新生児マウスにおける静脈注射

サマリー

小児疾患の動物モデルは、早期発症と積極的な疾患の進行を体験することができます。臨床的に若いマウスモデルに関連する治療送達は技術的に困難であることができる。このプロトコルは、人生の最初の2日以内に出生後の新生児マウスのための非侵襲的静脈内注入法を説明しています。

要約

静脈内注射は、治療薬を提供するために臨床応用可能な方法である。大人の齧歯類および大型動物の場合は、静脈内注射は技術的に可能と日常的なものである。しかし、いくつかのマウスモデルは、潜在的な治療薬の投与が困難に急速進行性疾患の早期発症を持つことができる。時間的（または顔面）静脈がちょうどマウスにおいて、耳の芽の前方および解剖顕微鏡を用いて、頭部の両側に、出生後、明らかに最初の2日間は表示されている。このウィンドウ中に、一時的な静脈を50μlまでの容量で注射することができる。注射は安全で忍容子犬やダムの両方によって許容される。典型的な注射手順は子犬をホームケージに戻された後、1〜2分以内に完了する。第生後によって静脈視覚化が困難であり、注入手順は、技術的に信頼できないとなる。この技術は、アデノ随伴ウイルス（AAV）のvectの送達のために使用されている順番に選択されたウイルスの血清型に応じて、動物の生活のため、ほぼ身体全体で、安定的な導入遺伝子発現を提供することができます論理和をとり、。

概要

小児疾患のマウスモデルにおいて、中枢神経系（CNS）への治療薬の送達は課題である。モデル新生児疾患状態が過小と発生的に未熟であるため、直接CNS内の適切な構造体に注入することが困難であることをマウス。治療薬の血管内注入がCNS ^1-5および^3,5-9網膜を含む全身への細胞、薬物、またはウイルスベクターを送達するための非侵襲性、忍容性が良好な方法である。以前の刊行物は、解剖顕微鏡^11,12なしで、イルミ^10,11を使用して、一時的な顔の静脈注射、または記述^10を注入する二人の個人を必要とする。一個人が子犬を注入することができ、光源が時間的静脈子犬に触れていない表示する、サージカルテープの必要性や、固定表面への子犬の付着を排除するため、このプロトコルに記載注入技術が有利であるイルミ¹¹など。マウスでのアデノ随伴ウイルスベクター血清型9（AAV9）の送達は、脳や脊髄（ 図1）を通じて、ニューロンおよびアストロサイトでの強い発現を生成します。浅側頭動脈顔面静脈へのウイルスベクターの血管内送達は、確実に、小児神経筋疾患脊髄性筋萎縮症^{（SMA）2,4,13,14を}治療するための新生仔マウスの様々な研究で使用され、最終的に処理されたマウスの寿命を増加している。

新生児マウスの血管内注入も効果的に末梢神経系および末梢器官（ 図2）標的とする。 AAVの注入後、後根神経節、肝臓、心臓、骨格筋、肺、および腸の筋層間神経叢の形質導入は^{、1,3,6,7,15}観察され^ている。 CNSおよび末梢の広範な伝達は、グローバルな表現を必要とする疾患の注入のこの方法は最適ですそのようなゴーシェ病¹⁶および他のリソソーム蓄積症^17,18、バッテン病と関連する神経細胞セロイド^{lipofuscinoses、19}およびバルデ·ビードル症候群、幼児²⁰で発生する症状の発症との遺伝的多臓器障害などのトランスジーン、。新生仔マウスへの血管内注入はまた、モデリングシステム全体の小児疾患の新規な方法と考えるべきである。この手法は、より大きな動物モデル^5,21に翻訳され、血管内注射は、すでに治療薬を送達することが臨床的に許容される方法として存在する。

現在のプロトコルは、生後2日目注射より遅くとも浅側頭顔静脈から新生児マウスに薬剤を送達しない、シンプルで効率的な方法を記述する単一完成させることができる、個々の練習、よく子犬やダムの両方によって許容されている。子犬は、最小限の苦痛を経験し、迅速に回復。 ImportanTLY、成功した注射が投与された薬剤のグローバルなデリバリーになります。このプロトコルは、ウイルスベクター、新生マウスに薬剤または細胞の送達に適している。

プロトコル

プロトコールに記載されているすべての手順は、オハイオ州立大学の動物使用とケア委員会（IACUC）研究所承認されている。

ワークスペースの調製

1. ごみ、解剖顕微鏡、90℃で注入（光源の使用に対してある角度で配置することができ、光源からのダムを分離するために、空のケージの仔マウスを麻酔湿式氷を集める 注射部位に角度静脈を不明瞭）、注射のために動物を配置する清浄な表面、綿棒、3/8 "30 G針（動物あたり1つ）および1％エバンスブルー色素（と3/10 ccのインスリン注射器訓練のためのリン酸緩衝生理食塩水（PBS））溶液を用いて作った。
2. 子犬を操作しながら、別々のケージにダムを削除します。

2.注入手順

1. 動物を麻酔30-60秒間濡れた氷の上に直接、単一の子犬を置きます。トン放置しないでください彼による心室細動、組織低酸素および代謝性アシドーシスなどの低体温症に関連する合併症の危険性への氷の上で動物が長すぎる。
   注：私たちの経験は、30〜60秒の注入を可能にするために、子犬の動きを遅くするのに十分であることである。深い麻酔が必要な場合、そのような1〜2％イソフルランなどの吸入剤が適切であり得る。
2. 動物が氷の上ですが、エバンスブルー染料30μlのシリンジをロードします。
3. 動物が完全に麻酔されたとき、まだ呼吸しながら、氷の上での動きの欠如によって確認された顕微鏡下に移動します。右利きの注射のために、右に動物の銃口に直面しています。耳の芽は人差し指と中指（ 図1）の間になるよう、耳の芽に銃口を左人差し指と左中指の尾を置きます。
4. 皮膚が操作されたときに移動する表面的な毛細血管のための耳の芽にちょうど前方を調べます。このキャピラリーはしかし、対象ではありません識別は、時間的な静脈認証のために重要である。次に、関係なく、肌の位置の固定されたままでキャピラリーに劣って暗い、闇の静脈を探します。時間的な静脈が影の表示され、腹側に背を実行し、頸静脈（ 図1）に供給されます。
5. 針のベベルを上にして一時的な静脈を入力してください。正しく挿入された場合は、針のベベルを皮膚を介して血液を充填見ることができる。その後、ゆっくりとプランジャーを押し下げるとノートでは、顔の側を下静脈のブランチング。
6. 針が注入物質の逆流を防ぐために追加された10〜15秒間の静脈内にとどまることを可能にする。

3.ポストインジェクション

1. 適切な注入後、子犬は、ほとんどすぐに青色に変わるはずです。針を外して、血の塊になるまで注射部位に綿棒を適用するために穏やかな力を使用しています。
2. 苦痛の徴候のために子犬を監視します。子犬2-3 minは回復しrewarmすることを許可する、R子犬がケージに戻る前に、意識的な直立と移動しているときecognize。カップは研究者の手袋をはめた手の中に子犬は、必要に応じて、回復を支援するために、適切な暖かさを提供します。代わりに、注入された子犬を温める容易にするために、ホームケージの下に加熱パッドを配置。一般的にエバンスブルー色素注入後、子犬を安楽死させる。試験材料を注入する際に染料を含めないでください。
3. バックホームケージに子犬を置き、子犬がダムによってreacceptanceを確保するために、寝具、および/またはnestletでコーティングされていることを確認してください。
4. 無菌性を維持するために、各子犬のための新しい注射器と綿棒を使用してください。

結果

適切な注入中に、静脈が瞬​​間的にクリア、または湯通し有効にしてください。染料注入した場合、全子犬が数秒以内に青色に変わるはずです。不適切な注入が発生した場合、頭部または頸部および注入物質中の濃縮皮下ボーラス注射部位から漏出してもよいことが多い。不適切な注射はまた、喉の周りにあざが出現する可能性があります。皮下注射を受けるの仔（ すなわち 、注射が完全に静脈内に配信されなかった）、一般的に全く病気の副作用を経験しておらず、日常的に適切に注射したマウスがそうであるように治療に反応する。

配信療法に応じて、成功した注射は、CNSおよび末梢器官への広範な配信をもたらすことができる。ニワトリβアクチンハイブリッドプロモーター（CB）と緑色蛍光タンパク質（GFP）を発現する自己相補的アデノ随伴ウイルス血清型9を注入すると、トランス（共に「scAAV9 CB GFP」ともいう）遺伝子発現は、多数の脳の領域を横切るグリア細胞およびニューロンおよび脊髄（ 図2A-2C）内に見出される。 scAAV9 CB GFPの血管内注入は、心臓および肝臓組織...

ディスカッション

CNSまたは全身の薬剤の血管内送達は、疾患の新生児マウスモデルでは困難である。記載されているプロトコルは、静脈内に、最小限の設備要件を新生児マウスにソリューションを管理するための迅速、比較的非侵襲的な方法です。時間的な顔の静脈が肉眼で見ることができるが、注射は、特に経験の乏しいインジェクタ、顕微鏡および光ファイバ光源を用いて、より高い精度を有することができる。新生児マウスにおける血管内注入は、高い成功率^12を有し、AAV形質導入は、注入物質の一部が皮下に投与される場合でも、初期の仔で観察されている。注射はよく仔マウスによって許容され、FVB / NまたはC57BL / 6背景上のダムは非常によく仔の操作を容認されている。しかし、まれにダムは全体同腹仔を破壊することができます。これらの注射は正常に1.6グラム0.8〜gと小さいマウスで行うことができる。代替充血nの新生児マウスのルートは、米国および眼窩後、intrajugularおよび腹腔内^10,15,22を含む他のユーザーによって公開されている。それは特別な機器要件を単一の実験者によって実行することが臨床的に関連することができ、投与されるべき...

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
Thinproインスリンシリンジ	テルモ	SS30M3009	3/10 cc、3/8インチ針、30 G、マウスあたり1本
エバンスブルー染料	シグマ・アルドリッチ	E2129	1x リン酸緩衝生理食塩水
綿チップアプリケーター	ッシャーサイエンティフィ	23-400-101
光ファイバー光源	フィッシャーサイエンティフィック	12-562-36
解剖顕微鏡

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