のストリップメルク 9533
96ウェルサスペンション
プレート
グライナーバイオワン 650 185
TC接着96ウェル
プレート
グライナーバイオワン 655 180

参考文献

  1. Akhurst, R. J., Derynck, R. TGF-β signaling in cancer--a double-edged sword. Trends. Cell. Biol. 11, S44-S51 (2001).
  2. Massagué, J. TGF-β in Cancer. Cell. 134, 215-215 (2008).
  3. Ghellal, A. Prognostic significance of TGF-β1 and TGF-β in human breast carcinoma. Anticancer. Res. 20, 4413-4413 (2000).
  4. Sheen-Chen, S. M. Serum levels of transforming growth factor-β1 in patients with breast cancer. Arch. Surg. 136, 937-937 (2001).
  5. ten Dijke, P., Hill, C. S. New insights into TGF-β-Smad signaling. Trends Biochem. Sci. 29, 265-265 (2004).
  6. Moustakas, A., Heldin, C. H. Non-Smad TGF-β signals. J. Cell Sci. 118, 3573-3573 (2005).
  7. Soule, H. D. Isolation and characterization of a spontaneously immortalized human breast epithelial cell line, MCF-10. Cancer Res. 50, 6075-6075 (1990).
  8. Strickland, L. B. Progression of premalignant MCF10AT generates heterogeneous malignant variants with characteristic histologic types and immunohistochemical markers. Breast Cancer Res. Treat. 64, 235-235 (2000).
  9. Santner, S. J. Malignant MCF10CA1 cell lines derived from premalignant human breast epithelial MCF10AT cells. Breast Cancer Res. Treat. 65, 101-101 (2001).
  10. Smalley, K. S., Lioni, M., Herlyn, M. Life isn't flat: taking cancer biology to the next dimension. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 42, 242-242 (2006).
  11. Kobayashi, H. Acquired multicellular-mediated resistance to alkylating agents in cancer. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 90, 3294-3294 (1993).
  12. Inman, G. J. SB-431542 is a potent and specific inhibitor of transforming growth factor-b superfamily type I activin receptor-like kinase (ALK) receptors ALK4, ALK5, and ALK7. Mol. Pharmacol. 62, 65-65 (2002).
  13. Wiercinska, E. The TGF-β/Smad pathway induces breast cancer cell invasion through the up-regulation of matrix metalloproteinase 2 and 9 in a spheroid invasion model system. Breast Cancer Res. Treat. 128, 657-657 (2011).
  14. Tang, B. TGF-β switches from tumor suppressor to prometastatic factor in a model of breast cancer progression. J. Clin. Invest. 112, 1116-1116 (2003).
  15. Provenzano, P. P. Collagen density promotes mammary tumor initiation and progression. BMC. Med. 6, 11-11 (2008).
  16. Ramaswamy, S. A molecular signature of metastasis in primary solid tumors. Nat. Genet. 33, 49-49 (2003).
  17. Debnath, J., Brugge, J. S. Modelling glandular epithelial cancers in three-dimensional cultures. Nat. Rev. Cancer. 5, 675-675 (2005).
  18. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 8, 839-839 (2007).
  19. Lee, G. Y. Three-dimensional culture models of normal and malignant breast epithelial cells. Nat. Methods. 4, 359-359 (2007).
  20. Petersen, O. W. Interaction with basement membrane serves to rapidly distinguish growth and differentiation pattern of normal and malignant human breast epithelial cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 89, 9064-9064 (1992).
  21. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S. Morphogenesis and oncogenesis of MCF10A mammary epithelial acini grown in three-dimensional basement membrane cultures. 30, 256-256 (2011).
  22. Li, Q. p21-Activated kinase 1 coordinates aberrant cell survival and pericellular proteolysis in a three-dimensional culture model for premalignant progression of human breast cancer. 10, 314-314 (2011).
  23. Li, Q., Chow, A. B., Mattingly, R. R. Three-dimensional overlay culture models of human breast cancer reveal a critical sensitivity to mitogen-activated protein kinase kinase inhibitors. J. Pharmacol. Exp. Ther. 332, 821-821 (2010).

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