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1。クローニングおよびコンストラクトのデザイン
HindIIIとBamHI制限部位を用いて、PMM-ペプチドベクター(リクエストに応じて提供することができます)( 図1参照)に興味のある配列をクローン。 ;のCNBr切断のための単一のメチオニンコドン、E. HindIII部位:二本鎖DNAの挿入は、次の順序で、取り入れるべきコード配列を大腸菌コドン最適化ペプチド;終止コドン、BamHI部位。ペプチド内の他のすべてのメチオニンは排除されるべきであり、それはまた、酸性条件下で切断されるように、ジペプチドシーケンスASP-PROは避けるべきである。
ユニークなシステイン残基は最終的な複合体のジスルフィド架橋の所望の位置に応じて、各ペプチド配列中に導入されるべきであり、他のすべてのシステインがセリンに変異されるべきである。プラスミドは、選択のためのカナマイシン耐性カセットを運ぶ。
2。 trpLE-peptiの発現デフュージョン
- メイクアップし、無菌フィルターM9/Kan最小成長培地(0.1 mMのCaCl 2、2mMのMgSO 4を 、3グラム/ L KH 2 PO 4、7.5グラム/ LのNa 2 HPO 4·2H 2 O、0.5グラム/ LのNaCl、 1g / LのNH 4 Clを 、4g / Lのグルコース、50mg / Lの硫酸カナマイシン)。セントラムとサプリメントはビタミンB群や微量金属を提供するために亜鉛を完了して下さい:30分間混合しながら40ミリリットルのH 2 Oに1錠を溶かし、不溶性物質及び無菌フィルターオレンジ上清を除去するために遠心分離する。 2週間までとM9で4ミリリットル/ Lを使用して、暗所で4℃で保存原液。
注:必要に応じて15 N濃縮NH 4 Clを 、13 C濃縮グルコースまたは他の安定同位体で標識された前駆体は、この段階では、M9培地に含まれるかもしれません。 - 新たに形質転換されたBL21(DE3)株Eから100ミリリットルスターター培養液を接種M9/Kan培地中で大腸菌 。 200rpmで振とうしながら37℃で一晩増殖。
- 翌朝、スターター培養物のOD 600を確認-これは2以上の範囲でなければならない。セントラム-M9培地1Lの総量に100ミリリットルスターター培養液を希釈します。 2 2Lのバッフル付きフラスコ(各フラスコ内の500mlの培養)に分割して、37で成長℃のOD 600が 0.6に達するまで、140 rpmで振とう。
- ℃と文化が誘導前に完全に冷却させ、1時間振とうし続けて18にシェーカーの温度を設定します。
- (OD 600 = 1で培養液から50μlの同等品)、SDS-PAGE分析のための事前誘導サンプルを採取し、trpLE-ペプチド融合の発現を誘導し0.1mMの最終濃度になるようにIPTGを加え。 18°IPTG誘導下で一晩C/140回転(16-20時間)で成長し続けています。
3。封入体の調製およびニッケルマトリックスバインディング
- 最少培地で一晩発現培養の最終OD 600は、変数と笙です自民は2.5と5.0の間である。 SDS-PAGE分析のためのサンプルを取る(OD 600 = 1で培養液から50μlの同等品)と5000×gで20分間遠心して細胞を回収します。
- 再懸濁した細胞ペレットを50mlの溶解緩衝液(50mMトリス-HCl pH 7.5、20mMのβ-ME、0.2MのNaCl)で1リットルの培養液から。細胞懸濁液は、後の処理のために凍結保存することができます。
- 5分間氷上で1分間、残りの最大出力時の氷上で超音波処理により細胞を溶解する。我々は、½インチ高輝度交換可能なチップとMisonixソニケーター3000(最大出力600ワット)を使用します。 3サイクルの超音波処理/冷却を繰り返します。
- 20,000 xgで15分間遠心分離して不溶性の封入体(IB)の材料を収集し、上清を捨てる。明るい色の細胞破片の緩い、薄層は緻密IBペレットの上に表示されることがありますが、これは、穏やかに攪拌しながら水または緩衝液を用いて洗い流すことができる。ステップ3.3および3.4は、IB画分の純度を向上させるために繰り返すことができる場合デジ赤。ペレットと上清材料の試料を封入体にtrpLE-TM融合局在を確認するために、SDS-PAGE分析のために取られるべきである。
- 処理された培養液1リットル当たり25〜50ミリリットルを用いて、グアニジン溶液(6M塩酸グアニジン、50mMのトリス-HCl pH 8.0、200mMのNaCl、1%トリトンX-100、5mMのβ-ME)のIBペレットを溶解する。このステップでは、撹拌、時折穏やかな超音波処理して数時間を必要とするでしょう。
- 75,000-100,000 xgで1時間遠心分離によりIBのライセートをクリアして、20℃ 0.2μmの膜を介して上清とフィルタをデカントします。
- 50 mlコニカルチューブでクリアIBライセート、または水とグアニジン溶液に平衡で洗浄されたニッケルアフィニティー樹脂で、しっかりと閉じることができる大きな容器を兼ね備えています。 trpLE-DAP12TMます( 図3、レーン2)ここに示されているように同程度に表現を融合に処理された培養液1リットル当たり3〜4ミリリットル沈殿した樹脂を使用しています。部屋トンで一晩インキュベートすることにより、バッチ·バインド穏やかに混合しながらemperature。
4。オンカラム酸化架橋
- ボリューム全体が流れるまで連続的に追加して、多孔質の床支持を持つ空の重力流列にIBの溶解物/ニッケル樹脂懸濁液をロードします。収集し、まだ結合していない融合タンパク質が含まれている場合があり素通りし、脇に置く。
- 5mMのβ-MEを含む尿素溶液の5ベッド容量(8M尿素、50mMのトリス-HCl pH 8.0、200mMのNaCl)で重力流によってニッケル樹脂を洗浄します。
- β-MEをせずに尿素溶液の5ベッドボリュームで再びニッケル樹脂を洗浄します。
- ニッケル樹脂の酸化グルタチオン、20μMのCuSO 4および2mMを補充された尿素溶液の5ベッドボリュームで三回目を洗ってください。この洗浄後、カラム出口を閉じて最大のジスルフィド結合の形成を可能にするために、室温で30分間インキュベートする。
5。 TFAの溶出および定量
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注意:トリフルオロ酢酸(TFA)が皮膚と接触すると、重度の火傷を引き起こし、煙は非常に刺激性がある濃縮TFAが眼の保護と非ラテックス手袋を使用して、承認され化学ドラフト内でのみ使用されるべきであるすべての化学的適合性をチェックします。材料の使用、ポリプロピレンは、このプロトコルのすべてのステップに対応しています。
- 水10ベッドボリュームで酸化尿素溶液を洗い、カラム出口に真空ラインを適用することにより、カラム床を乾燥させてください。
- カラム出口を閉じて、きちんとした(99から100パーセント)TFAの1.5ベッドボリュームを追加します。酸にさえ露出を確保し、5分間インキュベートするための小さなスパチュラでニッケル樹脂をかき混ぜる。カラム出口を開き、すべての液体を押し出すために必要に応じて注射器や圧縮空気ラインで軽く圧し、酸溶出液を集める。
- きちんとしたTFAのさらに1.5ベッドボリュームと酸溶出ステップを繰り返します。 beadeの完全な溶解を回避するために、この段階で迅速に作業Dアガロースマトリックス。タンパク質収量はランバート - ベールの法則とtrpLEペプチド配列の理論モル吸光係数によれば、この時点で決定することができます。トリフルオロエタノール中のTFA溶出液(1:20〜1:50)(TFE)のサンプルを希釈し、ブランクと同じ希釈でのTFA / TFEを用いて、280nmの吸光度を測定します。
6。のCNBr消化
注意:臭化シアン(CNBr活性)は非常に有毒であり、承認された薬品はドラフト内でのみ扱われるべきである。安全メガネ、白衣、非ラテックス手袋などのPPEは絶対に必要です。 CNBrでは水分に反応性であり、開口部の前に室温に戻しておいてください。中和/ CNBrで汚染されたソリューションや物質の廃棄方法については、お使いの制度上の安全のオフィスへお問い合わせください。
- 穏やかに混合しながら水を滴下して80%のTFAの最終濃度になるように酸溶出液を希釈します。沈殿物が形成した場合は、ddは戻ってきちんとしたTFAの小さな体積(0.5〜1ml)の溶液を水で80%に再正しいその後、明確になるまで。液体窒素で凍結し、直ちに試料を凍結乾燥、SDS-PAGE分析のための5μlのプレダイジェストサンプルを取る。
- クローズド、予め秤量管で安全に有毒化学物質の重量を量るために世話をして、または化学ヒュームフード内バランスを使用して、約0.2グラム/ mlまでのCNBr結晶を追加します。完全に溶解するまで静かに混和します。洗ったあと、不活性ガス(窒素やアルゴン気流)の下で、反応容器を密封し、光から保護し、室温で3〜4時間インキュベートする。
- SDS-PAGE解析のために5μlのポストダイジェストサンプルを取るとフリーズし、直ちに凍結乾燥。予想されるペプチド複合体の大きさに応じて、3.5 10kDa以下の分子量カットオフを有する再生セルロース透析カセットやチューブ(セルロースアセテート濃酸に溶解する)にダイジェスト反応を転送します。で水4Lに一晩透析TFA濃度を減少させ、未反応のCNBr活性を分解する化学ヒュームフード。一晩透析中にボリュームが大幅に増加(同じくらい2〜3倍など)の透析カセットやチューブ内の空きスペースを残しておきます。
- 透析カセットやチューブから中断した沈殿物(TFA濃度が減少したときにタンパク質のほとんどが沈殿する)で透析した反応溶液を除去し、50 mlコニカルチューブに懸濁液を移す。凍結と水CNBR / TFAの痕跡を除去する凍結乾燥。このステップは数日を要する可能性があります。
注意:この透析ダイジェスト反応、透析水の両方が有毒で、適切な予防措置で配置/処理済みとして扱われることを継続する必要があります。 - プリ誘導や収穫の段階、封入体上清とペレット、TFA溶出液とCNBr活性消化された物質からの文化の試料をSDS-PAGEによって分析することができる。 95加熱することにより試料を調製インビトロジェンNuPAGE LDS sampl℃·電子バッファー。 TFA溶出液とダイジェストのサンプルが酸化架橋の製品識別と評価を容易にするために還元および非還元の両方の条件で準備する必要があります。
- 最小ダイジェスト製品の最適な解像度のMES-SDS泳動緩衝液を用いて12パーセントNuPAGEビス - トリスプレキャストアクリルアミドゲル上でサンプルを分離します。
7。ジスルフィド架橋ペプチド複合体の逆相HPLC精製
- 溶媒(典型的には10〜20%のアセトニトリルまたは5に分取スケール(21.2×150 mm)をAgilentのZORBAX SB-300、C3 PrepHT分カラムに2〜3ミリリットル端正なギ酸及び負荷に凍結乾燥されたダイジェストの製品の100 mgまで溶かす0.1%TFAを含む水でイソプロパノール-10%)。
- 少なくとも5カラム容量以上の溶媒Bの勾配(0.1%TFAを含むアセトニトリル又はイソプロパノール)でダイジェスト製品を溶出します。異なるペプチド配列に対する最適勾配条件の選択についての提案のための議論を参照してください。
- 取るSDS-PAGE分析及び凍結用の各HPLC画分を50から100μlのサンプルと直ちに凍結乾燥。 HPLCの溶媒の除去は急速であり、1〜2時間で完了しなければなりません。
- ノー還元剤とインビトロジェンNuPAGE LDSサンプルバッファーで95℃に加熱することにより、SDS-PAGEのために凍結乾燥のHPLCサンプルを準備します。それらのいずれかに100mMのDTTを追加し、再加熱簡潔に、クールと2マイクロ遠心チューブに均等に各サンプルを分割します。
- MES-SDSは、上記のようにバッファを実行していると12パーセントNuPAGEビス - トリスプレキャストアクリルアミドゲル上で還元および非還元HPLCのサンプルを分離します。小さな疎水性ペプチドはしばしばうまく染まるクマシーを取らないとその期待される分子量で実行されない場合があります。しかし、還元および非還元試料の比較は、架橋ペプチド製品および純度の査定の識別を容易にする必要があります。
- マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間型(MALDI-TOで候補ペプチドを含有する画分を分析F)の質量分析(説明を参照)興味の種を同定し、その予想される質量を確認する。
- 組み合わせ、純粋な、架橋TMペプチド複合体を含むHPLC画分を凍結し、凍結乾燥し、収量を決定するために、最終製品の乾燥重量を取る。高いイソプロパノール含量を有する画分は、冷凍のままではないかもしれません。ペプチド画分は、純粋なヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)少量の完全に再溶解するフィルムは、フィルムではなく、ふわふわした凍結乾燥品まで凍結乾燥して、再度凍結乾燥した場合。 HFIP処理物は簡単にひっくり返して秤量する小さな白い円錐形にする必要があります。